3-巯基-5-甲基-1，2，4-三氮唑，7271-44-5，

浅析染色质免疫沉淀（ChIP）技术在 DNA 与蛋白质相互作用研究中的重要性

或者尚不能得出确切结论，因此需要 ChIP 试验进行有力的支持。有研究 [6] 通过 WB, MSP,EMSA 等技术发现乳腺癌细胞的高度恶性与抑制肿瘤转移相关的 TFPI-2 基因启动子区过度甲基化有关，之后用 ChIP 试验则证实了该区域高度甲基化后确实转录水平因此受到影响，为上述的结论提供更充分的论据。类似的，Peng 等人 [13] 用 EMSA 技术得出水稻转录因子 OsLFL1 结合于 Ehd1 基因的启动子区的初步结论后，采用 ChIP 在体内重复出了这个结果，因此最终能确定该转录

蛋白质组学研究思路以及发表案例

，4046 个蛋白质被定量。与对照组相比，CUMS 组在 1.5 倍变化 (> 1.50 或 差异蛋白验证：免疫荧光证实，与对照组相比，海马 CA1 和 DG 亚区的神经元损失显著。对 RIP3、MLKL 和 p-MLKL 及与铁稳态失调和脂质过氧化相关指标，包括 Ftl1、MDA、GSH 和 GPX4 等进行 WB 验证，结果表明铁死亡和坏死与慢性应激诱导的抑郁有关。 6.2、IF 3-5 分文章：蛋白质组学+代谢组学 蛋白质组学和代谢组学检测 分析差异蛋白，对差异蛋白进行

聚丙烯酰胺凝胶电泳法（PAGE）分离血清蛋白质（核黄素-TEMED聚合系统）（图）

-为慢离子，采用三羟甲基氨基甲烷（简称Tris）作为缓冲配对离子。 电泳开始前，如图15-5A所示，慢离子位于两个电极槽中，快离子分布在三层凝胶中，样品在样品凝胶中，缓冲配对离子位于全部系统中。电泳进行中如图15-5B所示，快离子与慢离子的界面向下移动，由于选择适当的pH缓冲液，使蛋白质样品的有效迁移率（有效迁移率=mα，m为迁移率，α为解离度）介于快离子与慢离子的界面处，而浓缩成为极窄的区带。它们的有效迁移率按下列次序排列：mclαcl＞mpαp＞mGαG（Cl代表氯离子，P代表蛋白质，G