- ￥4550
- 西格
- XG-X4808
- 国产
- 2025年07月15日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 供应商：
上海西格
- 库存：
39
- 英文名：
大鼠肾集合管上皮细胞
- 物种来源：
大鼠
- 规格：
5×105
| 产品名称 | 规格 | 货号 |
| 大鼠肾集合管上皮细胞 | 5×105 | XG-X4808 |
大鼠肾集合管上皮细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。
二、细胞培养状态
发货时发送细胞电子版照片
在技术部标准操作流程下，建议您收到细胞后尽快进行相关实验。
使用方法
1. 取出T25细胞培养瓶，用75%酒精消毒瓶身，拆下封口膜，放入37℃、5%CO2、饱和湿度的细胞培养箱中静置3-4h，以稳定细胞状态。
2. 贴壁细胞消化
1)吸出T25细胞培养瓶中的培养基，用PBS清洗细胞一次；
2)添加0.25%胰蛋白酶消化液1mL至T25培养瓶中，轻微转动培养瓶至消化液覆盖整个培养瓶底后，吸出多余胰蛋白酶消化液，37℃温浴1-3min；倒置显微镜下观察，待细胞回缩变圆后，再加入5ml完全培养基终止消化；
3)用吸管轻轻吹打混匀，按传代比例接种T25培养瓶传代，然后补充新鲜的完全培养基至5mL，置于37℃、5%CO2、饱和湿度的细胞培养箱中静置培养；
4)待细胞完全贴壁后，培养观察；之后按照换液频率更换新鲜的完全培养基。
3. 细胞收货脱落
1)收集所有细胞悬液，1000rpm，离心5min，保留沉淀；
2)添加0.25%胰蛋白酶消化液0.5mL至离心管中，重悬沉淀，放置于37℃消化3min(或4℃冰箱静置5-7min)；消化完向离心管内加入5ml完全培养基终止消化；
3)经1000rpm，离心5min，丢弃上清，用5ml完全培养基重悬沉淀，接种于新的培养瓶内；
4)待细胞完全贴壁后，培养观察；之后按照换液频率更换新鲜的完全培养基(37℃预热)。
5)原瓶内贴壁细胞按正常消化处理。
4. 细胞实验
因原代细胞贴壁特殊性，贴壁的原代细胞在消化后转移至其他实验器皿（如玻璃爬片、培养板、共聚焦培养皿等）时，需要对实验器皿进行包被，以增强细胞贴壁性，避免细胞因没贴好影响实验；包被条件常选用鼠尾胶原Ⅰ（2-5μg/cm2） ，多聚赖氨酸PLL（0.1mg/ml），明胶（0.1%），依据细胞种类而定。悬浮/半悬浮细胞无需包被。
公司正在 销售的产品：
IL1B Antibody Blocking Peptide Anti-AURKA/B/C Kinase Antibody
PLPP4 Antibody Blocking Peptide Anti-Bcl-XL/BCL2L1 Antibody
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TOP3A Antibody Blocking Peptide Anti-VEGFD Antibody (Clone#OTI6C5)
Exportin 1/CRM1 Antibody Blocking Peptide Anti-RFX3 Antibody (Clone#OTI3F7)
HPV16 E6 Antibody Blocking Peptide Anti-MAP2 Antibody (Clone#OTI5D1)
NLRP2 Antibody Blocking Peptide Anti-SUOX Antibody (Clone#26S92)
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PYY Antibody Blocking Peptide Anti-TNNI2 Antibody (Clone#OTI1H1)
SPINK6 Antibody Blocking Peptide Anti-EAAT2/SLC1A2 Antibody
CDCA7L Antibody Blocking Peptide Anti-p120 Catenin/CTNND1 Antibody
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HAAO Antibody Blocking Peptide Anti-C1D Antibody (Clone#OTI1E7)
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四、注意事项
1. 培养基于4℃条件下可保存3-6个月。
2. 在细胞培养过程中，请注意保持无菌操作。
3. 传代培养过程中，胰酶消化时间不宜过长，否则会影响细胞贴壁及其生长状态。
4. 建议客户收到细胞后前3天每个倍数各拍几张细胞照片，记录细胞状态，便于和技术部沟通；由于运输的原因，个别敏感细胞会出现不稳定的情况，请及时和我们联系，详尽告知细胞的具体情况，以便我们的技术人员跟踪、回访直至问题得到解决。
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文献和实验实验材料： 1. 新生大鼠唾液腺； 2. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS，添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素，pH7.2； 3. 培养用液：DMEM培养液，添加10%的胎牛血清、5μg/ml胰岛素、10 ng/ml表皮生长因子、50 ng/ml氢化可的松、100 IU/ml青霉素和100μg/ml链霉素。无Ca2+ 、Mg2+ 的D-Hanks液，使用时添加100 IU/ml青霉素和100μg/ml链霉素； 4. 鼠尾胶原液：先吸取4ml
本人把大鼠原代肾小管上皮细胞的取材、培养方法进行了总 结，请分享！ 取材：1.肾小管节段的分离(机械网筛滤过法)： ①取 Wistar 大鼠断颈法处死，立即置入碘伏液中浸泡 5 分钟。 ②将大鼠转移入超净工作台，取腰部切口迅速取出肾脏，置于盛有生理盐水的培养皿中清洗并除去包膜和肾蒂组织。 ③取皮质置于80目筛网上，剪碎成1-2mm3大小组织块，网下放盛有少量生理盐水的培养皿。 ④用玻璃注射器内芯于80目网上充分研磨组织。 ⑤收集 80 目网下液体转移至 100
实验材料： 1. 正常大鼠的肺组织； 2. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS，添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素，pH7.2； 3. 肺泡灌洗液Ⅰ：140 mmol/L NaCl、5 mmol/L KCl、2.5 mmol/L磷酸缓冲液、10 mmol/L HEPES、6 mmol/L葡萄糖和0.2 mmol/L EDTA。用无菌双蒸水配制，pH7.4，肺泡灌洗液使用时须预温到37℃； 4. 肺泡灌洗液Ⅱ：在灌洗液Ⅰ中加入2.0 mmol/L
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