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- B6X21260/B6X22260
- 2026年01月04日
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Biostream
三气培养箱很适合动物细胞培养、生殖细胞培养、厌氧细胞培养。适合微生物的培养及孵化实验，种子培育及组织培养实验需求
特点
6 个侧面的直接加热系统
整个侧面可以直接加热，保证了温度的稳定均匀，以及快速的升温和温度恢复。加热室分为三部分，每部分都有独立校准过的温度传感器进行监测
空气夹套
加热丝被阻隔在腔体和绝热层中间，有助于温度的快速恢复，并且有效减少热损失。隔热层不需要定期维护
双光束的 CO2 传感器 / 电化学氧气传感器
快速、准确地监测 CO2 和 O2 的含量，不受温度和湿度的影响
水盘加湿
加热器在底部加热水盘，产生湿气。通过循环风扇，将湿气充满整个腔体
无冷凝
箱门带加热单元，以及整个培养箱的框架式设计，可以保证不会在箱体及玻璃观察窗上冷凝
微电脑 PID 控制
自动控制 CO2 浓度、温度和报警。可以选配自动杀菌功能
HEPA 气源过滤
保证培养箱内气体的清洁
可选功能
自动杀菌，氧气含量控制，UV 杀菌，O3 臭氧杀菌单元，制冷功能等
良好的空气和湿度对流
良好的空气对流，良好的温场均匀性。六面体箱侧壁加热，附件顶置空气循环风扇，保证良好对流效应
易于清洗
圆角设计易于清洗，内腔材质为 SUS304 不锈钢
分隔门
每层有独立的分割门
报警系统
CO2 和温度有偏离时，会进行蜂鸣报警
温度上限设置
当温度控制故障或者某个点的温度超过设定的上限温度，设备会自动切断电源，保证样品及设备自身安诠。
带孔的搁板质
方便自然风流动，不锈钢材质可有效防腐蚀、防污染
在后部可选用 30mm 开孔（用于检测培养箱内工作环境或用于验证）
O2 控制
多气体供给控制（N2&O2）适用于不同型号的CO2 培养箱。可防止高耗氧量培养产生缺氧现象
UV 灭菌
4W 的 UV 灯放置在腔体顶部，循环风扇旁边。 UV 射线不会接触样品，可在培养过程中进行灭菌
O2 控制
多气体供给控制（N2&O2）适用于诠部 CO2 培养箱。可防止高耗氧量培养产生缺氧现象
BCI-40T，BCI-180T 热气温度≤125℃。BCI850T 热气温度可达到100℃。无需移除红外 CO2 传感器。
珀尔帖制冷单元
应用于 BCI-40T 和 BCI-180T。可在 +5℃到 60℃ 温度下工作
通过互联网络，显示系统可远距离实时监测设备的运行，通讯接口 RS232/RS 485
可根据客户的需求订制氧化铜 / 镀铜槽体，用以加强灭菌效果
箱体内独立分隔腔体
低气体消耗、低热量流失快速温度恢复、方便样品分类 BCI-40T 5 个内置分隔门 BCI-180T 6 个内置分隔门
技术参数
| 型号 | BCI-260T | |
| 箱体容积（L） | 260 | |
| 温度 | 范围 | 室温+5~60℃ |
| 精度 | ±0.1℃ （37℃） | |
| 分辨率 | 0.1℃ | |
| 控制方式 | 数字PID | |
| CO2 | 范围 | 0% ~ 20% |
| 精度 | ±0.1% （ 5% / 37℃） | |
| 分辨率 | 0.1 | |
| 传感器 | 双光束红外CO2 传感器 | |
| 控制 | 微电脑控制 | |
| 入口压力范围 | 0.6~0.7bar | |
| O2 | 范围 | 0.6~85% |
| 传感器 | 二氧化皓氧传感器 | |
| 显示屏 | TFT触摸屏 | |
| 操作面板 | 触摸屏控制面板 | |
| 夹套类型 | 气套式（六面梯度加热设计） | |
| 腔体材料 | 不锈钢（304） | |
| 搁板数（标准/ Z大） | 3/8 | |
| 订货号 | 标准型 | B6X21260 |
| 干热灭菌型 | B6X22260 | |
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文献和实验之前已分别构筑出GUS 基因的表现质体pQG11,若要令启动子T5promotor 的启动受到更好的调控，应进一步将pQG11 转形至大肠杆菌M15[pREP4]. M15[pREP4] 可持续表现lac repressor,pQG11 上用以驱动GUS基因表现的T5 promoter 的活性将因而受到抑制，但一旦加入IPTG 就能诱导GUS基因大量表现。 在这一节的实验里，我们将分别自经IPTG 诱导与未经诱导的pQG11/M15[pREP4] 菌体抽取total RNA,以便以北方杂合反应
★ 慢病毒包装操作步骤： 1. 在转染的前一天，传代准备细胞：用0.25%胰蛋白酶消化293T细胞，以含10%血清的DMEM培养基调整细胞密度后，按照每10cm细胞培养皿接种6～8×106cells到10cm细胞培养皿中，置于37℃，5% CO2 培养箱培养，16h～24h后待细胞密度生长到80%～90%时即可用于转染。 2. 第二天，在转染前2～4h，用5ml不含P/S的完全培养基换液（DMEM+10% FBS）。 3．按照以下实验步骤来进行转染： A、加入500ul HET Buffer
得到蓝白菌落筛选板 (因为我们一般用的是PGEM-T 做连接，经X-gal 处理后，有插入片段的显白色；载体自连的显蓝色，因此得到筛选。) 2） 挑取白色的菌落接到含氨苄青霉素的LB 培养基。 3） 37℃，260rpm 培养。 4） 培养5-6 小时后挑取2ul 菌液为模板做PCR 鉴定。 5） 以PCR 结果，将有目的片段插入的样品以5ml LB 培养基再次接菌，37℃， 260rpm 培养过夜，约16 小时。 2.7 阳性克隆鉴定 (PCR 鉴定)
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