- ￥1500
- 尚恩生物(SUNNCELL)
- SNL-155
- 2026年05月29日
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- 文献和实验
- 技术资料
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细胞基本属性 |
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| 细胞名称 | BV2小鼠小胶质细胞 |
| 细胞别称 | BV-2 |
| 细胞货号 | SNL-155 |
| 来源 | 小胶质细胞；雌性；C57BL/6 |
| 细胞形态 | 圆形/上皮细胞样 |
| 细胞类型 | 转化细胞系 |
| 生长特性 | 半贴壁 |
| 收录 | 武大典藏中心CCTCC |
| 生物安全等级 | 2 |
| 培养条件 | DMEM+10% FBS+1% P/S（货号：SNLM-155) |
| 培养环境 | 37℃；5% CO2；饱和湿度 |
| 细胞简介 | BV-2细胞是由E·Blasi建立于1990年从C57BL/6小鼠建立的，由小鼠大脑小神经胶质细胞经逆转录病毒介导转染v-raf/v-myc获永生化，表达核v-myc、染色体v-raf癌基因，表面表达envgp70抗原。BV-2细胞保留有小神经胶质细胞多种形态、表征和功能特征。免疫组化结果显示，BV-2细胞为MAC1、MAC2阳性；而MAC3、胶质细胞原纤维酸性蛋白、半乳糖脑苷脂为阴性。 |
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文献和实验实验步骤 1. 小鼠用pH值7.4，0.1M PBS彻底穿心灌注。 2. 用剪刀去头。 3. 剥开头骨的软组织。 4. 除去下颌骨。 5. 除去头骨延髓到上颌骨之间的组织。 6. 手术剪刀，取出头骨顶部，顺时针方向切割，开始和结束于右后鼓膜钩。 7. 舀出大脑，维持组织的完整性。 8. 立即将脑组织置于预冷的流式细胞术缓冲液中（1％BSA 1mM的EDTA的 pH值7.4 0.1M PBS，50
实验步骤 为了检测小胶质细胞的吞噬功能，利用凋亡的神经祖细胞作为目标，因为在体外环境下它能最模拟自然条件下小胶质细胞的吞噬目标。 1. 将神经祖细胞（NPC）置于0.1M PBS 2mg/ml木瓜蛋白酶（Worthington）溶液中进行分离，37ºC作用30min。 2. 将分离的NPC 在紫外光下处理15-20min。 注：此步应该在一个很薄的塑料培养皿中进行，厚的塑料（如15或50毫升锥形管）将阻止
Elabscience | BV2细胞M1极化造模与流式检测，这份Protocol请收好
小胶质细胞，使其向M1表型倾斜，而M2保护性表型则相对不足，形成"促炎-神经损伤-更多DAMPs释放"的恶性循环[2,4]。因此，促进小胶质细胞从M1向M2表型的转化，已成为神经退行性疾病治疗策略的重要研究方向。 图2. 小胶质细胞的激活表型[3] 图中分别标明了诱导经典（M1）或替代（M2）激活途径的分子，并展示了不同极化细胞（M1、M2a、M2b、M2c 和 M2d）所表达的分子。 三、BV2细胞——研究小胶质细胞的“利器” BV2细胞系是源自新生小鼠小胶质细胞、经v-raf/v-myc逆转
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