大鼠转化生长因子β(TGF-β)ELISA试剂盒

大鼠转化生长因子β1(TGF-β1)ELISA试剂盒检测原理
试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验（ELISA）。往预先包被颗粒酶B（Gzms-B）抗体的包被微孔中，依次加入标本、标准品、HRP标记的检测抗体，经过温育并彻底洗涤。用底物TMB显色，TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的颗粒酶B（Gzms-B）呈正相关。用酶标仪在450nm 波长下测定吸光度（OD 值），计算样品浓度。
样品收集、处理及保存方法
1.  血清：使用不含热原和内毒素的试管，操作过程中避免任何细胞刺激，收集血液后，3000转离心10分钟将血清和红细胞迅速小心地分离。
2.  血浆：EDTA、柠檬酸盐或肝素抗凝。3000转离心30分钟取上清。
3.  细胞上清液：3000转离心10分钟去除颗粒和聚合物。
4.  组织匀浆：将组织加入适量生理盐水捣碎。3000转离心10分钟取上清。
5.  保存：如果样本收集后不及时检测，请按一次用量分装，冻存于-20℃，避免反复冻融，在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。
自备物品

1. 酶标仪（450nm）
2. 高精度加样器及枪头：0.5-10uL、2-20uL、20-200uL、200-1000uL
3. 37℃恒温箱

操作注意事项

1.   试剂盒保存在2-8℃，使用前室温平衡20分钟。从冰箱取出的浓缩洗涤液会有结晶，这属于正常现象，水浴加热使结晶完全溶解后再使用。
2.   实验中不用的板条应立即放回自封袋中，密封（低温干燥）保存。
3.   浓度为0的S0号标准品即可视为阴性对照或者空白；按照说明书操作时样本已经稀释5倍，最终结果乘以5才是样本实际浓度。
4.   严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。
5.   所有液体组分使用前充分摇匀。

试剂盒组成

注：标准品（S0-S5）浓度依次为：0、1、2、4、8、16 pg/mL
试剂的准备
 20×洗涤缓冲液的稀释：蒸馏水按1：20稀释，即1份的20×洗涤缓冲液加19份的蒸馏水。
洗板方法

1.   手工洗板：甩尽孔内液体，每孔加满洗涤液，静置1min后甩尽孔内液体，在吸水纸上拍干，如此洗板5次。
2.   自动洗板机：每孔注入洗液350μL，浸泡1min，洗板5次。

操作步骤

1.   从室温平衡20min后的铝箔袋中取出所需板条，剩余板条用自封袋密封放回4℃。
2.   设置标准品孔和样本孔，标准品孔各加不同浓度的标准品50μL；
3.   样本孔先加待测样本10μL，再加样本稀释液40μL；空白孔不加。 
4.   除空白孔外，标准品孔和样本孔中每孔加入辣根过氧化物酶（HRP）标记的检测抗体100μL，用封板膜封住反应孔，37℃水浴锅或恒温箱温育60min。
5.   弃去液体，吸水纸上拍干，每孔加满洗涤液，静置1min，甩去洗涤液，吸水纸上拍干，如此重复洗板5次（也可用洗板机洗板）。
6.   每孔加入底物A、B各50μL，37℃避光孵育15min。
7.   每孔加入终止液50μL，15min内，在450nm波长处测定各孔的OD值。

结果判断
 绘制标准曲线：在Excel工作表中，以标准品浓度作横坐标，对应OD值作纵坐标，绘制出标准品线性回归曲线，按曲线方程计算各样本浓度值。

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Irrational nitrogen (N) fertilizer management and application practices have led to a range of ecological and environmental problems that seriously threaten food security. In this study, an effective N fertilizer management strategy  was  established  for  improving  N  fertilizer  utilization  efficiency  (NUE).  Biochar,  N2-fixing  bacteria (Enterobacter cloacae), and a nitrification inhibitor (dicyandiamide, DCD) were simultaneously added to the soil during maize cultivation. The goal was to increase soil ammonium nitrogen content and NUE by regulating the relative  abundance,  enzyme  activity,  and  functional  gene  expression  of N  conversion-related  soil  microbes. Biochar combined with E. cloacae and DCD significantly increased soil N content, and the NUE reached 46.69 %. The relative abundance of Burkholderia and Bradyrhizobium and the activity of nitrogenase increased significantly during  biological  N2  fixation.  Further,  the  abundance  of the  nifH gene  was  significantly  up-regulated.  The relative abundance of Sphingomonas, Pseudomonas, Nitrospira, and Castellaniella and the activities of ammonia monooxygenase and nitrate reductase decreased significantly during nitrification and denitrification. Moreover, the abundance of the genes amoA and narG was significantly down-regulated. Correlation analyses showed that