- ￥3490
- 博尔森/BIOESN
- BES232868P
- 中国
- 2025年07月12日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
50
- 英文名：
Ebola Virus(EBOV)
- 保质期：
一年
- 供应商：
上海博尔森生物科技有限公司
- 保存条件：
-20℃
【包装规格】50T/盒
【预期用途】
埃博拉病毒RT-PCR试剂盒采用Taqman荧光探针的技术，在反应过程中每一种检测菌特异的荧光探针跟靶核酸杂交, 同时被Taq酶水解, 把探针上的荧光基团和淬灭基团分开, 从而通过荧光增量来实时判断被检菌的存在。 2. 特异性：该系列试剂盒选用的引物及Taqman荧光探针均经过生物信息学分析，自建庞大数据库的详尽比对，确保所用的每一条引物和探针均为种属或血清型特异的基因序列区段，可实现对细菌种属及血清型的特异检测。 3. 重现性：该系列所有产品均经过大量实验菌株的验证。 4. 灵敏性：该系列产品可实现对检测菌的高灵敏检测，当样品中细菌的浓度达到103cfu/ml（部分别检测菌当达到时102cfu/ml）时，可实现对其的直接检测，无需繁琐的增菌过程。 5. 实用性：检测范围广，涵盖了对人体危害较为严重的16种呼吸道及肠道致病菌，可实现对临床样品及其他环境取样的快速检测，整个检测过程仅需2-3个小时。 6. 优势1：序列资源丰富，公司还进行了大量菌株的序列破译，从理论上保证所选引物具有良好的保守性和特异性。 7.优势2：该系列试剂盒均经过大量的保守性及特异性实验验证，凭借公司拥有的丰富的菌种资源，每一种检测试剂盒均经过了20余种标准菌株和临床菌株的保守性验证及40余种近缘标准菌株和临床菌株的特异性验证，确保在使用过程中不会出现任何的假阳性及假阴性报告结果。，仅限科研用途。本产品不提供活体样品做阳性对照，仅提供人工合成的特异性 DNA 片段标准品作为阳性对照，仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗用途。
【检验原理】
本试剂盒采用 PCR技术，针对埃博拉病毒的基因高度保守区域设计特异性引物，用 PCR 技术对埃博拉病毒的核酸进行体外扩增检测，在反应体系中含埃博拉病毒核酸模板的情况下，PCR 反应进行特异性扩增，利用琼脂糖凝胶电泳技术对 PCR 扩增产物进行检测，依据特异性扩增片段的结果，判断待检样品中是否含有埃博拉病毒性成分，实现检测结果的定性分析。
【试剂组成】
| 名称 | 规格 |
| 埃博拉病毒扩增液 | 50μL×1管 |
| 埃博拉病毒反应液 | 950μL×1管 |
| 埃博拉病毒阳性质控品 | 50μL×1管 |
| 埃博拉病毒阴性质控品 | 50μL×1管 |
| 说明书 | 1份 |
说明：1）不同批号的试剂盒组分不可交互使用。2）试剂盒内各试剂组份足够包装规格所标示的检测次数。
【储存条件及有效期】
20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融次数不超过10次。有效期12个月。
【自备物品及仪器】
无 DNA/RNA 酶的 1.5mL 离心管，0.2mL PCR 反应管，滤芯吸头(规格:10μL,200μL,1000μL)，离心机，振荡混合器，各种规格的移液器，琼脂糖，电泳槽，电泳仪，凝胶成像系统。
【标本采集】
1. 根据实际情况可采取食品、粪便、呕吐物、口腔样本，唾液、咽喉部鼻孔眼部和肛门拭子及病毒培养物作为检测样本。
2. 应避免样本间交叉污染，样本采集后应及时检测，也可保存于-20±5℃待检，长期保存应置于-70℃以下。
【保存和运输】
上述标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-70℃，但不能超过 6 个月，标本运送应采用 2~8℃冰袋运输，严禁反复冻融。
【使用方法】
1. 样品处理（样本处理区）
1.1 样本前处理
取悬浮的口腔样本或粪便样本 100ul，加入 1.5ml 离心管中，用 DNA 核酸提取试剂盒进行提取即可。
1.2 DNA 提取
根据您实验室的具体情况和样品类型，选择适当的提取策略方法。为了使实验结果稳定、有效、可靠，我们建议使用商品化的试剂盒进行提取，严格按照对应试剂盒说明书进行操作，样本核酸提取过程中应避免污染，提取好的模板样品如不能立即检测，建议-15℃以下保存。
推荐采用我们公司研发生产的试剂盒：Hypure 病毒基因组 DNA 提取试剂盒(离心柱法)
2. 试剂配制（试剂准备区）
2.1 从-15℃以下冰箱中取出试剂盒平衡到室温（20～25℃），注意避免强光照射，待完全溶解后振荡混匀并低速离心 10 s，使用低吸附吸头分液取样，避免试剂损失和浪费。
2.2 根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；样品每满 7 份，多配制 1 份)，每测试反应体系配制如下表：
| 试剂 | 埃博拉病毒反应液 | 埃博拉病毒扩增液 |
| 用量（样本数为N） | 19μL | 1μL |
2.3 在适当容积的无菌离心管中加入上述试剂，充分振荡混匀后 2000 rpm 离心 10 s，按照 20 μL/管分装量将试剂分装至八联 PCR 反应管中。
2.4 盖紧八联 PCR 反应管盖, 并注意做好相应标识（请标记在八联 PCR 反应管盖两端突出部位，切勿标记在八联 PCR 反应管盖中间）。将 PCR 反应管转移至样本准备区，剩余试剂放回-15℃以下冰箱冷冻保存。
3. 加样（样本处理区）
将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL，加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀，短暂离心，核酸加样过程中应避免污染。
备注：模板浓度高或存在 PCR 抑制物，需用超纯水稀释模板 DNA，DNA 浓度低于 50ng/ul，可加 5μL 模板，高浓度 DNA 可能抑制 PCR 反应。
4. PCR 扩增（核酸扩增区）
4.1 将待检测反应管置于 PCR 仪反应槽内, 并记录放置顺序；
4.2 推荐循环参数设置：
| 步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 |
| 1 | 1 cycle | 95℃ | 3min |
| 2 | 35 cycle | 95℃ | 10sec |
| 58℃ | 15sec | ||
| 72℃ | 20sec | ||
| 3 | 1 cycle | 72℃ | 5min |
| 4 | 1 cycle | 4℃ | Hold |
5. 结果分析判定
5.1 电泳检测
取 10-20 μL PCR 产物。电泳检测 PCR 产物。本产品提供的扩增液在扩增结束后可以直接上样，不需要另外再加 loading buffer。
5.2 电泳结果判断
PCR 产物阳性对照必须有目的片段大小的条带出现，阴性对照必须无任何扩增，否则实验无效。对没有扩增产物的样品，可以稀释 10 倍后重复 PCR 扩增以排除PCR 抑制剂的感染。
6. 检测方法的局限性
Ø 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；
Ø 样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；
Ø 阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；
Ø 不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；
Ø 试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果。
7. 注意事项
Ø 所有操作严格按照说明书进行；
Ø 试剂盒内各种组分使用前应自然融化，混匀并短暂离心；
Ø 反应液应避光保存；
Ø 反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；
Ø 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；
Ø 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；
Ø 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；
Ø 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
【厂家信息】：
Ø 公司名称：上海博尔森生物科技有限公司
Ø 网址：www.bioesn.net
特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！
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文献和实验。 【产品研发意义】 埃博拉出血热(EHF)是由埃博拉病毒(Ebola virus，EBOV)引起的一种急性出血性传染病，发病率快，致死率高，是人类危害最严重的传染病之一，对公共卫生安全和人类的健康有很大的威胁。 到目前为止，EHF还没有有效治疗的药物和疫苗。我国尚未有检测到EBOV病毒，为了防止EBOV进入我国，建立一种快速、准确、敏感的检测方法显得尤为重要。为此，我公司研制出埃博拉病毒Z亚型核酸荧光PCR检测试剂盒、埃博拉病毒Z、S亚型双重核酸荧光PCR检测试剂盒和埃博拉病毒Z、S、B、C、R
请教real time PCR的RT部分能否使用传统半定量RT-PCR试剂盒的反转录部分？
各位老师： 您们好！偶欲做几个基因的RT-PCR实验。偶先用传统的半定量两步法RT-PCR试剂盒(TaKaRa DRR019A)扩增了几个基因，并用该试剂盒反转录了不少cDNA。但还有2个基因偶打算用real time PCR法来扩增。拟采用TaKaRa DRR041S试剂盒。但是TaKaRa DRR041S试剂盒说明书上写的反转录步骤是使用另外一个单独的RT Reagents (TaKaRa DRR033A)，得到cDNA再用TaKaRa DRR041S试剂盒扩增。但是仅一个RT
的5'和3’末端的有效方法，以其简单、快速、廉价等优势而受到越来越多的重视。经典的RACE技术是由Frohman等(1988)发明的一项技术，主要通过RT-PCR技术由已知部分cDNA序列来得到完整的cDNA5’和3’端，包括单边PCR和锚定PCR。该技术提出以来经过不断发展和完善，克服了早期技术步骤多、时间长、特异性差的缺点(Frohman等,1995:Schaefer,l995: Chen,1998: Bespalova等,1998: Matz等11999)。对传统RACE技术的改进主要是引物设计及RT-PCR
