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His标签蛋白琼脂糖高速纯化树脂(Ni-TED Agaros

e Resin 6FF)
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  • ¥795
  • 翌圣生物(Yeasen)已认证
  • 20497ES10
  • 上海翌圣
  • 2025年12月19日
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    • 英文名

      Ni-TED Agarose Resin 6FF

    • 保质期

      4年

    • 供应商

      翌圣生物科技(上海)股份有限公司

    • 保存条件

      2-8℃保存

    • 规格

      10mL

    产品描述Ni-TED Agarose Resin 6FF以高度交联的6%琼脂糖凝胶为基质,通过化学方法偶联三(羧甲基)乙-二胺(TED)为配体,螯合镍离子(Ni2+)而制备成的一种介质Ni-TED Agarose Resin 6FF与Ni2+具有5个螯合位点,使得其对于 Ni2+具有很强的约束力,这一特性赋予了本品具有优异的 DTT 以及 EDTA 耐受性。本品用于带有 His 标签的蛋白纯化时拥有稳定性高、复杂环境中一步纯化蛋白、目标蛋白质吸附量大(但会低于Ni-NTA)、蛋白洗脱条件温和、介质易再生、重复利用率高等优点。
    产品性质产品细节图片1
    基质 高度交联的6%琼脂糖凝胶
    粒径 45-165 µm
    载量 >15 mg His-tagged protein27.5 KD/mL基质
    耐压 0.3 MPa,3 bar
    储存缓冲液 20%乙醇
    PH稳定性 4-10 (工作);2-14CIP)
    化学稳定性 24 h耐受10 mM EDTA5 mM DTT 5 mM TCEP20 mM β-巯基乙醇1 M NaOH6 M 盐酸胍 2 h耐受500 mM咪唑,10mM EDTA
     运输和保存方法冰袋运输。2-8℃保存。有效期4年。
     注意事项
    1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
    2. 本产品仅作科研用途!
     
    使用方法
    • 纯化流程
    1 缓冲液的准备
    缓冲液使用原理:低咪唑上样,高咪唑洗脱。Buffer 在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤除菌。
    平衡缓冲液:20 mM PB0.5 M NaClpH 7.4
    缓冲液:20 mM PB0.5 M NaCl0-30 mM 咪唑,pH 7.4
    洗脱缓冲液:20 mM PB0.5 M NaCl50-500 mM 咪唑,pH 7.4
    2 样品准备
    在上样前将宿主细胞碎片通过离心等方式去除,7000 rpm离心15 min,收集上清。然后过 0.45um 的微孔滤膜。为了获得最大的载量,不要在样品蛋白溶液中添加咪唑。
    3 装柱
    1)用去离子水冲洗层析柱底筛板与接头,确保柱底筛板上无气泡,关闭柱底出口,并在柱底部留出1-2 cm的去离子水。
    2)将树脂悬浮,小心地将浆液连续地倒入层析柱中。用玻璃棒沿着柱壁倒入浆液可减少气泡的产生。
    3)如果使用储液器,应立即在层析柱和储液器中加满水,将进样分配器放置于浆液表面,连接至泵上,避免在分配器或进样管中产生气泡。
    4)打开层析柱底部出口,开启泵,使其在设定的流速下进行。最初应让缓冲液缓慢流过层析柱,然后缓慢增加至最终流速,这样可避免液压对所形成柱床的冲击,也可以避免柱床形成的不均匀。如达不到推荐的压力或流速,可以用所用泵的最大流速,这样也可以达到一个较好的装填效果。当柱床高度稳定后,在最后的装柱流速下至少再上3倍柱体积的去离子水。标上柱床高度。【注】在随后的色谱程序中,不要超过最大装柱流速的75%。
    5)关闭泵,关闭层析柱出口。
    6)如使用储液器,去除储液器,将分配器置于层析柱中。
    7)将分配器推向柱子至标记的柱床高度处。允许装柱液进入分配器,锁紧分配器接头。
    8)将装填好的层析柱连接至泵或色谱系统中,开始平衡。如需要可重新调整分配器。
    4 样品纯化
    装柱后,可用各种常规的中压色谱系统,以AKTA使用为例进行说明:
    1)将泵管道注满去离子水。去掉产品上塞,连接至色谱系统中,打开下出口,将纯化柱连接到色谱系统中,注意旋紧。
    2)3-5倍柱体积去离子水冲洗纯化柱。
    3)至少5倍柱体积的平衡缓冲液平衡色谱柱。1 mL规格预装柱推荐流速为1 mL/min,5 mL预装柱推荐流速为5 mL/min。
    4)利用泵或注射器上样,收集流出液,以便SDS-PAGE检测蛋白结合情况。【注】若样品粘度增加,即使上样体积很少也会导致层析柱很大反压;上样量不要超过柱子的结合能力;大量样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。
    5)洗杂缓冲液冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少10-15个柱体积)。
      【注】在样品和结合缓冲液中加入低浓度咪唑可以提高样品纯度。
    6)洗脱缓冲液一步法或梯度法进行洗脱。一步法洗脱中一般5倍柱体积洗脱液即可。梯度洗脱可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多来分离不同结合强度的蛋白质。
    7)随后依次用2倍柱体积的1 mol/L NaOH5倍柱体积的去离子水清洗填料5倍柱体积的20%乙醇平衡树脂,最后将填料保存在20%乙醇的1×PBS中,置于4 ℃保存。
    5 SDS-PAGE检测
    将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。
    二、在位清洗
    当填料使用过程中发现反压过高或者填料上面出现明显的污染时,需对其进行在位清洗(Cleaning-in-Place,CIP)。建议按照下面操作去除填料上残留的污染物,如沉淀蛋白、疏水蛋白和脂蛋白等。
    1 去除强疏水结合的蛋白,脂蛋白和脂类
    使用30%异丙醇清洗5-10个柱体积,接触时间为15-20 min可以去除此类污染物。之后再用去离子水清洗10倍柱体积。也可以选择使用含有去污剂的酸性或者碱性溶液清洗填料2倍柱体积。例如含有0.1-0.5%非离子去污剂的0.1 M醋-酸溶液,接触时间为1-2 h。去污剂处理后,需用70%的乙醇清洗5倍柱体积,彻底去除去污剂。最后利用去离子水清洗10倍柱体积。
    2 去除离子作用结合的蛋白
    使用1.5 M NaCl 溶液接触10-15 min,之后用去离子水清洗10倍柱体积。
    HB221104
     

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