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| 15-冠醚-5 | sigma | V900647-5G | 290.10 | Chemical Synthesis | 化学合成 | NDG | STD | 290.10 | 化学合成试剂 | reagent grade | 98% | 15-Crown-5 | 33100-27-5 | 774 | Chemical Synthesis - RC | C34 Chemical Synthesis | LR2 | Life Science Chemistry |
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文献和实验mmSupelco24C8涂渍柱分离C2-萘异构体,却无法使所有的异构体分离,Andress指出其原因可能是这种冠醚空腔大小与这些异构体不匹配。 小分子冠醚用作固定相存在高温易流失的缺点,且因不能在柱内壁形成稳定均匀的相膜而柱效不高,将小分子冠醚高分子化可以克服上述缺点。 4.2 聚硅氧烷类高分子冠醚固定相 Fine 1985年报道了将小分子冠醚在毛细管内形成高分子层的原位共聚法,他用聚乙烯苯并-15-冠-5(PVB15C5)涂渍玻璃内壁后,先经粗糙化,再用Carbowax-20M去活处理
加入1/10体积的ETR,颠倒7-10次后溶液变得浑浊,冰浴10-20min。 10. 42°C水浴5min后,25°C,3,000-5,000xg离心5min,ETR溶液将在管底形成蓝色分层。离心后,如果溶液中有大量的液滴悬浮,静置10分钟让液滴自然沉降。 11. 转移上清液移至离心管中,加入0.5倍体积无水乙醇(室温),混匀后室温静置1-2min。 12. 将HiBind® 中量柱装在15ml收集管中。转移20ml混合液至柱子內,室温下3,000-5,000xg离心
抗体,荧光标记二抗,乙醇丙酮混合液(1:1)二、实验器械1、培养皿2、培养瓶3、直剪和眼科剪4、眼科镊5、玻璃滴管6、15ml离心管7、200目网筛三、实验流程取材↓取皮片,削成厚度为0.5mm的皮片↓皮片浸泡在75%酒精中消毒↓1 × PBS (pH 7.4 )清洗皮片两遍↓皮片剪成(3-5)mm×(10-15)mm大小↓置于消化液中4℃消化过夜↓剥去表皮,并刮去真皮下的其他组织↓将组织块剪成1mm3 左右↓加入消化液,37℃消化至消化液浑浊↓停止消化,悬液过200目网筛↓收集细胞悬液,800
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