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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 肿瘤类型:
否
- 供应商:
上海研生
- 库存:
25
- 生长状态:
贴壁
- 是否是肿瘤细胞:
否
- 细胞形态:
上皮细胞样
- 物种来源:
兔
- 组织来源:
皮肤
- 规格:
5×10⁵Cells/T25培养瓶
基本信息:
细胞名称:兔角质形成细胞
组织来源:皮肤
商品货号:YS-01X8093
种属来源:兔
产品规格:5×105cells/T25细胞培养瓶
包被条件:
培养基:原代角质形成细胞培养体系
换液频率:每2-3天换液一次
生长特性:贴壁
细胞形态:上皮细胞样
传代特性:根据细胞特性
传代比例:
消化液:0.25%胰蛋白酶
培养条件:气相:空气,95%;CO2,5%
细胞简介:

角质形成细胞是一种不断分化的复层鳞状上皮细胞,其分化的终阶是形成角蛋白。根据角质形成细胞的发展阶段和特点,从内向外可将其分为五层。基底细胞层又称生发层,棘细胞层,颗粒层,透明层,角质层。
角质形成细胞的分化成熟表现为从基底层到向角质层的逐渐移行。在单一移行过程中,角质形成;细胞的形状和功能也逐渐发生着变化,从单层柱状上皮的基底层到扁平的细胞核消失的角质层。新生的基底细胞进入棘细胞层,然后上移到颗粒层的上层。
原代细胞试用的实验类型:

原代细胞不仅广泛应用于分子、细胞生物学和生物医学基础研究,如蛋白质组学、基因组学、细胞株(系)研究、DNA,RNA和遗传学研究等,还可应用于当今热门的
生物医药产业如药物筛选、药物代谢和毒理研究、癌症药物的研究等。在这些应用中几乎都涉及了几个最常见的且最基础的细胞实验,如下:
一、细胞增殖检测:
常见检测方法:CCK8检测法 ,MTT检测法,Brdu检测法,Edu检测法,平板克隆形成
二、细胞周期检测
常见检测方法:流式检测细胞周期,标记有丝分裂百分率法
三、细胞凋亡检测
常见检测方法:流式检测细胞凋亡,线粒体膜电位,活性氧检测,Hoechst染色,电镜,TUNEL
四、细胞转移能力检测
常见检测方法:细胞划痕实验,Transwell实验,Invasion实验

原代细胞培养方法及注意事项:


1.准备:取各种已消毒的培养用品置于净化台面,紫外线消毒20分钟。开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。
2.布局:点燃酒精灯,安装吸管帽。
3.处理组织:把组织块置于烧杯中,用Hanks液漂洗2~3次,去除血污;如怀疑组织可能污染,可先置于含有青链霉素的混合液中30~60分钟。
4.剪切:用眼科剪把组织切成2~3毫米大小的块,以便于消化。加入比组织块总量多30~50倍的胰蛋白酶液,然后一并倒入三角烧瓶中,结扎瓶口或塞以胶塞。
5.消化:或用恒温水浴,或置于37℃温箱消化均可,消化中每隔20分钟应摇动一次,如用电磁恒温搅拌器消化更好。消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。
6.分离:在消化过程中见消化液发混浊时,可用吸管吸出少许消化液在镜下观察,如组织已分散成细胞团或单个细胞,立即终止消化,随即通过适宜不锈钢筛,滤掉尚未充分消化开的组织块。低速(500~1000转/分)离心消化液5分钟,吸出上清,加入适量含有血清的培养液。
7.计数:用计数板计数,如细胞悬液细胞密度过大,再补加培养液调整后,分装入培养瓶中。对大多数细胞来说,pH要求在7.2~7.4范围,培养液呈微红色,如颜色偏黄,说明液体变酸,可用NaHCO3调整。
8.培养:置于36.5℃温箱培养,如用CO2温箱培养,瓶盖需拧松半圈。

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文献和实验人皮肤角质形成细胞的分离与原代无血清培养.pdf
脊椎动物的皮肤表皮角质层的形成物。即指角质鳞片,羽毛、毛、爪、角、角齿等。通常,在鱼类、两栖类等水生生物或者近于水生动物中,角质形成物不够发达。
和眼科剪仔细分离皮肤和皮下组织,去除脂肪和疏松结缔组织。 2. 将皮肤展评,用手术刀切成2-3mm2的小片,放入中性蛋白酶消化液中,4℃下消化15-20h,或37℃下消化2-4h。 3. 用无菌针头和眼科镊子分离真皮与表皮。表皮薄而透明,真皮厚且轻微肿胀的凝胶状。 4. 将分离出的表皮块用0.25%胰蛋白酶,在37℃下振荡消化10-20min后,加入含10%胎牛血清的培养基终止消化。 5. 1500r/min分离心5min,吸去上清液,用培养液重新悬浮沉淀细胞,用吸管轻轻吹散细胞
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