葡萄糖剥夺反应的表征
确定不同癌细胞对葡萄糖剥夺的YAP激活差异反应
对高融合度HCT116细胞进行葡萄糖剥夺处理6小时,进行RNA-seq分析;检测多种癌细胞系中YAP磷酸化水平变化。
D-ribose-5-phosphate inactivates YAP and functions as a metabolic checkpoint
研究包含体外细胞实验、类器官培养、动物模型(APCmin/+小鼠)和患者样本数据库分析;明确进行了功能验证(细胞死亡、集落形成)和机制验证(Co-IP、MS、代谢组学)。
HCT116细胞系 SW480细胞系 DLD1细胞系 APCmin/+小鼠
葡萄糖剥夺时间:4小时或6小时 D5P补充浓度:文中未明确说明细胞实验浓度,但类器官实验使用6 mM GLUT抑制剂KL-11743浓度:细胞实验剂量梯度,类器官实验使用3 μM 细胞系:HCT116, SW480等 基因敲低:shYAP, shPNP, shPGM2, shMYH9, shMYH10
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定不同癌细胞对葡萄糖剥夺的YAP激活差异反应
对高融合度HCT116细胞进行葡萄糖剥夺处理6小时,进行RNA-seq分析;检测多种癌细胞系中YAP磷酸化水平变化。
鉴定葡萄糖剥夺诱导的代谢变化,特别是与YAP激活相关的代谢通路
对YAP激活的HCT116和YAP未激活的DLD1细胞进行非靶向代谢组学分析;对HCT116进行靶向代谢组学(600MRM)。
确定D5P在葡萄糖剥夺诱导的YAP激活中的作用
在葡萄糖剥夺条件下补充D5P或相关核苷,检测YAP磷酸化水平、细胞死亡和目标基因表达。
阐明D5P调控YAP激活的分子机制
通过免疫共沉淀、质谱分析和免疫印迹检测LATS1与MYH9的相互作用及LATS1的聚集和降解。
探讨YAP活性对嘌呤核苷代谢和PNP活性的影响
使用YAP敲低或组成活性YAP-5SA过表达的HCT116细胞,检测代谢物水平和PNP活性。
验证D5P能否增强GLUT抑制剂对癌细胞死亡的诱导
使用KL-11743处理癌细胞,并补充D5P,检测细胞凋亡、集落形成和类器官生长。
评估D5P单独治疗对结直肠癌进展的影响
对APCmin/+小鼠通过饮水给予D5P,观察肿瘤形成、生存期和组织学变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Corning | -- |
| 无葡萄糖DMEM | Life Technologies (Thermo Fisher Scientific) | 11966-025 | |
| 药物处理 | KL-11743 | MCE | -- |
| 代谢物补充 | D-核糖-5-磷酸 | Shanghai YuanYe Bio-Technology | -- |
| 果糖-1,6-二磷酸 | Shanghai YuanYe Bio-Technology | -- | |
| 6-磷酸葡萄糖酸 | Shanghai YuanYe Bio-Technology | -- | |
| PNP活性检测 | PNP检测试剂盒 | Abcam | ab204706 |
| 细胞死亡检测 | 细胞死亡检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 免疫沉淀 | Pierce™ IP裂解液 | Thermo Fisher Scientific | #87787 |
| Pierce™ Protein A/G磁珠 | Thermo Fisher Scientific | #88802 | |
| 蛋白质印迹 | SurePAGE™凝胶 | Genscript | M00657 |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | -- | -- |
| RT-qPCR | TB Green预混液 | Takara | -- |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 647标记二抗 | CST | 4414S |
| DAPI染料 | Sigma-Aldrich | D9542 | |
| ProLong™ Diamond抗淬灭封片剂 | Invitrogen | P36965 | |
| CellMask™绿色肌动蛋白示踪染料 | -- | -- | |
| 显微镜 | 徕卡THUNDER显微镜 | Leica | -- |
| 流式细胞术 | Attune NxT流式细胞仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 代谢组学 | ExionLC AD超高效液相色谱系统 | AB SCIEX | -- |
| TripleTOF 5600+质谱仪 | AB SCIEX | -- | |
| ACQUITY UPLC BEH Amide色谱柱 | Waters | -- | |
| 蛋白质印迹 | YAP抗体 | CST | 14074 |
| 磷酸化YAP抗体 | CST | 13008 | |
| LATS1抗体 | CST | 3477 | |
| MYH9抗体 | CST | 3403 | |
| 磷酸化JNK抗体 | CST | 9255 | |
| PNP抗体 | Santa Cruz | sc-365551 | |
| LC3A/B抗体 | CST | 4108 | |
| P21抗体 | CST | 2947 | |
| PARP抗体 | CST | 9542 | |
| 剪切型PARP抗体 | CST | 5625 | |
| G3BP1抗体 | CST | 61559 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 66004 | |
| 肌动蛋白抗体 | Proteintech | 66009 | |
| 微管蛋白抗体 | Proteintech | 66031 | |
| 免疫沉淀 | cOmplete蛋白酶抑制剂 | Roche | -- |
| PhosSTOP磷酸酶抑制剂 | Roche | -- | |
| RNA提取 | RQ1无RNase DNase试剂盒 | Promega | -- |
| RT-qPCR | Superscript II反转录酶 | Takara | -- |
| RNA-seq | Illumina NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- |
| 类器官培养 | 基质胶 | BD Biosciences | -- |
| Advanced DMEM/F12培养基 | Invitrogen | -- | |
| 表皮生长因子 | PeproTech | -- | |
| R-spondin1 | PeproTech | -- | |
| Noggin | PeproTech | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Life Technologies | -- |
| 细胞培养 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| 动物实验 | APCmin/+小鼠 | GemPharmatech | T001457 |
| 代谢组学 | 氢氧化铵 | -- | -- |
| 乙酸铵 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养和处理 | 细胞系(HCT116, SW480等)来源,培养基成分(DMEM, 10% FBS),葡萄糖剥夺的时间(4-6小时)和浓度(0 mM) 阅读提示:Methods: Cell culture and reagents; Treatments |
| 基因敲低/过表达 | shRNA靶序列,慢病毒包装系统(pLKO.1, pLVX-IRES-Puro),筛选浓度(2 μg/mL嘌呤霉素) 阅读提示:Methods: Stable cell line generation |
| 代谢物补充 | D5P, 鸟苷等核苷的补充浓度,处理时间 阅读提示:Methods: Treatments; Results: 'GD-induced D5P reduction is responsible for GD-induced YAP activation' |
| 免疫共沉淀 | 裂解缓冲液(Pierce™ IP Lysis Buffer),蛋白酶/磷酸酶抑制剂,抗体,磁珠(Protein A/G),洗涤次数 阅读提示:Methods: Immunoprecipitation (IP) and Mass Spectrometry (MS) |
| 代谢组学 | 细胞数量(1×10^7),提取溶剂(甲醇:乙腈:水=2:2:1),LC-MS参数(色谱柱,流动相,梯度),数据分析软件(XCMS) 阅读提示:Methods: Untargeted metabolomics analysis; Targeted metabolomics analysis (600MRM) |
| 体内实验 | APCmin/+小鼠品系,D5P给药浓度(4 mM)和途径(饮水),观察时间 阅读提示:Methods: Mice, histology and immunofluorescence; Results: 'Oral administration of D5P attenuates CRC development in APC mutant mice' |