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犬细小病毒/犬瘟热病毒(CPV/CDV)核酸检测试剂盒(双重

荧光 PCR 法)
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  • ¥2750
  • YLKBIO
  • YLK-PCR0353
  • 国产
  • 2026年01月17日
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    • 英文名

      Canine Parvovirus and Canine Distemper Virus Detection Kit(Real-Time PCR Method)

    • 保质期

      1年

    • 供应商

      优利科(上海)生命科学有限公司

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50T

    犬细小病毒/犬瘟热病毒(CPV/CDV)核酸检测试剂盒(双重荧光 PCR 法)

    【产品名称】

    通用名称:犬细小病毒/犬瘟热病毒(CPV/CDV)核酸检测试剂盒(双重荧光 PCR 法)
    Name:Canine Parvovirus and Canine Distemper Virus Detection Kit(Real-Time PCR Method)
    【包装规格】25T/盒、50T/盒

    【预期用途】

    犬细小病毒病和犬瘟热病毒病是分别由犬细小病毒(Canine  parvoviruses,CPV)和犬瘟热病毒(Canine distemper virus,CDV)引起犬的两种烈性传染病。这两种疾病对犬(尤其是幼犬)会造成极高的致死率,给犬业养殖造成严重危害。CPV 自然感染的病例经常发生,即使进行 CPV 疫苗免疫后也会发病,幼犬的死亡率可达 20%-30%。CDV 能引起包括犬在内的多种动物发病,病死率高达 30-80%。因此对这两种疾病的准确诊断在兽医临床中具有重要的意义。
    本试剂盒适用于检测的犬肝、脾、肺等病变组织或泪液、鼻液、唾液、粪便等样本中犬细小病毒或犬瘟热   病毒,适用于这 2 种病原感染的辅助诊断。

    【检验原理】

    本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对犬细小病毒和犬瘟热病毒基因保守区特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对犬细小病毒和犬瘟热病毒基因保守区的 RNA 进行体外扩增检测, 用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

    产品细节图片1

    【试剂组成】

    包装规格 25T/盒 50T/盒
    CPV/CDV 反应液 500μL×1 管 500μL×2 管
    酶液 25μL×1 管 50μL×1 管
    CPV/CDV 阳性质控品 50μL ×1 管 50μL ×1 管
    阴性质控品 250μL ×1 管 250μL ×1 管
    说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

    【储存条件及有效期】

    -20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

    【适用仪器】

    ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

    【标本采集】

    病死犬可采集肝、脾、肺、等组织;活犬可采集血液、血清、泪液、鼻液、唾液、粪便。

    【保存和运输】

    上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输, 严禁反复冻融。

    【使用方法】

    1. 样品处理(样本处理区)
      1. 样本前处理
    组织样品:每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL灭菌离心管中;咽拭子样品直接取 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中。
      1. 核酸提取
    推荐采用优利科(上海)生命科学有限公司生产的核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取,请按    照试剂说明书进行操作。
    1. 试剂配制(试剂准备区)
    根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满
    10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
    试剂 CPV/CDV 反应液 酶液
    用量(样本数为 N) 20μL 1μL
    将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,21uL/管。
    1. 加样(样本处理区)
    将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
    1. PCR 扩增(核酸扩增区)
      1. 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
      2. 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;
    荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM、VIC, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
      1. 推荐循环参数设置:
    步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号
    1 1 cycle 42℃ 20min
    2 1 cycle 95℃ 10min
    3 40 cycles 94℃ 15sec
    55℃ 30sec


    产品细节图片2
    1. 结果分析判定
      1. 结果分析条件设定
    设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
      1. 结果判断
    FAM 通道为犬细小病毒检测结果,VIC 通道为犬瘟热病毒检测结果, 阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;
    可疑:检测通道 35<Ct 值≤38,建议重复检测,如果检测通道仍为 35<Ct 值≤38,且曲线有明显的增长曲线, 判定为阳性,否则为阴性;
    阴性:样本检测结果 Ct 值>38 或无 Ct 值。
    1. 质控标准
    阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示;
    阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
    1. 检测方法的局限性
    1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
    2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
    3. 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
    4. 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
    5. 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
    6. 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
    7. 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

    【注意事项】

    1. 所有操作严格按照说明书进行;
    2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
    3. 反应液应避光保存;
    4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
    5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
    6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
    7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
    8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

    产品细节图片3

    产品细节图片4

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