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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
现货
- 英文名:
Ni-TED Agarose Resin 6FF
- 保质期:
4年
- 供应商:
翌圣生物科技(上海)股份有限公司
- 保存条件:
2-8℃保存
- 规格:
10mL
产品性质
| 基质 | 高度交联的6%琼脂糖凝胶 |
| 粒径 | 45-165 µm |
| 载量 | >15 mg His-tagged protein(27.5 KD)/mL基质 |
| 耐压 | 0.3 MPa,3 bar |
| 储存缓冲液 | 20%乙醇 |
| PH稳定性 | 4-10 (工作);2-14(CIP) |
| 化学稳定性 | 24 h耐受10 mM EDTA,5 mM DTT, 5 mM TCEP,20 mM β-巯基乙醇,1 M NaOH,6 M 盐酸胍 ;2 h耐受500 mM咪唑,100 mM EDTA |
注意事项
- 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
- 本产品仅作科研用途!
- 纯化流程
缓冲液使用原理:低咪唑上样,高咪唑洗脱。Buffer 在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤除菌。
平衡缓冲液:20 mM PB,0.5 M NaCl,pH 7.4
洗杂缓冲液:20 mM PB,0.5 M NaCl,0-30 mM 咪唑,pH 7.4
洗脱缓冲液:20 mM PB,0.5 M NaCl,50-500 mM 咪唑,pH 7.4
2 样品准备
在上样前将宿主细胞碎片通过离心等方式去除,7000 rpm离心15 min,收集上清。然后过 0.45um 的微孔滤膜。为了获得最大的载量,不要在样品蛋白溶液中添加咪唑。
3 装柱
1)用去离子水冲洗层析柱底筛板与接头,确保柱底筛板上无气泡,关闭柱底出口,并在柱底部留出1-2 cm的去离子水。
2)将树脂悬浮,小心地将浆液连续地倒入层析柱中。用玻璃棒沿着柱壁倒入浆液可减少气泡的产生。
3)如果使用储液器,应立即在层析柱和储液器中加满水,将进样分配器放置于浆液表面,连接至泵上,避免在分配器或进样管中产生气泡。
4)打开层析柱底部出口,开启泵,使其在设定的流速下进行。最初应让缓冲液缓慢流过层析柱,然后缓慢增加至最终流速,这样可避免液压对所形成柱床的冲击,也可以避免柱床形成的不均匀。如达不到推荐的压力或流速,可以用所用泵的最大流速,这样也可以达到一个较好的装填效果。当柱床高度稳定后,在最后的装柱流速下至少再上3倍柱体积的去离子水。标上柱床高度。【注】在随后的色谱程序中,不要超过最大装柱流速的75%。
5)关闭泵,关闭层析柱出口。
6)如使用储液器,去除储液器,将分配器置于层析柱中。
7)将分配器推向柱子至标记的柱床高度处。允许装柱液进入分配器,锁紧分配器接头。
8)将装填好的层析柱连接至泵或色谱系统中,开始平衡。如需要可重新调整分配器。
4 样品纯化
装柱后,可用各种常规的中压色谱系统,以AKTA使用为例进行说明:
1)将泵管道注满去离子水。去掉产品上塞,连接至色谱系统中,打开下出口,将纯化柱连接到色谱系统中,注意旋紧。
2)3-5倍柱体积去离子水冲洗纯化柱。
3)至少5倍柱体积的平衡缓冲液平衡色谱柱。1 mL规格预装柱推荐流速为1 mL/min,5 mL预装柱推荐流速为5 mL/min。
4)利用泵或注射器上样,收集流出液,以便SDS-PAGE检测蛋白结合情况。【注】若样品粘度增加,即使上样体积很少也会导致层析柱很大反压;上样量不要超过柱子的结合能力;大量样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。
5)洗杂缓冲液冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少10-15个柱体积)。
【注】在样品和结合缓冲液中加入低浓度咪唑可以提高样品纯度。
6)洗脱缓冲液一步法或梯度法进行洗脱。一步法洗脱中一般5倍柱体积洗脱液即可。梯度洗脱可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多来分离不同结合强度的蛋白质。
7)随后依次用2倍柱体积的1 mol/L NaOH和5倍柱体积的去离子水清洗填料。5倍柱体积的20%乙醇平衡树脂,最后将填料保存在20%乙醇的1×PBS中,置于4 ℃保存。
5 SDS-PAGE检测
将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。
二、在位清洗
当填料使用过程中发现反压过高或者填料上面出现明显的污染时,需对其进行在位清洗(Cleaning-in-Place,CIP)。建议按照下面操作去除填料上残留的污染物,如沉淀蛋白、疏水蛋白和脂蛋白等。
1 去除强疏水结合的蛋白,脂蛋白和脂类
使用30%异丙醇清洗5-10个柱体积,接触时间为15-20 min可以去除此类污染物。之后再用去离子水清洗10倍柱体积。也可以选择使用含有去污剂的酸性或者碱性溶液清洗填料2倍柱体积。例如含有0.1-0.5%非离子去污剂的0.1 M醋-酸溶液,接触时间为1-2 h。去污剂处理后,需用70%的乙醇清洗5倍柱体积,彻底去除去污剂。最后利用去离子水清洗10倍柱体积。
2 去除离子作用结合的蛋白
使用1.5 M NaCl 溶液接触10-15 min,之后用去离子水清洗10倍柱体积。
HB221104
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