结合体内双光子成像与光激活荧光标记显示骨骼肌线粒体动力学速率较低

Combining In Vivo 2-Photon Imaging with Photoactivatable Fluorescent Labeling Shows Low Rates of Mitochondrial Dynamics in Skeletal Muscle

作者信息Colleen L O'Reilly, Arik Davidyan, Katarzyna Cizio, Stephen M Doidge, Matthew P Bubak, Agnieszka K Borowik, Tommy L Lewis Jr, Benjamin F Miller
PMID40310022
发布时间2025-10-01
DOI10.1249/MSS.0000000000003748

实验完整度

研究包含体内成像、离体单纤维、体外细胞模型等多个独立证据层级,并进行了功能验证(钙成像、呼吸测量)和机制验证(蛋白标志物、运动干预)。

主要模型

年轻和年老C57Bl6小鼠的胫骨前肌(TA) 离体单根肌纤维 C2C12成肌细胞和肌管

重点核对

小鼠品系和年龄:C57Bl6,6个月和24个月 质粒电穿孔参数:10 μg质粒DNA,31 μl 0.4 U/ml透明质酸酶,86 V,10个脉冲,20 ms脉冲长度,2 mm电极间距,0.5 ms间隔 体内光激活参数:760 nm激光,10%功率,10次循环 成像时间:体内和离体每10分钟一次,共40分钟;体外每5秒一次,共10分钟 运动方案:跑步机10 m/min预热10分钟,然后5%坡度跑60分钟或至力竭

摘要

引言:线粒体动力学涉及两个截然相反的过程:融合和分裂。传统上,我们通过在不同时间点或体外模型中拍摄蛋白质标记物的快照来评估融合和分裂,以推断体内结果。最近的技术进步使得利用荧光显微镜观察体内线粒体动力学成为可能。方法:我们的研究改进了这一技术,以评估骨骼肌中的线粒体动力学,比较年轻(6个月)和年老(24个月)小鼠的体内情况,并与离体和体外模型进行对比。我们假设体外和离体模型比体内模型具有更高的动力学速率,且年轻动物比年老动物具有更高的速率。我们将线粒体基质靶向的光激活GFP电穿孔到年轻和年老C57Bl6小鼠的胫骨前肌(TA)中,并使用多光子显微镜成像。我们还测量了从电穿孔小鼠TA中分离的单根肌纤维以及转染相同质粒的C2C12肌管中的线粒体动力学速率。结果:我们发现体内动态事件的速率比先前指示的要慢,其中C2C12成肌细胞在所有模型中动态事件速率最快。我们还观察到年老动物的动态速率比年轻动物慢。最后,我们发现急性运动后年老动物的动态事件速率更高。结论:我们的数据表明,直接测量体内线粒体动力学速率是可行的。该技术为回答关于骨骼肌线粒体动力学的实验问题提供了有力工具。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何直接测量骨骼肌体内线粒体动力学速率,并比较不同年龄、模型及运动干预下的差异?
核心机制
线粒体动力学(融合和分裂)速率在体内较慢,且随年龄降低,急性运动可提高年老动物的速率。
主要证据
通过双光子成像结合光激活GFP测量TA肌肉中GFP扩散速率,发现体内速率低于体外,年老低于年轻,运动后年老增加。
研究意义
该技术为研究骨骼肌线粒体动力学提供了直接测量方法,有助于理解其在健康和疾病中的作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

质粒构建与电穿孔

将光激活GFP和mScarlet质粒导入骨骼肌,实现线粒体标记。

构建pCAG:2x-mtpaGFP p2a 2x-mtmScarlet质粒,通过电穿孔导入TA肌肉。

2

体内双光子成像

测量体内线粒体动力学速率。

电穿孔一周后,使用双光子显微镜成像,激活ROI后每10分钟采集图像,持续40分钟。

3

离体单纤维成像

比较离体单纤维的线粒体动力学速率。

体内成像后,分离TA单纤维,培养24小时后用405 nm激光激活,每10分钟成像,持续40分钟。

4

体外C2C12成像

比较体外细胞模型的线粒体动力学速率。

C2C12成肌细胞和分化后的肌管转染质粒,用405 nm激光激活,每5秒成像,持续10分钟。

5

运动干预

测试急性运动对线粒体动力学速率的影响。

动物在跑步机上以10 m/min适应两天,第三天在5%坡度下跑60分钟或力竭,然后进行体内成像。

6

蛋白标志物分析

评估融合和分裂蛋白表达水平。

收集TA肌肉,提取线粒体蛋白,通过毛细管Western blot检测MFN1、MFN2、OPA1、DRP1、p-DRP1、MFF和TOM20。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证模型特征
验证线粒体功能
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
NucleoBond Xtra Midi EF试剂盒Macherey-Nagel740412.5
透明质酸酶Sigma-Aldrich--
超声耦合剂Aquasonic 100--
镊子电极Harvard Apparatus--
BTX ECM830电穿孔仪Harvard Instruments--
尼康A1R多光子显微镜Nikon Instruments Inc--
相干变色龙视觉超可调谐红外激光器Coherent Corp.--
3D打印块----
金属头柱Neurotar--
25倍1.1数值孔径尼康水镜Nikon--
NIS-elements成像软件Nikon--
尼康Ti2-E显微镜Nikon Instruments Inc--
载物台培养箱Okolab USA Inc.--
Optimicroscan XY振镜扫描单元----
C2C12肌源细胞系ATCC--
DMEM培养基Gibco21063029
MatTek玻璃底培养皿MatTek--
JetPrime转染试剂----
Oxygraph-2k高分辨呼吸仪Oroboros Instruments--
Peirce660蛋白质定量试剂盒ThermoFisher Scientific22660
Peggy Sue毛细管Western blot系统ProteinSimple--
MFN1抗体Cell Signaling Technology14739
MFN2抗体Cell Signaling Technology11925
DRP1抗体Cell Signaling Technology8570
p-DRP1抗体Cell Signaling Technology4494
MFF抗体Cell Signaling Technology84580
OPA1抗体Cell Signaling Technology80471
TOM20抗体Cell Signaling Technology42406
Peggy Sue试剂盒ProteinSimpleSM-S001
总蛋白检测模块ProteinSimpleDM-TP01
谷氨酸SigmaG1626
苹果酸SigmaM1000
腺苷二磷酸SigmaA5285
琥珀酸SigmaS2378
细胞色素CSigmaC2506

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物饲养
C57Bl6小鼠,6个月和24个月,雄性和雌性,饲养条件(14:10光暗循环,恒温恒湿)
阅读提示:Methods: Animals
质粒电穿孔
质粒DNA量(10 μg),注射体积(30 μl),透明质酸酶浓度(0.4 U/ml),电穿孔参数(86 V,10个脉冲,20 ms脉冲长度,2 mm电极间距,0.5 ms间隔)
阅读提示:Methods: Electroporation of Plasmids
体内成像
成像设备(Nikon A1R多光子显微镜),激光波长960 nm,激活波长760 nm,激光功率(5-10%),激活激光功率(1%),循环次数(10),成像间隔(每10分钟),时长(40分钟)
阅读提示:Methods: Imaging, In vivo photo-activation of mt-paGFP
离体成像
单纤维分离方法,培养条件(DMEM,明胶包被),激活参数(405 nm,2%功率,每像素100μs),成像间隔(每10分钟),时长(40分钟)
阅读提示:Methods: Ex vivo photo-activation imaging
体外成像
C2C12培养条件(DMEM+10% FBS),转染试剂(JetPrime),分化条件(DMEM+10%马血清),激活参数(405 nm,2%功率,每像素100μs),成像间隔(每5秒),时长(10分钟)
阅读提示:Methods: In vitro photo-activation imaging
运动干预
跑步机适应(10 m/min,10分钟,两天),运动方案(10分钟10 m/min后5%坡度,60分钟或力竭)
阅读提示:Methods: Exercise Protocol
呼吸测量
纤维束分离,皂苷浓度(40 μM),底物浓度(谷氨酸10 mM,苹果酸2 mM,丙酮酸5 mM,ADP 5 mM,琥珀酸10 mM,CCCP 0.75 μM),细胞色素C(10 μM),抗霉素A(5 mM)
阅读提示:Methods: High-resolution respirometry
蛋白分析
TA肌肉量(20-30 mg),蛋白提取方法,抗体稀释倍数,内参(总蛋白)
阅读提示:Methods: Markers of mitochondrial remodeling