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- BUNSEN本生
- NE002
- 2025年07月10日
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天津本生
| NE001 | 50×TAE | 500ml | 120.00 |
| NE002 | TAE缓冲液速溶颗粒(1L) | 10×1L | 150.00 |
| NE003 | 10×TBE | 500ml | 90.00 |
| NE004 | TBE缓冲液 粉剂 | 10×1L | 90.00 |
| NE005 | 溴化乙啶染液 | 1ml | 16.00 |
| NE006 | Goldview (EB替代品) | 1ml | 40.00 |
| NE007 | Gelred（10000×） | 0.5ml | 430.00 |
| NE009 | 6×DNA上样缓冲液 | 10ml | 70.00 |
| NE009-2 | 6×DNA上样缓冲液 | 5×1ml | 50.00 |
| NE010 | 6×DNA上样缓冲液(蓝色) | 10ml | 70.00 |
| NE010-2 | 6×DNA上样缓冲液(蓝色) | 5×1ml | 50.00 |
| NE011 | 6×DNA上样缓冲液(橙色) | 10ml | 70.00 |
| NE011-2 | 6×DNA上样缓冲液(橙色) | 5×1ml | 50.00 |
| NE012 | 6×DNA上样缓冲液 (SDS) | 10ml | 70.00 |
| NE012-2 | 6×DNA上样缓冲液 (SDS) | 5×1ml | 50.00 |
| NE013 | 6×三色DNA上样缓冲液 | 10ml | 70.00 |
| NE013-2 | 6×三色DNA上样缓冲液 | 5×1ml | 50.00 |
| NE014 | 10×DNA上样缓冲液 | 10ml | 70.00 |
| NE014-2 | 10×DNA上样缓冲液 | 5×1ml | 50.00 |
| NE015 | 10×酶切电泳上样缓冲液 | 10ml | 80.00 |
| NE015-2 | 10×酶切电泳上样缓冲液 | 5×1ml | 60.00 |
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文献和实验为1-2mmol/L，目的是螯合Mg2+ 等离子，防止电泳时激活 DNA酶，此外还可防止Mg2+离子与核酸生成沉淀。 TAE是使用最广泛的缓冲系统。其特点是超螺旋在其中电泳时更符合实际相对分子质量（TBE中电泳时测出的相对分子质量会大于实际分子质量），且双链线状DNA在其中的迁移率较其他两种缓冲液快约10%，电泳大于13kb的片段时用TAE缓冲液将取得更好的分离效果，此外，回收DNA片段时也易用TAE缓冲系统进行电泳。TAE的缺点是缓冲容量小，长时间
一般先配制50倍的TAE缓冲液，用时再稀释成1倍的。 50倍TAE缓冲液的配制方法为 1. 称取下列试剂于1L烧杯中： Tris 242g Na2 EDTA.2H2 O 37.2g 2.向烧杯中加入约600mL的去离子水，充分搅拌溶解
糖凝胶分离的范围 试剂： (1)1 X TAE电泳缓冲液：45mmol/Ltris-硼酸，1mmol/LEDTA，pH8.0 (2)凝胶加样缓冲液：0.25%溴酚蓝，40%蔗糖水溶液。 (3)λ-DNA和提取的DNA λ-DNA是λ噬菌体的基因组DNA，全长50kb。用HindIII或(和)BamHI酶切得到的片段被广泛用于DNA电泳的分子量标准。 (4)分子量标准(&lambda
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