质粒构建与电穿孔
将光激活GFP和mScarlet质粒导入骨骼肌,实现线粒体标记。
构建pCAG:2x-mtpaGFP p2a 2x-mtmScarlet质粒,通过电穿孔导入TA肌肉。
Combining In Vivo 2-Photon Imaging with Photoactivatable Fluorescent Labeling Shows Low Rates of Mitochondrial Dynamics in Skeletal Muscle
研究包含体内成像、离体单纤维、体外细胞模型等多个独立证据层级,并进行了功能验证(钙成像、呼吸测量)和机制验证(蛋白标志物、运动干预)。
年轻和年老C57Bl6小鼠的胫骨前肌(TA) 离体单根肌纤维 C2C12成肌细胞和肌管
小鼠品系和年龄:C57Bl6,6个月和24个月 质粒电穿孔参数:10 μg质粒DNA,31 μl 0.4 U/ml透明质酸酶,86 V,10个脉冲,20 ms脉冲长度,2 mm电极间距,0.5 ms间隔 体内光激活参数:760 nm激光,10%功率,10次循环 成像时间:体内和离体每10分钟一次,共40分钟;体外每5秒一次,共10分钟 运动方案:跑步机10 m/min预热10分钟,然后5%坡度跑60分钟或至力竭
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
将光激活GFP和mScarlet质粒导入骨骼肌,实现线粒体标记。
构建pCAG:2x-mtpaGFP p2a 2x-mtmScarlet质粒,通过电穿孔导入TA肌肉。
测量体内线粒体动力学速率。
电穿孔一周后,使用双光子显微镜成像,激活ROI后每10分钟采集图像,持续40分钟。
比较离体单纤维的线粒体动力学速率。
体内成像后,分离TA单纤维,培养24小时后用405 nm激光激活,每10分钟成像,持续40分钟。
比较体外细胞模型的线粒体动力学速率。
C2C12成肌细胞和分化后的肌管转染质粒,用405 nm激光激活,每5秒成像,持续10分钟。
测试急性运动对线粒体动力学速率的影响。
动物在跑步机上以10 m/min适应两天,第三天在5%坡度下跑60分钟或力竭,然后进行体内成像。
评估融合和分裂蛋白表达水平。
收集TA肌肉,提取线粒体蛋白,通过毛细管Western blot检测MFN1、MFN2、OPA1、DRP1、p-DRP1、MFF和TOM20。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 质粒构建 | NucleoBond Xtra Midi EF试剂盒 | Macherey-Nagel | 740412.5 |
| 动物实验 | 透明质酸酶 | Sigma-Aldrich | -- |
| 超声耦合剂 | Aquasonic 100 | -- | |
| 镊子电极 | Harvard Apparatus | -- | |
| BTX ECM830电穿孔仪 | Harvard Instruments | -- | |
| 成像 | 尼康A1R多光子显微镜 | Nikon Instruments Inc | -- |
| 相干变色龙视觉超可调谐红外激光器 | Coherent Corp. | -- | |
| 3D打印块 | -- | -- | |
| 金属头柱 | Neurotar | -- | |
| 25倍1.1数值孔径尼康水镜 | Nikon | -- | |
| NIS-elements成像软件 | Nikon | -- | |
| 离体成像 | 尼康Ti2-E显微镜 | Nikon Instruments Inc | -- |
| 载物台培养箱 | Okolab USA Inc. | -- | |
| Optimicroscan XY振镜扫描单元 | -- | -- | |
| 体外成像 | C2C12肌源细胞系 | ATCC | -- |
| DMEM培养基 | Gibco | 21063029 | |
| MatTek玻璃底培养皿 | MatTek | -- | |
| JetPrime转染试剂 | -- | -- | |
| 呼吸测量 | Oxygraph-2k高分辨呼吸仪 | Oroboros Instruments | -- |
| 蛋白分析 | Peirce660蛋白质定量试剂盒 | ThermoFisher Scientific | 22660 |
| Peggy Sue毛细管Western blot系统 | ProteinSimple | -- | |
| MFN1抗体 | Cell Signaling Technology | 14739 | |
| MFN2抗体 | Cell Signaling Technology | 11925 | |
| DRP1抗体 | Cell Signaling Technology | 8570 | |
| p-DRP1抗体 | Cell Signaling Technology | 4494 | |
| MFF抗体 | Cell Signaling Technology | 84580 | |
| OPA1抗体 | Cell Signaling Technology | 80471 | |
| TOM20抗体 | Cell Signaling Technology | 42406 | |
| Peggy Sue试剂盒 | ProteinSimple | SM-S001 | |
| 总蛋白检测模块 | ProteinSimple | DM-TP01 | |
| 呼吸测量 | 谷氨酸 | Sigma | G1626 |
| 苹果酸 | Sigma | M1000 | |
| 腺苷二磷酸 | Sigma | A5285 | |
| 琥珀酸 | Sigma | S2378 | |
| 细胞色素C | Sigma | C2506 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物饲养 | C57Bl6小鼠,6个月和24个月,雄性和雌性,饲养条件(14:10光暗循环,恒温恒湿) 阅读提示:Methods: Animals |
| 质粒电穿孔 | 质粒DNA量(10 μg),注射体积(30 μl),透明质酸酶浓度(0.4 U/ml),电穿孔参数(86 V,10个脉冲,20 ms脉冲长度,2 mm电极间距,0.5 ms间隔) 阅读提示:Methods: Electroporation of Plasmids |
| 体内成像 | 成像设备(Nikon A1R多光子显微镜),激光波长960 nm,激活波长760 nm,激光功率(5-10%),激活激光功率(1%),循环次数(10),成像间隔(每10分钟),时长(40分钟) 阅读提示:Methods: Imaging, In vivo photo-activation of mt-paGFP |
| 离体成像 | 单纤维分离方法,培养条件(DMEM,明胶包被),激活参数(405 nm,2%功率,每像素100μs),成像间隔(每10分钟),时长(40分钟) 阅读提示:Methods: Ex vivo photo-activation imaging |
| 体外成像 | C2C12培养条件(DMEM+10% FBS),转染试剂(JetPrime),分化条件(DMEM+10%马血清),激活参数(405 nm,2%功率,每像素100μs),成像间隔(每5秒),时长(10分钟) 阅读提示:Methods: In vitro photo-activation imaging |
| 运动干预 | 跑步机适应(10 m/min,10分钟,两天),运动方案(10分钟10 m/min后5%坡度,60分钟或力竭) 阅读提示:Methods: Exercise Protocol |
| 呼吸测量 | 纤维束分离,皂苷浓度(40 μM),底物浓度(谷氨酸10 mM,苹果酸2 mM,丙酮酸5 mM,ADP 5 mM,琥珀酸10 mM,CCCP 0.75 μM),细胞色素C(10 μM),抗霉素A(5 mM) 阅读提示:Methods: High-resolution respirometry |
| 蛋白分析 | TA肌肉量(20-30 mg),蛋白提取方法,抗体稀释倍数,内参(总蛋白) 阅读提示:Methods: Markers of mitochondrial remodeling |