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- 详细信息
- 技术资料
- 保存条件:
2-8℃
- 库存:
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- 供应商:
北京索莱宝科技有限公司
- 规格:
2ml
琼脂糖凝胶亲和层析介质rProteinA/G
rProtein A/G Beads
货号:R8281
规格:2ml/5ml
保存:2-8℃
纯化流程:
本产品分为两种应用:抗体纯化流程和免疫沉淀流程,免疫沉淀流程还分为直接法和间接法。下面操作就从这三个方面详细介绍。
1、Buffer 的准备
所用水和Buffer 在使用之前建议用 0.22µm 或 0.45µm 滤膜过滤。
结合/ 洗杂Buffer:0.15MNaCl,20mMNa2HPO4,pH7.0
洗脱Buffer: 0.1M 甘氨酸,pH3.0
中和液:1MTris-HCl pH8.5
交联Buffer: 0.2M 三醇胺,pH8.2
终止液:50mMTris,pH7.5
2、样品准备
上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和 pH 值,可以用结合/洗杂缓冲液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用结合/洗杂缓冲液透析。
样品在上样前建议离心或用 0.22µm 或 0.45µm 滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
3、抗体纯化流程操作方法
非变性洗脱法:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。向离心管中加入 5 倍柱体积的洗脱 Buffer,用移液器吹打 5 次,混匀,然后在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,10min 后, 离心,500 转离心 1min,吸取上清液,收集洗脱组分,即为目标抗原,收集上清液至新的离心管中,并立即加入十分之一体积的中和液,将洗脱组分 pH 调节至 7.0-8.0,用于后期功能分析。
1)抗体与抗原混合:将抗体与含有目的蛋白的裂解液混合,室温震荡孵育 30min-60min,或者 2-8 度孵育过夜,取
决于抗体与抗原的结合效率以及抗原的稳定性,需要自己优化结合条件。形成抗原-抗体混合物。
注意:抗体的加入量要考虑到下面填料的量,抗体的加入量过多会影响到抗原-抗体混合物与填料的结合。建议抗体加入量为填料 80%的最大载量。
非变性洗脱法:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。向离心管中加入 5 倍柱体积的洗脱 Buffer,用移液器吹打 5 次,混匀,然后在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,10min 后, 离心,500 转离心 1min,吸取上清液,收集洗脱组分,即为目标抗原,收集上清液至新的离心管中,并立即加入十分之一体积的中和液,将洗脱组分 pH 调节至 7.0-8.0,用于后期功能分析。
填料清洗
rProtein A/G Beads 可以重复使用而无需再生,但随着一些变性物质的沉淀和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,严重影响柱子的性能,这时需要对树脂进行清洗。去除一些沉淀或变性物质用 2 倍柱体积的 6M 盐酸胍溶液进行清洗,然后立即用 5 倍柱体积的PBS,pH7.4 清洗。去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质 用3-4 倍柱体积的 70%乙醇或 2 倍柱体积的 1%TritonX-100 清洗,然后然后立即用 5 倍柱体积的PBS,pH7.4 清洗。
ProteinA 和 ProteinG 对不同抗体的结合能力:
++++ =结合能力强;++ =结合能力中等;— =结合能力弱或没有结合
rProtein A/G Beads
货号:R8281
规格:2ml/5ml
保存:2-8℃
| 指标 | 性能 |
| 基质 | 4%琼脂糖微球 |
| 配体 | 重组蛋白A/G |
| 载量 | >30mg 人 lgG/ml 介质 |
| 粒径(µm) | 45-165 |
| 最大流速 | 0.1MPa,1bar |
| pH 稳定范围 | 3-10 |
| 储存缓冲液 | 20%乙醇 |
| 储存温度 | 2°C-8°C |
本产品分为两种应用:抗体纯化流程和免疫沉淀流程,免疫沉淀流程还分为直接法和间接法。下面操作就从这三个方面详细介绍。
1、Buffer 的准备
所用水和Buffer 在使用之前建议用 0.22µm 或 0.45µm 滤膜过滤。
结合/ 洗杂Buffer:0.15MNaCl,20mMNa2HPO4,pH7.0
洗脱Buffer: 0.1M 甘氨酸,pH3.0
中和液:1MTris-HCl pH8.5
交联Buffer: 0.2M 三醇胺,pH8.2
终止液:50mMTris,pH7.5
2、样品准备
上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和 pH 值,可以用结合/洗杂缓冲液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用结合/洗杂缓冲液透析。
样品在上样前建议离心或用 0.22µm 或 0.45µm 滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
3、抗体纯化流程操作方法
- 将 rProtein A/G Beads 装入合适的层析柱,层析用 5 倍柱体积的结合 Buffer 进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。
- 将样品加到平衡好的 rProtein A/G Beads 中(保证目的蛋白与 rProtein A Beads 充分接触,提高目的蛋白的回收率),收集流出液。
- 用 10-15 倍柱体积的洗杂 Buffer 进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。
- 使用 5-10 倍柱体积的洗脱 Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。
- 依次使用 3 倍柱体积的结合Buffer 和 5 倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用 5 倍柱体积的 20%的乙醇平衡, 然后保存在等体积的 20%的乙醇中,置于 4 度保存,防止填料被细菌污染。
- SDS-PAGE 检测将使用纯化产品得到的样品(包括流出组分、洗杂组分和洗脱组分)以及原始样品使用 SDS-PAGE检测纯化效果。
-
- 抗体吸附
- 加入 0.5ml 结合 Buffer,悬浮填料(使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用),500 转离心 1min,吸弃上清。再重复两次。
- 向步骤 2)平衡的填料中加入抗体溶液,悬浮填料,室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,约 30min后,500 转离心 1min,收集上清液,留待检测。
- 向 3)的填料中加入 0.5ml 的洗杂Buffer,悬浮填料,进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,500 转离心 1min, 吸弃上清。再重复两次。
- 抗体交联 (备选)
- 向清洗过的填料中加入 1ml 交联 Buffer,500 转离心 1min,吸弃上清。
- 再向其中加入 1ml20mMDMP(dimetylpimelimidatedihydrochloride)的交联 Buffer,此试剂需要现用现配,悬浮填料,在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,促使 Buffer 和填料充分接触,约 30min 后,500 转离心 1min,吸弃上清。
- 再向其中加入 1ml 终止液,悬浮填料,终止交联反应,在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,约15min 后,500 转离心 1min,再吸弃上清。
- 加入 0.5ml 的洗杂Buffer,悬浮填料,进行清洗,500 转离心 1min,吸弃上清。再重复两次。
- 抗原沉淀反应
- 抗原吸附:加入含有抗原的样品,用移液器轻轻吹打使抗原与填料-抗体复合物均匀分散。在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管 10min,使抗原与抗体充分结合,如结合力较弱则可在室温下反应 1h 或者在 4℃下反应过夜。
- 洗杂:将上述完成抗原吸附的填料-抗体-抗原复合物进行离心,500 转离心 1min,收集上清液,置于冰上以备后续检测。向离心管中加入 1ml 洗杂 Buffer,用移液器轻轻吹打使填料-抗体-抗原复合物均匀
- 分散,然后进行离心分离,500 转离心 1min,弃上清液。再重复洗涤两次。最后加入 1ml 洗杂液,用移液器将填料-抗体-抗原复合物悬液转移至新的 1.5ml 离心管中,并进行离心分离,500 转离心 1min,弃上清液。
- 抗原洗脱:提供以下两种抗原洗脱方案,可根据后期检测的需要选择不同的抗原洗脱方法。
非变性洗脱法:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。向离心管中加入 5 倍柱体积的洗脱 Buffer,用移液器吹打 5 次,混匀,然后在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,10min 后, 离心,500 转离心 1min,吸取上清液,收集洗脱组分,即为目标抗原,收集上清液至新的离心管中,并立即加入十分之一体积的中和液,将洗脱组分 pH 调节至 7.0-8.0,用于后期功能分析。
- 免疫沉淀间接法操作流程
1)抗体与抗原混合:将抗体与含有目的蛋白的裂解液混合,室温震荡孵育 30min-60min,或者 2-8 度孵育过夜,取
决于抗体与抗原的结合效率以及抗原的稳定性,需要自己优化结合条件。形成抗原-抗体混合物。
注意:抗体的加入量要考虑到下面填料的量,抗体的加入量过多会影响到抗原-抗体混合物与填料的结合。建议抗体加入量为填料 80%的最大载量。
- 填料准备:取适量的 rProtein A/G Beads 加入到 2ml 离心管中,500 转离心 1min,吸弃上清。加入 0.5ml 结合Buffer,悬浮填料(使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用),500 转离心 1min,吸弃上清。再重复两次。
- 抗原-抗体混合物的吸附:将步骤 2.5.1 中得到的抗原-抗体混合物加入到处理好的填料中,均匀,在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,促使样品和填料充分接触并吸附,约 30min 后,约 30min 后,500 转离心1min,收集上清液,留待检测。
- 洗杂:向上述离心管中加入 0.5ml 的洗杂Buffer,悬浮填料,进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,500 转离心 1min,吸弃上清。再重复两次。
- 抗原洗脱:提供以下两种抗原洗脱方案,可根据后期检测的需要选择不同的抗原洗脱方法。
非变性洗脱法:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。向离心管中加入 5 倍柱体积的洗脱 Buffer,用移液器吹打 5 次,混匀,然后在室温下置于翻转混合仪或者手工轻轻翻转离心管,10min 后, 离心,500 转离心 1min,吸取上清液,收集洗脱组分,即为目标抗原,收集上清液至新的离心管中,并立即加入十分之一体积的中和液,将洗脱组分 pH 调节至 7.0-8.0,用于后期功能分析。
填料清洗
rProtein A/G Beads 可以重复使用而无需再生,但随着一些变性物质的沉淀和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,严重影响柱子的性能,这时需要对树脂进行清洗。去除一些沉淀或变性物质用 2 倍柱体积的 6M 盐酸胍溶液进行清洗,然后立即用 5 倍柱体积的PBS,pH7.4 清洗。去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质 用3-4 倍柱体积的 70%乙醇或 2 倍柱体积的 1%TritonX-100 清洗,然后然后立即用 5 倍柱体积的PBS,pH7.4 清洗。
| 常见问题: | 原因分析 | 推荐解决方案 |
| 柱子反压过高 | 筛板被堵塞 | 清洗或更换筛板 |
| 填料被堵塞 | 按照填料清洗部分进行树脂清洗 | |
| 裂解液中含有微小的固体颗粒, 建议上柱前使用滤膜 (0.22or0.45µm)过滤,或者离心去除。 |
||
| 样品纯化过程中曲线不稳 | 样品或buffer 中有气泡 | 去除样品或柱子中的气泡 |
| 样品和 buffer 进行脱气 | ||
| 洗脱组分中没有目的蛋白 | 样品中抗体浓度太低 | 使用其抗原做配体的介质 |
| 抗体被降解 | 适当的提高洗脱 pH | |
| 回收率逐渐减低 | 上样量太多 | 减少上样量 |
| 柱子太脏,载量降低 | 按照填料清洗部分进行树脂清洗 |
ProteinA 和 ProteinG 对不同抗体的结合能力:
| 种属 | 亚型 | Protein A | Protein G | Protein A/G |
| Human | IgA | varible | — | ++ |
| IgD | — | — | — | |
| IgE | — | — | — | |
| IgG1 | ++++ | ++++ | ++++ | |
| IgG2 | ++++ | ++++ | ++++ | |
| IgG3 | — | ++++ | ++++ | |
| IgG4 | ++++ | ++++ | ++++ | |
| IgM | varible | — | ++ | |
| Avianeggyolk | IgY | — | — | — |
| Cow | ++ | ++++ | ++++ | |
| Dog | ++++ | ++ | ++++ | |
| Goat | — | ++++ | ++++ | |
| Guineapig | IgG1 | ++++ | ++ | ++++ |
| IgG2 | ++++ | ++ | ++++ | |
| Hamster | + | ++ | ||
| Horse | TotalIgG | ++ | ++++ | ++++ |
| Koala | — | + | ||
| Liama | — | + | ||
| Monkey(rhesus) | ++++ | ++++ | ++++ | |
| Mouse | IgG1 | + | ++++ | ++ |
| IgG2a | ++++ | ++++ | ++++ | |
| IgG2b | +++ | +++ | +++ | |
| IgG3 | ++ | +++ | +++ | |
| IgM | variable | — | — | |
| Pig | +++ | +++ | ++++ | |
| Rabbit | TotalIgG | ++++ | +++ | ++++ |
| Rat | IgG1 | — | + | ++ |
| IgG2a | — | ++++ | ++++ | |
| IgG2b | — | ++ | ++ | |
| IgG3 | + | ++ | ++ | |
| Sheep | TotalIgG | +/- | ++ | ++ |
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