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动物组织/细胞RNA提取试剂盒,阿拉丁

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  • ¥1197.90
  • 阿拉丁已认证
  • 上海
  • R666020
  • 2025年07月13日
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    • 详细信息
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      室温

    • 英文名

      RNApure Tissue&Cell Kit

    • 库存

      期货

    • 供应商

      上海阿拉丁生化科技股份有限公司

    • 规格

      R666020-50T

     本试剂盒将高效的异硫氰酸胍裂解技术与硅基质膜纯化技术相结合,可从动物细 胞及组织中高效提取总RNA。起始样本一般最多30 mg组织或1 x 107细胞。本试剂盒 还可回收未完全纯化的RNA、体外转录和酶促反应后得到的RNA。用本试剂盒可提取 纯化分子量大于200碱基的高品质RNA,几乎无DNA残留。如果要进行对微量DNA非 常敏感的RNA实验,残留的DNA可利用无RNase的DNase I在柱上进行消化去除。提 取的RNA可用于RT-PCR、Nothern Blot、Dot Blot等下游实验。

    R666020
    Component50 TStorage
    R666020ABuffer RL35 mLRT
    R666020BBuffer RW140 mLRT
    R666020CBuffer RW2 (concentrate)11 mLRT
    R666020DRNase-Free Water10 mLRT
    R666020ESpin Columns RM with Collection Tubes50 setsRT
    R666020FRNase-Free Centrifuge Tubes (1.5 mL)50 EART

    自备试剂:β-巯基乙醇、无水乙醇(新开封或提取RNA专用)。 

    实验前准备及重要注意事项 

    1.预防RNase污染,应注意以下几方面: 

    1)使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。 

    2)玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸 泡10分钟,用水彻底冲洗后高压灭菌。 

    3)配制溶液应使用无RNase的水。 

    4)操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。 

    2.提取的样品避免反复冻融,否则影响RNA提取的量和质量。 

    3.使用前请检查Buffer RL是否出现结晶或者沉淀,可置于56℃加热重新溶液。Buffer RL在使用前请加入β-巯基乙醇,至终浓度为1%。如1ml Buffer RL加10μl β-巯基乙 醇。加入β-巯基乙醇的Buffer RL室温可保存1个月。 

    4.第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。 

    5.所有离心步骤如无特殊说明均在室温下进行,且所有操作步骤动作要迅速。 

    6.若下游实验对DNA非常敏感,建议用不含RNase的DNase I对 RNA进行处理。

    操作步骤 

    1.样品处理 

    1a 组织:将组织在液氮中磨碎。每20-30 mg组织加600 μl Buffer RL(使用前检查 是否加入β-巯基乙醇),组织样本少于20 mg加350 μl Buffer RL。样品体积不超过 Buffer RL体积的十分之一。 

    1b 单层培养细胞:将细胞在培养瓶中直接裂解或处理成细胞悬液,离心得到细胞沉 淀,弃上清,每6-10 cm2 培养面积加入600 μl Buffer RL,小于6 cm2 加入350 μl Buffer RL,反复吹打几次,使其充分裂解。 

    1c 细胞悬液:12,000 rpm(~13,400×g)离心1分钟弃上清,得到细胞沉淀。每 5×106 -1×107 细胞加入600 μl Buffer RL,少于5×106 细胞加入350 μl Buffer RL,反 复吹打几次,使其充分裂解。 

    注意:

    1)尽量除尽细胞培养基,细胞培养基可能抑制细胞的裂解影响RNA产量。 

    2)尽量使细胞充分悬浮并充分裂解,否则影响RNA产量。 

    2.样品充分裂解后,室温放置5分钟,使蛋白核酸复合物完全分离。 

    3.12,000rpm离心2-5 min,取上清进行下步操作。 

    4.加入1倍体积(600 μl或350 μl)的70%乙醇(无RNase水配制),混匀。 

    注意:加入乙醇后可能会产生沉淀,不会影响后续实验。 

    5.将步骤4所得溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns RM)中,若一 次不能将全部溶液加入吸附柱中,请分两次转入,12,000 rpm离心1分钟,倒掉收集 管中的废液,将吸附柱放回收集管中。 注意:吸附柱的最大载量为100 µg不要超载,否则会影响RNA的产量和纯度。 

    6. 向吸附柱中加入700 μl Buffer RW1, 12,000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液, 将吸附柱放回收集管中。 

    可选步骤:如果要进行对微量DNA非常敏感的RNA实验,则用以下步骤替代步骤6。 

    1)向吸附柱中加入350 μl Buffer RW1, 12,000 rpm离心15秒,弃废液,将吸附柱重新 放回收集管中。 

    2)配制DNase I 混合液:取52 μl RNase-Free Water,向其中加入8 μl 10×Reaction Buffer 和20 μl DNase I (1 U/μl),混匀,配制成终体积为80 μl的反应液。 

    注意: 以上体系为按照我公司产品DNase I 反应体系进行配置,应用其他公司产品请参考相应说明书。  

    3)向吸附柱中直接加入80 µl 配制好的DNase I 反应液,20-30℃孵育15分钟。 

    4)向吸附柱中加入350 μl Buffer RW1, 12,000 rpm离心15秒,弃废液,将吸附柱重新 放回收集管中。 

    7.向吸附柱中加入500 μl Buffer RW2(使用前检查是否加入无水乙醇), 12,000 rpm离 心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。 

    8.重复步骤7。 

    9.12,000 rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。 

    注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。 

    10.将吸附柱置于一个新的无RNase离心管中,向吸附柱的中间部位悬空加入30-50 μl RNase-Free Water,室温放置1分钟,12,000 rpm离心1分钟,收集RNA溶液,-70℃ 保存RNA,防止降解。 

    注意:

    1)RNase-Free Wate体积不应小于30 μl,体积过小影响回收率。 

    2)如果要提高RNA的产量,可用30-50 μl新的RNase-Free Water重复步骤10。 

    3)如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤10。

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