- ￥156
- 西格
- XG-P3069
- 国产
- 2025年07月12日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
27
- 保质期：
3 年
- 供应商：
上海西格
- 保存条件：
-20°C
- 规格：
1ml
RNase A，不含 DNase 及蛋白酶，是一种核糖核酸内切酶，可特异性降解单链 RNA 的 C 及 U 残基部位。它可以剪切核苷酸 5'-核糖与相邻的嘧啶核苷酸 3'-核糖上所连磷酸基团间的磷酸二酯键，获得的 2', 3'-环状磷酸盐可进一步水解为相应的 3'-核苷磷酸。该酶的浓度为 20mg/ml，活力约 1500U/ml。
储存：-20℃可保存 3 年。该酶室温也极其稳定。
活性定义：一个单位定义为在 25°C、pH 5.0 的条件下，催化水解 RNA 的一级反应速度常数为 1.0 时的 RNase A 量。
使用注意事项
（1） 该酶对温度不敏感，但最佳反应温度为 37°C。
（2） 该酶可在含有 SDS 的条件下发挥活性。
（3） 通常去除基因组 DNA 中的 RNA 污染的使用比例为1:200~1000。
（4） 使用前无需再加热处理。
| 货号 | 产品名称 | 规格 |
| XG-P3069 | Rnase A(20mg/ml) | 1ml |
1、变性温度和时间：
Rnase A(20mg/ml)保证模板DNA解链完全是保证整个PCR扩增成功的关键。加热90~95°C, 30~60s，再复杂的DNA 分子也可变性为单链。温度过高或高温持续时间过长，可对Taq酶活性和dNTP分子造成损害。
2、复性温度和时间:
PCR扩增特异性取决于复性过程中引物与模板的结合。复性温度越高，产物特异性越高。复性温度越低，产物特异性越低。需根据引物的Tm值具体设定。
3、延伸温度和时间:
一般位于Taq酶最适作用温度70~75°C之间。引物小于16个核苷酸时，过高的延伸温度不利于引物与模板的结合，可以缓慢升温到70~75°C。延伸反应时间，可根据待扩增片段的长度而定，小于1kb, 1min足够；大于1kb需加长延伸时间。Taq酶可根据1kb/min增加时间。这里需要注意，延伸时间过长可能出现非特异扩增。因此需要设置恰到好处的延伸时间。
4、循环数:
其他参数选定后，PCR循环次数主要取决于模板DNA的浓度。理论上说20〜25次循环后，PCR产物的积累即可达到最大值，实际操作中由于每步反应的产率不可能达到100%，因此不管模板浓度是多少，20~30次是比较合理的循环次数。循环次数越多，非特异扩增增加。
PCR的特点：
特异性强：使用两对引物进行扩增提高了特异性，第一轮PCR中由外引物错配产生非特异性产物，同时在第二轮PCR中内引物与错误片段配对扩增的概率极低，降低了扩增多个靶位点的可能性。
灵敏度高：进行两轮PCR扩增，可以执行更多的循环，从低拷贝样本中扩增得到足量的产物，克服了单次扩增平台期限制，提高PCR的灵敏度。
降落PCR与温度梯度PCR的区别：
降落PCR与温度梯度PCR都是对反应体系中的退火温度进行优化，但两者在原理上有所不同。
温度梯度PCR是为了找到最适的退火温度，设置不同的退火温度进行多管PCR，将其分别放置在PCR仪中的不同温度模块进行反应，最终找到最适的退火温度，并进一步以此退火温度进行普通PCR扩增。
降落PCR是为了提高反应的特异性，通过设计一系列不断降低的退火温度，在同一PCR管内进行PCR扩增，最终获得大量的特异性扩增产物。
与温度梯度PCR相比，降落PCR更有优势。温度梯度PCR需要多次反应或多管反应找到最适的退火温度，之后还需以找到的最适退火温度再次进行PCR，才能得到较好的扩增效果，操作比较繁琐。降落PCR只需一次反应就可以获得很好的扩增效果，避免了对每对引物进行最适退火温度的优化和测定工作。
降落PCR适用于不确定引物的最适Tm值，或引物扩增效果不佳时，不了解目的模板同源性程度，使用降落PCR可以快速、特异的得到目的扩增片段。根据不同实验的需要，降落PCR还可与其它PCR方法同时使用，如实时定量降落PCR、竞争降落PCR等。
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文献和实验RNAse A Treatment of Mouse Cells
I also agree that, the purity of the RNAse is crucial for the success of the experiment. SL-2 cells are grown on cover slips at a density of 7x106 cells/ml. All treatments with CSK buffer may be omitted. The permeabilization is performed
RNase Protection Assay (Bowtell Lab)
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transcription buffer, and RPA template set to RT. For each probe synthesis, add the following in order to a 1.5 ml Eppendorf tube: 1 µl RNasin® 1 µl GACU pool 2 µl DTT 4 µl 5X transcription buffer 1 µl RPA Template Set 10 µl [a-32P]UTP 1 µl T7 RNA
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