土壤植酸酶活性检测试剂盒 微量法

土壤植酸酶活性检测试剂盒 微量法

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  • 北京
  • BC5375
  • 2025年07月14日
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    • 技术资料
    • 保存条件

      2-8°C

    • 保质期

      6个月

    • 英文名

      Sialic Acid Content Assay Kit

    • 库存

      999

    • 供应商

      北京索莱宝科技有限公司

    • CAS号

      BC5375-100T/48S

    • 规格

      100T/48S

    土壤植酸酶活性检测试剂盒说明书

    微量法

    注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。

    货号:BC5375

    规格:100T/48S

    产品内容:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

    试剂名称

    规格

    保存条件

    试剂一

    液体3mL×1瓶(自备)

    2-8℃保存

    试剂二A

    粉剂×1

    2-8℃保存

    试剂二B

    液体60mL×1

    2-8℃保存

    试剂三

    粉剂×1

    2-8℃保存

    试剂四

    粉剂×1

    2-8℃保存

    标准品

    液体1mL×1

    2-8℃保存

    溶液的配制:

    1. 试剂一:甲苯,需自备。

    2. 试剂二:临用前将试剂二B全部倒入试剂二A中,充分震荡溶解,用不完的试剂2-8℃可保存4周。

    3. 试剂三:临用前加入3mL蒸馏水充分溶解,再将枪头伸入液面下缓慢加入0.81mL浓硫酸,用不完的试剂2-8℃可保存4周。

    4. 试剂四:临用前加入13mL蒸馏水充分溶解,再加入20μL浓硫酸,用不完的试剂2-8℃可保存4周。

    5. 工作液:临用前根据测定数量将试剂三:试剂四=1mL5mL(约60T,可根据样本量按比例调整)的比例混匀,配制后于2-8℃可保存3天。

    6. 标准品:10μmol/mL无机磷标准液。

    产品说明:

    植酸酶(Phytase)又叫肌醇六磷酸酶,是一种蛋白质和糖的结合酶,植酸酶可以分解植酸产生无机磷和肌醇,极大的提高生物对养分的利用率。土壤植酸酶主要来自于土壤中的微生物,在磷素循环中起着重要作用,土壤植酸酶在土壤改良和农业可持续发展领域具有较强的应用前景。

    在一定的环境条件下,土壤植酸酶可以分解植酸钠(肌醇六磷酸十二钠)产生无机磷和肌醇衍生物,在酸性条件下,无机磷和钼酸铵显色剂发生反应,产生蓝色的钼蓝物质,其在700nm有特征吸收峰,通过测定无机磷的含量,可计算出土壤植酸酶的活性。

     

    注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

     

    需自备的仪器和用品:

    酶标仪/可见分光光度计、低温离心机、水浴锅/恒温培养箱、可调式移液器研钵、30-50目筛、甲苯、浓硫酸、96孔板/微量玻璃比色皿、冰和蒸馏水。

    操作步骤:

    一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

    新鲜土样自然风干或 37℃烘箱风干,过 30~50 目筛。

    二、测定步骤

    1、酶标仪/可见分光光度计预热30min以上,调节波长至700nm。可见分光光度计用蒸馏水调零。

    2、标准溶液的稀释:将10μmol/mL无机磷标准液用蒸馏水稀释至1.250.6250.31250.156250.0781250.0390.020.01μmol/mL备用。

    3标准溶液稀释可参考下表

    序号

    稀释前浓度(μmol/mL

    标准液体积(µL

    蒸馏水体积(µL

    稀释后浓度(μmol/mL

    1

    10

    100

    700

    1.25

    2

    1.25

    200

    200

    0.625

    3

    0.625

    200

    200

    0.3125

    4

    0.3125

    200

    200

    0.15625

    5

    0.15625

    200

    200

    0.078125

    6

    0.078125

    200

    200

    0.039

    7

    0.039

    200

    200

    0.02

    8

    0.02

    200

    200

    0.01

    备注:实验中每个标准管需100µL标准溶液。

    4、在离心管中按下表步骤加样:

    试剂名称

    测定管

    对照管

    标准管

    空白管

    土样(g)

    0.03

    0.03

    -

    -

    试剂一(μL)

    20

    20

    -

    -

    振荡,用试剂一将土样浸湿(潮湿状态即可),室温放置15min

    -

    -

    试剂二(μL)

    500

    -

    -

    -

    混匀,37℃水浴/恒温培养24h,沸水浴10min

    -

    -

    试剂二(μL)

    -

    500

    -

    -

    10000g25℃离心5min,取上清,以下步骤可直接加在96孔板或微量玻璃比色皿中。

    -

    -

    标准液(μL)

    -

    -

    100

    -

    蒸馏水(μL)

    -

    -

    -

    100

    上清液(μL)

    100

    100

    -

    -

    工作液(μL)

    100

    100

    100

    100

         室温静置15min,于700nm处测定吸光值,分别记为A测定、A对照、A标准、A空白。分别计算 ΔA测定=A测定-A对照,ΔA标准=A标准-A空白(标准曲线和空白管只需做 1-2 次,每个测定管需设置一个对照管)。

     

    三、土壤植酸酶活性的计算

    1. 标准曲线的绘制

    根据标准管的浓度(xμmol/mL)和吸光度ΔA标准(yΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA测定(yΔA测定)代入公式计算样本浓度(xμmol/mL)。

    2. 土壤植酸酶活性计算

    单位定义:37g土壤每天在反应体系释放1μmol无机磷为1个酶活力单位。

    土壤植酸酶活性(U/g= x×V反总÷W÷T=0.52x÷W

    V反:反应体系总体积,0.52mLW:土壤质量,gT:反应时间,24h=1d

    注意事项:

    1. 为防止沸水浴10min过程中水分散失,建议使用螺旋盖的离心管或用封口膜给EP管缠口。

    2. 如果ΔA测定< 0.01,适当延长第一步37℃反应时间或加大样本量后,重新测定。如果ΔA测定>1.2,建议将上清液用蒸馏水适当稀释后进行测定,注意乘以稀释倍数。

    3. 结果于30min内测定完毕,尽量保证所有样本测定时间的一致性。

    实验实例:

    1.   0.03g三叶草土壤,按照测定步骤操作,在96孔板中测得A测定 = 0.359A对照 = 0.28∆A测定= 0.079,将∆A代入标曲公式y = 1.1104x + 0.0077,得出x= 0.0642,按样本质量计算酶活得:

    土壤植酸酶活性(U/g= 1.113 U/g

    2.   0.03g蘑菇土土壤,按照测定步骤操作,在96孔板中测得A测定 = 0.442A对照 = 0.32∆A测定= 0.122,将∆A代入标曲公式y = 1.1104x + 0.0077,得出x= 0.1029,按样本质量计算酶活得:

    土壤植酸酶活性(U/g= 1.784 U/g

    参考文献:

    [1] Berry D F, Shang C, Zelazny L W. Measurement of phytase activity in soil using a chromophoric tethered phytic acid probe[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2009, 41(2):192-200.

    [2] Marshall, Arebojie, Azeke, et al. Effect of germination on the phytase activity, phytate and total phosphorus contents of rice (Oryza sativa), maize (Zea mays), millet (Panicum miliaceum), sorghum (Sorghum bicolor) and wheat (Triticum aestivum) [J]. Journal of Food Science & Technology, 2011, 48(6):724-729.

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