医用冷藏冷冻箱YCD-FL300

流式细胞仪检测线粒体膜电位

，可产生绿色荧光。 通过JC-1从红色荧光到绿色荧光的转变可检测到细胞膜电位的下降，可将JC-1荧光颜色的转变作为细胞凋亡早期的检测指标。常用红绿荧光的相对比例来衡量线粒体去极化的比例。 JC-1单体的最大激发波长为514 nm，最大发射波长为529 nm；JC-1聚合物的最大激发波长为585 nm，最大发射波长为590 nm。在流式图上表现为FL1和FL2双阳性，而凋亡细胞则大多为FL1单阳性。 二、线粒体膜电位检测实验操作指南 1．根据实验需求配制1× JC-1 Assay Buffer

流式CBA方法--检测大鼠细胞因子实验方案

10,000 2.4.2加入50ul未知样品到分析管里，轻轻混匀捕捉混合微球，吸取50ul加入分析管中，室温孵育1小时。 2.4.3每个待测管中加入PE检测试剂50ul，轻轻震荡混匀。室温孵育2小时。 2.4.4加入1ml清洗液Wash Buffer。200g离心5分钟，去上清。 2.4.5加入300ul清洗液Wash Buffer清洗液，震荡重悬微球。 2.5机器条件设定       BD .FACSCalibur包含488蓝激光

浅谈流式核内蛋白染色步骤

浅谈流式核内蛋白染色步骤：1、染表面抗体 按说明书条件孵育全血样品孵育抗体后加入不含固定剂的溶血素（按厂家说明操作）溶血完毕。2、用2ml预冷流式染色缓冲液（Flow Cytometry Staining Buffer）洗涤细胞300-400g离心5分钟，去上清。3、用3倍体积的固定/破膜稀释液（#00-5223）稀释固定/破膜浓缩液（#00-5123）制成固定/破膜工作液，注意要新鲜配制，每个样本的用量为1ml 。4、旋涡震荡重悬细胞后加入1ml的固定/破膜工作液（1:3稀释好）再次旋涡混匀