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- V1200-2
- 2026年04月23日
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仪器设备-功能用途
由于传统模型的不足：传统的体外2D细胞模型和体内动物模型常用于评估药物的安全性和有效性，但它们存在明显的缺点。例如，体内动物模型构建耗时，而体外2D细胞模型缺乏体内微环境，无法进行准确评估。
尽管体外3D细胞模型，如细胞球和类器官具有优势，但它们的培养过程漫长且手动，引入了个体差异和高成本。此外，静态培养中的3D模型缺乏构建微生理系统的流体连接。
作为一种动态多器官微生理系统【微生理系统，也称为器官芯片(organ-on-a-chip)技术】，通过模拟器官功能和不同器官间通信，为研究药物的药效学、药动学和整体药物反应提供了新的视角，在疾病建模和药物筛选方面显示出巨大潜力。
仪器设备-发表文献：
uBerger E, Magliaro C, Paczia N, Monzel AS, Antony P, Linster CL, Bolognin S, Ahluwalia A, Schamborn JC. Millifluidic culture improves human midbrain organoid vitality and differentiation. Lab Chip, 2018, 18, 3172-3183.
vRamachandran S, Schirmer K, Münst B, Heinz S, Ghafoory S, Wölfl S, Simon-Keller K, Marx A, Øie C, Ebert M, Walles H, Braspenning J and Breitkopf-Heinlein K (2015). In Vitro Generation of Functional Liver Organoid-Like Structures Using Adult Human Cells. PLOS ONE, 10(10), e0139345.
w Cancer cells grown in 3D under fluid flow exhibit an aggressive phenotype and reduced responsiveness to the anti-cancer treatment doxorubicin, Tayebeh Azimi, Marilena Loizidou & Miriam V. Dwek ,Scientific Reports volume 10, Article number: 12020 (2020)
xGeddes, L., Themistou, E., Burrows, J. F., Buchanan, F. J., & Carson, L. (2021). Evaluation of the In Vitro Cytotoxicity and Modulation of the Inflammatory Response by the Bioresorbable Polymers Poly(D,L-lactide-coglycolide) and Poly(L-lactide-co-glycolide). Acta Biomaterialia, 134, 261-275.
ySusanne Reinhold, Christian Herr, Yiwen Yao , Mehdi Pourrostami, Felix Ritzmann. Modeling of lung-liver interaction during infection in a human microfluidic organ-on-a-chip, bioRxiv preprint posted June 5, 2023.
产品用户概况
全球使用Kirkstall Quasi Vivo®器官芯片微生理系统的学术及研究机构已超过100+个，遍布美国、英国、法国、瑞典、奥地利、意大利、荷兰、瑞士、日本等。目前器官芯片微生理系统已成功用于以下类器官模型的构建：
（五）品牌制造商简介
Kirkstall Ltd.成立于 2006 年，是 Braveheart Investment Group plc 的子公司，总部位于英国约克。Kirkstall开发了一种创新的微生理系统的器官芯片模型Quasi Vivo®。作为器官芯片技术的lingdaozhe，Kirkstall已经建立了牛津大学生物医学工程研究所等著名的大学实验室的庞大用户群，产品在全球范围内享有盛誉。
北京基尔比生物科技有限公司是Kirkstall ltd.授权在中国的唯一和独家总代理商，全面负责Kirkstall公司旗下所有产品在中国的销售，市场推广和技术支持等事宜。
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文献和实验approaches have been applied to ensure proper medium supply, namely orbital shaking,11 spinning flasks6 and mini-bioreactors.10 However, applying fluidic systems (micro- or millifluidic) have not been considered, so far. In case of the hMOs, we hypothesize that keeping organoids under continuous orbital shaking as per published protocols5 might not be sufficient to ensure a proper supply of nutrients and oxygen. Therefore, to improve the quality of hMOs we investigated the effects of applying a continuous medium flow during culture. In this study we used the “Quasi Vivo” (QV, Kirkstall, UK) millifluidic system rather than a microfluidic device14 for a number of reasons. First, following the concept of allometry, the size of an organoid should range between approximately 0.5 to 2 mm in order to exhibit physiologically scaled metabolism (oxygen consumption).15,16 In addition, millifluidic systems such as the QV allow the application of relatively high flow rates ensuring proper nutrient and oxygen supply without exposing the organoid to a high shear force due to the flow itself. This is due to a well-like design in which the medium inlet and outlet are located in the chamber lid whereas the organoid is placed a variable distance from the medium inlet.17,18 Finally, given their high volume to surface ratio, millifluidic systems do not require frequent media changes, thus organoid manipulation is reduced to a minimum during culture. Besides various applications in 2D cultures, the QV millifluidic system has been successfully used to culture liver organoids13,19 and 3D cardiac constructs20 derived from human (adult) stem cells. In this study, we established a stable midbrain organoid culture under millifluidic conditions and compared it to the state-of-the-art procedure of continuous orbital shaking using both a computational fluid dynamics (CFD) and an experimental approach. The CFD analysis was performed to determine if differences in calculated oxygen profiles in the two experimental set-ups could be used to expla
「秃头星人」的福音来了！人造毛囊首次培养成功，生发效率接近 100%！
参与该研究的英国伦敦玛丽女王大学的 Kairban Hodivala-Dilke 表示，「从历史上看，人工制造毛囊是非常困难的，不同类型的细胞需要不同的营养。」 在这项研究中，他们通过尝试多种体外培养条件，包括培养基、生长因子、信号通路的激活剂和抑制剂等，使得两种胚胎细胞——胚胎上皮细胞和间充质细胞得以在体外形成毛囊类器官。 图片来源：Science Advances 值得一提的是，他们开发的类器官培养系统以几乎 100% 的效率生成了毛囊和毛干，可以产生完全成熟的毛囊，其生长出的毛干
而言，他们利用悬浮球培养使得 iPSCs 分化成拟胚体（embryoid bodies，mEBs）。随后，研究人员将 mEBs 培养于 3D 培养系统，生成类似于乳腺的类器官。这一培育过程需要用到基质胶、乳腺发育相关的激素及生长因子等化合物。二步法构建乳腺类器官的过程[3]基于二步法获得的乳腺类器官，经验证成功表达有乳腺标志物（例如 lactalbumin/LALBA、EpCAM、 CK14 和 P63）。这意味着，在特定条件下由 iPSCs 分化、培育而来的类器官具备乳腺的关键特征。虽然尚且不能完美复制
人 iPS 细胞体外分化为气道上皮肺类器官用于呼吸系统疾病研究应用以及iPSC操作指南
人肺类器官培养系统是一种无血清、多阶段培养系统，常用于将人诱导多能干细胞(iPS)有效分化为结构类似于体内分支气道和早期肺泡结构的成熟肺类器官。 使用 3dGRO™ 人肺类器官培养系统，可以生成大量成熟的肺类器官，这些类器官表达适当的标志物，标志着成熟肺和气道中发现的多种细胞类型，包括在中发现的 SFTPB 和 SFTPC（表面活性物质相关蛋白B 和表面活性物质相关蛋白C） II 型肺泡上皮 (ATII) 细胞、MUC5AC（气道杯状细胞）、EpCAM、Sox9 和 Nkx2.1（肺内胚层）、乙酰
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