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- 技术资料
- 库存:
999
- 保质期:
12个月
- 供应商:
上海博尔森生物科技有限公司
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
48T 非一管式/48T 0.2PCR管
| 规格: | 48T 非一管式 | 产品价格: | ¥2466.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 48T 0.2PCR管 | 产品价格: | ¥2466.0 |
羊源性成分核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法GB标准)
产品说明物种鉴定系列可针对食品、饲料等样品中动物源性成分的特异核酸片段进行扩增,通过实时扩增曲线
判定结果。本产品用于羊源性成分的检测,检出限为 0.1%。
产品组成(48 测试)

适用仪器
ABI 7500、CFX 96、Mx 3005P、LineGene9600 等实时荧光 PCR 仪。
自备耗材和仪器
①冰盒;②移液器(0.5-10μL,10-100μL,100-1000μL)及配套灭菌吸头;③离心机;④涡旋混匀器;⑤金属浴。
注意事项
1.本试剂检测灵敏度高。为了防止污染,实验要分区操作。
1)第一区:试剂准备区。
2)第二区:样本制备区。
3)第三区:扩增及产物分析区。
★ 分区之间最好进行物理性隔离,避免人为因素造成的污染。
2.实验过程中穿戴工作服和乳胶手套,不同区域独立使用工具,需更换手套和实验服。
3.严格按照操作步骤操作,试剂配制和加样等步骤请严格按照说明书要求在冰盒上操作。
4.反应液中的成分对光敏感,应避光保存。试剂使用前要完全解冻,但应避免反复冻融,推荐使用前离心 30秒,并按检测频次将反应液以适当体积分管保存。
5.反应结束后,扩增管请置于密封袋内丢弃,当日清理,开盖易造成气溶胶污染,禁止开盖。
6.不同批号试剂请勿混合使用,在有效期内使用。
样品处理
参照《GB/T 38164-2019 常见畜禽动物源性成分检测方法 实时荧光 PCR 法》或其他标准处理样品,制备的样本保存待用。
样品的采集和制备是动物源性鉴别的重要步骤,为防止交叉污染,应使用一次性消耗品,研钵应经 160℃干烤2 h,其他不宜干烤或高压处理的器皿应使用 1%次氯酸na溶液浸泡。
取样应尽量采取肌肉组织,对于同一批样品,应多点采集合并后,作为一份样品进行均质,提取 DNA。
采样过程应快速完成,将采取的样品迅速放入组织搅碎机中进行均质成糜状,充分混匀,取 0.1 g 充分混匀的样品,采用液氮研磨或均质器均质。
详细步骤请按照标准操作。
实验操作
1. 试剂配制(试剂准备区,放置于冰盒中进行):
若有 N 个待检样品,则参照下表,按照 N+2 个数量计算各组分用量(N 个待检样品+1 个空白对照 NG+1 个阳性对照 PG),涡旋混匀,离心 30 秒,分装于 0.2ml PCR 管中。

2.模板制备(样本制备区)
建议使用动物组织基因组 DNA 提取试剂盒等商品化试剂盒,具体过程详见产品说明书。
3.添加模板(样本制备区,放置于冰盒上进行)
向步骤 1 每管反应液中分别加入 5μL 模板,顺序为 NG、待测样品模板、PG-羊源-P。盖好配套的 PCR 管盖后,涡旋混匀 30s,离心 1min,立即进行 PCR 扩增反应。
4.扩增反应(扩增及产物分析区)
使用荧光定量 PCR 仪,荧光基团选择 FAM(山羊)和 VIC(绵羊),淬灭基团选择 NONE(山羊)和 MGB(绵羊)。按下列条件设置扩增反应:

5.基线和阈值设定
基线调整取 3-15 个循环的荧光信号,阈值线应超过空白对照扩增曲线的最高点。
结果判定
检测样品 FAM 与 VIC 通道均 Ct≥40,曲线为直线或轻微斜线,无“S”型扩增曲线,可报告样品阴性,不含有羊源性成分或含量低于检测限;
检测样品 FAM 或 VIC 通道 Ct≤35,曲线呈“S”型扩增曲线,可直接报告样品阳性,含有羊源性成分;检测样品 FAM 与 VIC 通道均 35<Ct<40,需进行一次重复实验,若 FAM 与 VIC 通道均 Ct 值≥40 则为阴性,不含有羊源性成分或含量低于检测限;否则为阳性,含有羊源性成分。
NG 反应管结果显示“阴性”,PG 反应管结果显示“阳性”,此次检测结果有效,否则无效。如重复检测结果仍为无效,请与技术支持人员联系。
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羊源性成分核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法GB标准)
¥2466









