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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
低温保存
- 保质期:
6个月
- 英文名:
CoQ细胞色素C还原测试盒
- 库存:
571
- 供应商:
上海机纯实业有限公司
- 规格:
25管/24样

注 意 :正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
线粒体复合体Ⅲ(EC 1.10.2.2)又称CoQ-细胞色素C还原酶,广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体中,是线粒体呼吸电子传递链主路和支路的共有成分,负责把还原型CoQ的氢传递给细胞色素C,生成还原型细胞色素C。
测定原理:
与氧化型细胞色素C不同,还原型细胞色素C在550nm有特征光吸收,因此550nm光吸收增加速率能够反映线粒体复合体Ⅲ酶活性。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
试剂一:25mL×1瓶,-20℃保存;
试剂二:5mL×1瓶,-20℃保存;
试剂三:0.5 mL×1支,-20℃保存;
试剂四:液体20mL×1瓶,4℃保存;
试剂五:粉剂×1支,-20℃保存;
试剂六:液体2.5mL×1瓶,-20℃保存;
样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1、准确称取0.1g组织或收集500万细菌或细胞,加入1mL试剂一和10uL 试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2、将匀浆600g,4℃离心5min。
3、弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心10min。
4、上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅲ(此步可选做)。
5、步骤④中的沉淀即为线粒体,加入200uL试剂二和2uL 试剂三,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10秒,重复30次),用于复合体Ⅲ酶活性测定。
测定步骤:
1、分光光度计预热30min以上,调节波长至550nm,蒸馏水调零。
2、样本测定
(1)工作液的配制:临用前把试剂五转移到试剂四中混合溶解,置于37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)孵育5min;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
(2)在1mL玻璃比色皿中加入40μL样本、100μL试剂六和800μL工作液,立即混匀,记录550nm处初始吸光值A1和 2min后的吸光值A2,计算ΔA=A2-A1。
复合体Ⅲ活力单位的计算:
(1) 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟催化产生1 nmol 还原型细胞色素C定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅲ活力(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(Cpr×V样) ÷T=615×ΔA÷Cpr此法需要自行测定样本蛋白质浓度。
(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每g组织每分钟催化产生1nmol 还原型细胞色素C定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅲ活力(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=124×ΔA÷W
(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟催化产生1nmol还原型细胞色素C定义为一个酶活力单位。复合体Ⅲ活力(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.248×ΔAV反总:反应体系总体积,9.4×10-4 L;ε:细胞色素C摩尔消光系数,1.91×104 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.04 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,2 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL; W:样本质量,g;500:细胞或细菌总数,500万。
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文献和实验可以看出CoQ在复合物Ⅰ与Ⅲ,Ⅱ与Ⅲ之间传递还原当量,Cyt c在复合物Ⅲ与Ⅳ之间传递还原当量。他们又将这四种复合物1:1:1:1的比例混合,加上CoQ和Cyt c重组,基本上恢复了线粒体原有的催化能力。 借助上述 实验方法 ,呼吸链各组分的排列顺序已基本明确,但仍有些不一致的看法,其中以CoQ至细胞色素C这一部分研究得还很不清楚,对于Fe-S和CoQ的定位和数量也有争议。 (二)氧化呼吸链 1.NADH氧化呼吸链 人体
自由基(如羟自由基·OH)、氢自由基(H·)、碳自由基、脂自由基等,其中·OH的化学性质最活泼。人体内自由基的产生有两方面:一是环境中的高温、辐射、光解、化学物质等导致共价键均裂产生的外源性自由基[5]:二是体内各种代谢反应产生的内源性自由基。内源性自由基是人体自由基的主要来源,其产生的主要途径有①经线粒体呼吸链电子泄漏产生线粒体内自由基[6]:线粒体呼吸链是细胞有氧呼吸的重要部位,一般情况下一分子还原氢、两个电子经呼吸链传递给氧生成H20。如果呼吸链还原电位较低的部位出现电子泄漏,就会产生自由基,其常见部位
标记法、PI单染色法流式细胞仪检测等。 三、样品来源不同选择 组织:主要用形态学方法(HE染色,透射电镜、石蜡包埋组织切片进行原位末端标记,ELISA或将组织碾碎消化做琼脂糖凝胶电泳)。 培养的细胞:几乎所有方法 1、早期检测: (1)PS(磷脂酰丝氨酸)在细胞外膜上的检测 (2)细胞内氧化还原状态改变的检测 (3)细胞色素C的定位检测 (4) 线粒体膜电位变化的检测 2、晚期检测: 细胞凋亡晚期中,核酸内切酶在核小体之间剪切核DNA,产生大量长度在180-200 bp











