关键词: 实验动物 处死 标准操作规程(SOP)
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名称:实验动物处死(鼠,兔类)标准操作规程(SOP)
关键词:实验动物 处死 操作规则
目的:遵循安乐死的原则,在不影响动物实验结果的前提下,使实验动物短时间无痛苦地死亡。
主体内容:
一、颈椎脱臼(断颈)处死法
此法是将实验动物的颈椎脱臼,断离脊髓致死,为大、小鼠最常用的处死方法。操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部,右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方,造成颈椎脱臼,脊髓与脑干断离,实验动物立即死亡。
二、断头处死法
此法适用于鼠类等较小的实验动物。操作时,实验人员用左手按住实验动物的背部,拇指夹住实验动物右腋窝,食指和中指夹住左前肢,右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪断,使实验动物因脑脊髓断离且大量出血死亡。
三、击打头盖骨处死法
主要用于豚鼠和兔的处死。操作时抓住实验动物尾部并提起,用木锤等硬物猛烈打击实验动物头部,使大脑中枢遭到破坏,实验动物痉挛并死亡。
四、放血处死法
此法适用于各种实验动物。具体做法是将实验动物的股动脉、颈动脉、腹主动脉剪断或剪破、刺穿实验动物的心脏放血,导致急性大出血、休克、死亡。
如兔等大动物应在轻度麻醉状态下,在股三角做横切口,将股动脉、股静脉全部暴露并切断,让血液流出。操作时用自来水不断冲洗切口及血液,既可保持血液畅流无阻,又可保持操作台清洁,使实验动物急性大出血死亡。
五、空气栓塞处死法
处死兔类常用此法。向实验动物静脉内注入一定量的空气,形成肺动脉或冠状动脉空气栓塞,或导致心腔内充满气泡,心脏收缩时气泡变小,心脏舒张时气泡变大,从而影响回心血液量和心输出量,引起循环障碍、休克、死亡。一般空气栓塞处死法注入的空气量兔为20~50ml。
六、过量麻醉处死法
此法多用于处死豚鼠和家兔。快速过量注射非挥发性麻醉药(投药量为深麻醉时的30倍),或让动物吸入过量的乙醚,使实验动物中枢神经经过过度抑制,导致死亡。
七、毒气处死法
让实验动物吸入大量CO2等气体而中毒死亡。
主要参考文献:《中医实验动物学》
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这个模型可否用于检测肿瘤免疫细胞及免疫因子?
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具体定位
定位的距离是什么~是尾壳核,深度为6mm,小鼠深度1.5cm?应该不太像吧~还有注苏血体积大鼠2ul,小鼠2ml?不是吧~求解!因为本人目前在做大鼠脑出血,也要做小鼠的,但是看到此方法,有些疑问~求解
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转基因小鼠和野生型的繁育?
我们实验室要从日本买一种转基因小鼠回来繁育,不确定要不要一起买野生型的。请问各位老师前辈,野生型能不能像转基因小鼠一样繁育?买回来少量有没有价值?
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