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文献和实验小鼠颅内动脉瘤动物模型的建立选用动物
雄性C57BL/6小鼠，10周龄。
小鼠颅内动脉瘤动物模型的建立方法
小鼠适应性饲养一周后，行左颈总动脉和右肾动脉结扎术。
常规麻醉消毒后，分离左侧颈总动脉进行结扎，然后缝合颈部皮肤。
腹部右侧消毒后，分离右肾动脉进行结扎，然后关腹；待小鼠苏醒后放回饲养笼继续饲养。
一周后，麻醉小鼠，固定在立体定位仪上，暴露颅骨，确认Bregma点。
在Bregma点前1.2mm、右侧0.7mm的位点转孔，颅平面下深度4.7mm的位置注射弹性蛋白酶到大脑基底池。
弹性蛋白酶以0.5μl/min的速度，注射2.5μl（35mU），停针10min。
弹性蛋白酶注射后，缝合小鼠皮肤。
将预先充好血管紧张素的微渗透泵埋置在小鼠背部皮下。
微渗透泵速度1000ng/kg/min 。
每日监测小鼠的神经症状，如小鼠出现不活动、瘫痪、体重≥15%的降低，立即终止实验，检查大脑颅底Willis血管环。
实验的第21天，所有小鼠心脏灌注3ml 4%的多聚jia醛，随后溴酚蓝明胶溶液心脏灌注，体视镜下检查大脑颅底Willis血管环附近颅动脉瘤形成及破裂情况。
小鼠颅底拍照示颅内动脉瘤形成情况。
1.Hypovolemic shock（MODS Multiple organ dysfunction syndrome）： 低血容量性休克模型 Wistar大鼠，4. 5 %异戊巴比妥(80 mg/ kg )？ 在25 ℃室温下腹腔内给药麻醉?, 右股动脉插入套管针 ,连接多导生理记录仪,监测血压;左颈静脉插入套管针给予甘氨酸、生理盐水和自体血(复苏通路) ;右颈动脉插入套管针,另一端连接肝素化玻璃注射器中, 进行放血诱导休克(休克模型建立)在5min 内使血压下降并维持
一个脑缺血动物模型的成功建立，对于临床前心脑血管药理的研究具有重要意义。一个理想的脑缺血及再灌流动物模型应具备以下条件：（1）血管闭塞后能引起相应区域血流量改变。（2）病理改变接近人脑急性缺血性变化。（3）大脑缺血严重，但脑干活动尚能维持，有利于缺血再灌流的连续观察。（4）闭塞动脉的方法能进行重灌注。（5）重复性好。（6）可控制缺血的时间，制成轻重不等的缺血模型。常用方法：1.开颅法：多数选择颞下部开颅，分离并电凝横过嗅束外缘或内缘处的MCA或用丝线结扎MCA造成脑梗塞，是目前公认的标准
（1）收集 将对数生长的肿瘤细胞收集 ， 用无血清基质 10.0ml， 于 1500 转/ 分， 离心3min， 连续洗 3 次， 最后用无血清基质混匀。（2）计算用血球计数器计算肿瘤细胞数量( 平均 5 个中方格的细胞计数×104即是肿瘤数/ 毫升) 。（3）接种计算完肿瘤细胞总数， 再将肿瘤细胞密度调至 4×106 个/ml， 每只小鼠腋下接种 50ul(即 2×105个肿瘤细胞)， 2周左右可扪及肿瘤小节结。一般选取 6-8 周的小鼠，不同的肿瘤细胞接种的数量和动物不一
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