组合功能组学鉴定HDAC6依赖性放射抗拒头颈癌的分子脆弱性

Combinatorial functionomics identifies HDAC6-dependent molecular vulnerability of radioresistant head and neck cancer

作者信息Sharon Pei Yi Chan, Celestia Pei Xuan Yeo, Boon Hao Hong, Evelyn Mui Cheng Tan, Chaw Yee Beh, Eugenia Li Ling Yeo, Dennis Jun Jie Poon, Pek Lim Chu, Khee Chee Soo, Melvin Lee Kiang Chua, Edward Kai-Hua Chow
PMID39800760
发布时间2025-01-12
DOI10.1186/s40164-024-00590-8

实验完整度

包含体外细胞模型(FaDu、HK-1)的功能验证(增殖、迁移、克隆形成)、机制验证(免疫共沉淀、凝胶迁移、ChIP-qPCR)、体内异种移植瘤实验及患者样本转录组分析,多层级证据支持结论。

主要模型

FaDu喉咽癌细胞系及其放射抗拒亚系 HK-1鼻咽癌细胞系及其放射抗拒亚系 NCr裸鼠异种移植瘤模型(FaDu、HK-1)

重点核对

QPOP筛选的药物组合和浓度(胞外) Panobinostat与AZD7762的协同剂量效应(Bliss和Chou-Talalay验证) HDAC6敲低或化学抑制对放射抗拒细胞敏感性的影响(siRNA、ACY-738、CAY10603) 体内实验中panobinostat的给药剂量、频率和肿瘤生长抑制效果 四基因预后特征(TMEM229B、SMPDL3B、HIVEP3、SEMA3D)的预后相关性

摘要

背景:放疗是大多数头颈癌(HNC)的主要治疗方式。尽管在放疗中加入化疗以增强其杀肿瘤效果,但仍有近三分之一的HNC患者出现局部区域复发。此类复发的挽救治疗选择有限且往往次优,部分原因是放射抗拒(RR)背后的肿瘤和微环境因素存在差异。在本研究中,我们利用一种组合功能组学方法——二次表型优化平台(QPOP),来合理设计药物组合,以利用已建立的体外同基因放射抗拒(RR)-HNC模型的分子指纹和脆弱性。方法:将QPOP特定方案应用于RR-HNC模型,对包含标准化疗、小分子抑制剂和针对HNC的靶向治疗的12种药物组合中的所有可能药物组合进行排序和比较。通过计算组合指数评分和测量凋亡反应来评估药物组合疗效。通过蛋白质印迹分析验证药物靶向,并使用彗星试验定量DNA损伤。进一步通过体内研究以及主要I/II类HDAC的遗传和化学抑制来检查RR模型中增强的组蛋白去乙酰化酶抑制剂(HDACi)疗效。使用免疫沉淀、凝胶迁移和ChIP-qPCR实验研究HDAC6/SP1轴的调控作用。采用比较转录组分析来确定靶向HDAC6的预后意义。结果:我们报道了帕比司他(pan-HDAC抑制剂)联合AZD7762(CHK1/2抑制剂;阿斯利康)或电离辐射(IR)在RR-HNC细胞中重新致敏的治疗潜力,并显示增强的DNA损伤是潜在增强协同作用的基础。我们进一步优化了这种RR特异性药物组合,并将HDAC6优先确定为逆转放射抗拒的可靶向依赖性。我们提供了HDAC6通过涉及SP1和致癌及修复基因的串扰介导调控的机制见解。在两个独立的患者队列中,我们确定了一个四基因特征,可能具有区分能力预测放射抗拒且适合HDAC6抑制。结论:我们发现了HDAC6是一个有希望的分子脆弱性,应探索用于治疗RR-HNC。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
本研究旨在利用QPOP平台系统筛选并验证针对放射抗拒头颈癌(RR-HNC)的潜在药物组合,并探索其分子机制和可能的预后标志物。
核心机制
HDAC6通过去乙酰化SP1增强其DNA结合活性,促进SP1结合至RAD51、FOXM1和MYC等基因的启动子区,上调这些基因表达,增强DNA损伤修复能力,进而赋予肿瘤细胞放射抗拒表型。
主要证据
体外实验中,siHDAC6或HDAC6抑制剂(ACY-738、CAY10603)与AZD7762联合显著抑制RR细胞增殖,并诱导凋亡;免疫共沉淀、EMSA和ChIP-qPCR实验显示HDAC6与SP1相互作用,敲低HDAC6降低SP1的DNA结合能力及其靶基因表达。体内实验中,panobinostat显著抑制RR肿瘤生长,且HDAC6表达在RR肿瘤中升高。
研究意义
该研究揭示HDAC6是放射抗拒头颈癌的可靶向脆弱性,为开发基于HDAC6抑制的联合治疗策略提供了理论基础,并提出了一个可能用于预测放射抗拒并指导HDAC6靶向治疗的患者分层生物标志物特征。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立放射抗拒细胞模型

通过分次照射诱导产生对辐射具有抗性的HNC细胞模型,用于后续药物筛选和机制研究。

使用FaDu和HK-1细胞,每周5次、每次2 Gy、共45次(总剂量90 Gy)的分次照射产生RR亚系,并通过克隆形成、增殖和迁移实验验证其放射抗拒特性。

2

QPOP药物组合筛选

系统筛选对RR细胞具有选择性杀伤作用的双药组合。

对WT和RR FaDu细胞进行12种药物、3个剂量(IC0、IC15、IC30)的QPOP筛选,通过正交阵列复合设计确定155种组合,利用CTG法检测细胞活力,并通过Chou-Talalay和Bliss模型验证组合效果。

3

验证帕比司他联合AZD7762或放疗的协同效应

验证筛选出的最优组合(panobinostat + AZD7762)对RR细胞的杀伤效果,并评估其与放疗联合的增敏作用。

通过凋亡检测、Comet实验、Western blot分析以及克隆形成实验,检测panobinostat联合AZD7762或电离辐射对RR细胞凋亡、DNA损伤和克隆存活的影响。

4

鉴定HDAC6为关键靶点

确定panobinostat介导的放射抗拒逆转作用主要通过哪个HDAC亚型发挥作用。

利用siRNA敲低HDAC1、HDAC2、HDAC4和HDAC6,或使用选择性HDAC6抑制剂(ACY-738和CAY10603),检测与AZD7762联合后细胞增殖、凋亡和DNA损伤相关标志物变化。

5

机制研究:HDAC6/SP1信号轴

阐明HDAC6调控放射抗拒的分子机制。

通过免疫共沉淀(co-IP)验证HDAC6与SP1的结合,通过敲低HDAC6检测SP1乙酰化水平变化;通过EMSA评估SP1的DNA结合活性;通过ChIP-qPCR检测SP1在MYC、RAD51、FOXM1启动子区的结合。

6

体内实验验证panobinostat抗肿瘤活性

评估panobinostat在体内对RR肿瘤的抑制效果。

建立WT和RR FaDu和HK-1异种移植瘤模型,给予panobinostat(2.5 mg/kg)或溶剂对照,测量肿瘤体积和生长速率,并通过IHC和TUNEL检测增殖和凋亡。

7

转录组分析及预后特征生成

筛选与放射抗拒相关并且受HDAC6调控的基因,并在患者队列中验证其预后价值。

对WT和RR细胞进行siNC或siHDAC6处理后的转录组测序,比较RR vs WT及siHDAC6 vs siNC的差异表达基因,筛选出在两种细胞系中均受HDAC6调控的基因,并通过TCGA和NCCS队列进行预后分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MEM培养基Gibco--
RPMI-1640培养基Biowest--
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
MEM非必需氨基酸溶液----
L-谷氨酸----
CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒Promega--
Gamma Cell GC40 137Cs-137照射源Nordion--
帕比司他----
AZD7762MedChemExpressHY-10992
ACY-738----
CAY10603----
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher--
TriFECTa DsiRNA试剂盒Integrated DNA Technologies--
RIPA裂解缓冲液ThermoFisher Scientific--
PhosSTOP磷酸酶抑制剂Roche--
cOmplete蛋白酶抑制剂混合物Roche--
BCA蛋白定量试剂盒Pierce--
PVDF膜----
ChemiDoc成像系统Bio-Rad--
抗PARP抗体Cell Signaling Technology9542
抗Caspase-3抗体Cell Signaling Technology9662
抗cleaved Caspase-3抗体Cell Signaling Technology9664
抗乙酰化赖氨酸抗体Cell Signaling Technology9814
抗RAD51抗体Abcamab133534
抗γ-H2A.X Ser139抗体Cell Signaling Technology9718
抗c-MYC抗体Abcamab32072
抗p21 Waf1/Cip1抗体Cell Signaling Technology2947
抗HDAC1抗体Cell Signaling Technology5356
抗HDAC2抗体Cell Signaling Technology5113
抗HDAC4抗体Cell Signaling Technology7628
抗HDAC6抗体Cell Signaling Technology7558
抗乙酰化α-微管蛋白Lys40抗体Cell Signaling Technology3971
抗乙酰化组蛋白H3 Lys27抗体Cell Signaling Technology8173
抗GAPDH抗体Cell Signaling Technology2118
抗SP1抗体Millipore07-645
Dynabeads Protein G磁珠Invitrogen10003D
正常兔IgGCell Signaling Technology2729
NE-PER核和胞质提取试剂盒ThermoFisher Scientific--
非放射性凝胶迁移实验试剂盒SignosisGS-0040
EpiShear探针超声破碎仪Active Motif--
QIAquick PCR纯化试剂盒Qiagen--
QuantiNova SYBR Green PCR试剂盒Qiagen--
QuantStudio 5实时PCR系统Applied Biosystems--
BD Pharmingen FITC Annexin V凋亡检测试剂盒BD Biosciences--
BD LSRII流式细胞仪BD Biosciences--
低熔点琼脂糖----
共聚焦激光扫描显微镜LSM 880 AiryScanCarl Zeiss--
Matrigel基质胶Corning--
抗Ki67抗体Cell Signaling Technology9449
HRP标记兔/小鼠二抗DakoK5007
DAB显色剂DakoK5007
Organo柠檬烯封片剂SigmaO8015
DeadEnd比色TUNEL检测系统PromegaG7130
RNeasy Mini RNA提取试剂盒Qiagen--
NEBNext Ultra II 定向RNA文库制备试剂盒New England BioLabs--
Novaseq 6000测序仪Illumina--
ReliaPrep FFPE gDNA小提系统Promega--
RNAprep pure FFPE试剂盒Tiangen--
TruSeq RNA外显子组试剂盒Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
放射抗拒模型建立
照射剂量方案(2 Gy/次,45次,总90 Gy)、细胞类型(FaDu和HK-1)、照射源及剂量率(0.9 Gy/min)
阅读提示:Methods: Generation and characterization of in vitro RR-HNC models
QPOP筛选
药物浓度(IC0、IC15、IC30)、处理时间(48小时)、技术重复次数(两次)
阅读提示:Methods: QPOP combinatorial drug treatment and analysis
药物组合验证
panobinostat和AZD7762的浓度(例如10 nM、150 nM)、处理时间(48小时)、检测方法(凋亡、Comet、Western blot)
阅读提示:Results: Panobinostat treatment preferentially inhibits DNA damage response; Figure 2 legends
HDAC6靶点鉴定
siRNA靶点(HDAC1/2/4/6)、HDAC6抑制剂(ACY-738、CAY10603)浓度(10 μM、5 μM)
阅读提示:Results: RR-specific HDACi-mediated synergy largely acts through HDAC6; Methods: siRNA-mediated knockdown
体内实验
细胞接种量(5×10^6)、panobinostat剂量(2.5 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、给药频率(隔天一次)、治疗时间(24或34天)
阅读提示:Methods: In vivo drug treatment
转录组分析
差异表达基因筛选阈值(log2FC>0.5, 校正P<0.1)、GSEA分析库(GO)、预后分析模型(单因素Cox回归)
阅读提示:Methods: Differential gene expression analysis; Refinement of gene selection and geneset enrichment analysis; Generation and validation of prognostic signature