通过原肌球蛋白3 Lys141的2-羟基异丁酰化调节异常血管收缩:靶向组蛋白去乙酰化酶3作为一种关键方法

Modulation of Abnormal Vasoconstriction Through 2-Hydroxyisobutyrylation of Tropomyosin 3 Lys141: Targeting Histone Deacetylase 3 as a Key Approach

作者信息Pan-Pan Pang, Jiang-Xin Liu, Wen-Bin Su, Wen-Cong Gao, Guan-Rong Qiao, Jing Yuan, Yong-Tang Zheng, Chang-Bo Zheng
PMID39719422
发布时间2025-01-07
DOI10.1161/JAHA.124.037400

实验完整度

高

研究包含体外血管张力实验、动物高血压模型、分子对接与动力学模拟、多位点突变及腺病毒转染等功能和机制验证,证据层级完整。

主要模型

小鼠胸主动脉环 小鼠肠系膜动脉环 高血压小鼠模型 血管平滑肌细胞

重点核对

苯肾上腺素浓度1 μmol/L处理30分钟 siRNA转染效率及Tpm3敲低效果 Khib供体2-羟基异丁酸乙酯浓度200–400 μmol/L HDAC3抑制剂CUDC-907浓度10 μmol/L Tpm3 K141R突变对血管功能的影响

摘要

背景:TPM3(原肌球蛋白3)是血管平滑肌细胞中的一种肌动蛋白结合蛋白,其翻译后修饰关键地调节其肌动蛋白亲和力,影响心血管功能。新出现的证据表明,Khib(2-羟基异丁酰化)在心血管系统中发挥重要作用。组蛋白去乙酰化酶3(HDAC3)作为Khib标记的“擦除器”。然而,TPM3去2-羟基异丁酰化对血管收缩的影响尚不清楚。方法和结果:在本研究中,我们采用小鼠模型和体外实验来阐明苯肾上腺素诱导的HDAC3激活通过TPM3的去2-羟基异丁酰化驱动血管收缩的机制。我们的发现表明,苯肾上腺素触发HDAC3核输出并促进其与TPM3的相互作用,导致Khib修饰减少和血管收缩增强。免疫共沉淀实验证实,苯肾上腺素降低了小鼠主动脉中TPM3上的Khib水平。此外,使用小鼠主动脉环的离体血管张力测定显示,Khib供体2-羟基异丁酸乙酯处理诱导了不依赖内皮的血管舒张,并改善了高血压血管功能障碍。分子对接和动力学模拟确定TPM3的Lys141是HDAC3介导的去2-羟基异丁酰化的主要靶点。通过腺病毒转染分离血管并携带Lys141突变的TPM3构建体进一步验证了这一点,该突变消除了HDAC3对TPM3 Khib修饰和血管收缩性的影响。结论:这些发现强调了TPM3去2-羟基异丁酰化在血管收缩中的关键作用,并提示调节这种翻译后修饰可能为高血压血管功能障碍提供一种新的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HDAC3介导的TPM3去2-羟基异丁酰化是否以及如何调节血管平滑肌细胞收缩性和血管收缩。
核心机制
苯肾上腺素诱导HDAC3核输出并与TPM3结合,去除TPM3 Lys141上的Khib修饰,调节SOCE,导致血管收缩;HDAC3抑制剂阻断该过程,促进血管舒张。
主要证据
免疫共沉淀显示苯肾上腺素降低TPM3 Khib水平;血管张力实验显示Khib供体诱导内皮非依赖性舒张并改善高血压;分子对接和突变实验表明Lys141是关键位点。
研究意义
靶向TPM3 Khib修饰可能为高血压血管功能障碍提供新的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证苯肾上腺素对血管蛋白Khib修饰的影响

观察苯肾上腺素处理是否改变血管组织中的赖氨酸酰化修饰水平,特别是Khib。

使用Western blot和免疫共沉淀检测小鼠胸主动脉组织中多种赖氨酸酰化水平及TPM3的Khib水平。

2

评估Khib供体对血管舒张和高血压的作用

确定Khib供体2-羟基异丁酸乙酯是否诱导血管舒张并降低高血压小鼠血压。

血管张力实验检测2-羟基异丁酸乙酯对预收缩主动脉环的舒张作用;建立高血压小鼠模型并给予2-羟基异丁酸乙酯或卡托普利处理。

3

验证TPM3在血管收缩和舒张信号转导中的作用

通过RNA干扰敲低Tpm3表达,观察对血管收缩和舒张功能的影响。

使用siRNA转染小鼠胸主动脉血管段,通过血管张力测量检测对苯肾上腺素、KCl、CaCl2诱导的收缩以及SAHA和2-羟基异丁酸乙酯诱导的舒张的影响。

4

识别调节TPM3 Khib修饰的关键酶

确定HDAC2或HDAC3哪个酶偏好与TPM3互作并调节其Khib修饰。

使用HDOCK和PRISM进行分子对接和动力学模拟,比较HDAC2/3与TPM3的结合;通过免疫共沉淀、免疫荧光和Western blot验证相互作用和HDAC3核输出。

5

确定HDAC3靶向的TPM3关键赖氨酸残基并验证其功能

确定HDAC3介导的去2-羟基异丁酰化的关键赖氨酸位点,并验证其对血管功能的影响。

通过突变和腺病毒转染Tpm3 K141R等突变体,检测TPM3 Khib水平和血管张力变化。

6

评估HDAC3抑制剂对血管功能的影响并验证其机制

检验HDAC3抑制剂是否能诱导血管舒张,并探讨其是否通过SOCE机制。

在离体小鼠主动脉环上检测多种HDAC3抑制剂的舒张效应,并评估CUDC-907对KCl和CaCl2诱导收缩的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
线肌动描记器DMT--
PowerLab数据采集系统ADInstruments--
共聚焦显微镜(A1 HD25)Nikon--
蛋白A/G琼脂糖珠APExBIOK1305
核蛋白提取试剂盒SolarbioEX1470
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
抗TPM3抗体Proteintech10737-1-AP
抗HDAC3抗体Cell Signaling Technology3949
抗2-羟基异丁酰赖氨酸抗体PTM BIOPTM-801
抗2-羟基异丁酰赖氨酸抗体PTM BIOPTM-802
抗Flag标签抗体AbbkineABT2010
抗GAPDH抗体Abcamab181602
抗β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology2128
抗β-肌动蛋白抗体Abcamab8227
ECL Western blot底物Pierce--
伏立诺他Selleck ChemistryPubChem
CUDC-907Selleck ChemistryPubChem
CUDC-101Selleck ChemistryPubChem
quisinostatSelleck ChemistryPubChem
4-溴-N'-丁基苯甲酰肼Selleck ChemistryPubChem
维拉帕米Selleck ChemistryPubChem
N-omega-硝基-L-精氨酸Selleck ChemistryPubChem
硝普钠Selleck ChemistryPubChem
氯化钙Selleck ChemistryPubChem
卡托普利----
DMEM培养基----
Opti-MEM培养基Thermo Fisher Scientific--
胎牛血清Biological Industries--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
Tpm3小于扰RNAHANBIO--
质粒Tpm3 K141RGeneChem--
腺病毒Ad-Tpm3 K141R----
腺病毒Ad-GFP----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
血管张力测量
主动脉环长度2 mm,静息张力3 mN,KCl浓度60 mmol/L,苯肾上腺素浓度1 μmol/L,乙酰胆碱浓度10 μmol/L,CaCl2累积浓度0.5–10 mmol/L
阅读提示:Methods: Tension Measurement in Isolated Blood Vessels
高血压模型建立
N-omega-硝基-L-精氨酸剂量15 mg/kg,腹腔注射每日两次,持续21天;血压≥160 mmHg;治疗剂量7.615 mg/kg,口服4周
阅读提示:Methods: Mouse Model of Hypertension
siRNA转染
siRNA浓度20 μmol/L(母液),转染混合物中10 μL siRNA,Lipofectamine 3000体积2 μL,转染时间6小时,培养18小时
阅读提示:Methods: Transfection With siRNA
质粒转染
质粒量4 μg,Lipofectamine 3000量4 μL,转染时间12小时,后培养24小时
阅读提示:Methods: Plasmid Transfection
腺病毒转染
腺病毒滴度5×10^9 pfu,感染时间12小时,后培养36小时
阅读提示:Methods: Ex Vivo Adenoviral Gene Transfer in Mouse Aorta
免疫荧光
细胞固定4%多聚甲醛,透化0.1% Triton X-100 10分钟,封闭5% BSA,一抗4℃过夜,二抗室温1小时
阅读提示:Methods: Immunofluorescence
免疫共沉淀
裂解液200 μL,抗体2 μg,protein A/G beads 20 μL,孵育4小时
阅读提示:Methods: Coimmunoprecipitation