纳米铁镍钴合金粉，≥99.5%, ≤500nm，阿拉丁

技术原理与方法｜将硅油物镜配合共聚焦激光扫描显微镜用于透明化标本的深层组织观察

图像比较。 荧光抗体染色：VGluT1（绿色）/ VGluT2（红色）/ MAP2（蓝色） 使用常规油浸物镜和硅油物镜拍摄的小鼠新皮层 XY 图像。当使用两组物镜获得明亮荧光图像时，在使用硅油物镜成像时，深度为 35μm 的 XY 图像明显更亮并且具有更高的分辨率。 在 35μm 处拍摄图像之间的亮度差异是由于油浸透镜球差所致，其原因是物镜所使用的油种类（ne≤1.52）和透明化溶液 SCALEVIEW-A2（ne≤1.38）之间折射率差引起的。 由于硅油的折射率（ne≒1.40）更接近

一篇搞定 IP、co-IP 实验

糖，建议进行 Pre-clear；如果使用磁珠，此步可忽略 抗 X 抗体的轻链（25 kD）和重链（50 kD） 更侧重于如何在实验上进行优化（见下文） *注意：总蛋白上样量过多也会造成 非特异性结合，建议上样量为 500 ug-1 mg。上样之前一定要先用 BCA 定个量！定个量！定个量！ pre-clear：上样前先用裂解液过一遍柱子，减少基质本身对蛋白的吸附 Output：在某些 co-IP 实验中，实验人员会把IP后的上清分别进行诱饵蛋白 X 和靶蛋白 Y 的 WB 检测

大肠杆菌感受态细胞的制备、重组DNA的转化、克隆筛选

一次OD600nm，至OD600nm≤0.5时停止培养；       (2) 每组取培养液3个2ml转入2ml离心管中，在冰上冷却20-30min，于4℃，4000r／min离心10min（从这一步开始，所有操作均在冰上进行，速度尽量快而稳）；       (3) 倒净上清培养液，用1ml冰冷的0.1mo1／L CaCl2溶液轻轻悬浮细胞，冰浴；       (4) 0～4℃，4000r／min离心10min；       (5) 弃去上清液，加入500µll冰冷的0.1mo1／L