星形胶质细胞来源的红细胞生成素的持续表达在低温条件下减轻神经元损伤

Prolonged astrocyte-derived erythropoietin expression attenuates neuronal damage under hypothermic conditions

作者信息Kohki Toriuchi, Hiroki Kakita, Tetsuya Tamura, Satoru Takeshita, Yasumasa Yamada, Mineyoshi Aoyama
PMID32359362
发布时间2020-05
DOI10.1186/s12974-020-01831-3

实验完整度

包含原代星形胶质细胞和神经元培养、OGD模型、低温处理、siRNA敲低、Western blot、RT-qPCR、ELISA、TUNEL和cleaved caspase-3染色,以及EPO中和抗体功能验证,多个证据层级且功能验证明确。

主要模型

原代大鼠皮层星形胶质细胞 原代大鼠皮层神经元 OGD细胞模型

重点核对

OGD处理时间:24小时 低温条件:33.5°C,持续24小时 EPO中和抗体浓度:1 μg/mL 神经元OGD损伤和复灌时间:OGD 2小时,复灌24小时 HIF-1α和HIF-2α siRNA浓度:10 nM

摘要

背景:缺氧缺血性脑病(HIE)具有高发病率,并导致严重的神经功能缺损,包括脑性瘫痪。治疗性低温(TH)已被证明可降低HIE婴儿的死亡率并提供神经保护。然而,接受TH治疗的HIE婴儿的死亡和残疾率仍然很高。尽管TH神经保护作用的细胞机制尚不清楚,但已知星形胶质细胞的红细胞生成素(EPO)是缺氧条件下神经保护的关键介质。在本研究中,我们研究了低温对星形胶质细胞EPO表达的影响,并确定低温是否通过EPO信号传导减轻神经元损伤。方法:大鼠大脑皮层来源的星形胶质细胞在氧糖剥夺(OGD)条件下培养。评估了EPO和缺氧诱导因子(HIF)(EPO的转录因子)的表达。OGD后,星形胶质细胞在常温(37°C)或低温(33.5°C)条件下培养,然后评估EPO和HIF的表达。OGD后,将大鼠皮层神经元在来自低温组的星形胶质细胞条件培养基(ACM)中培养,并评估神经元凋亡。结果:OGD诱导EPO mRNA和蛋白表达,但水平低于单纯缺氧。单纯缺氧和OGD条件下HIF-1α和HIF-2α蛋白表达均增加,但OGD条件下HIF-2α蛋白表达增加少于单纯缺氧。OGD后低温条件下EPO基因和蛋白表达显著升高。此外,低温条件下HIF-1α和HIF-2α蛋白表达增强。在OGD后低温星形胶质细胞来源的ACM存在下,cleaved caspase 3和TdT介导的dUTP缺口末端标记阳性凋亡神经元的数量低于OGD后常温星形胶质细胞来源的ACM。使用抗EPO中和抗体阻断EPO信号传导减弱了OGD后低温星形胶质细胞来源的ACM的抗凋亡作用。结论:OGD后低温稳定了星形胶质细胞中的HIF-EPO信号传导,上调的EPO表达可抑制神经元凋亡。研究低温条件下星形胶质细胞EPO的神经保护作用可能有助于开发基于神经保护的HIE新疗法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
低温是否通过增强星形胶质细胞中EPO的表达来发挥神经保护作用?
核心机制
低温稳定星形胶质细胞中的HIF-1α和HIF-2α蛋白,上调EPO表达,EPO通过旁分泌作用于神经元,抑制凋亡。
主要证据
原代星形胶质细胞和神经元培养、OGD模型、Western blot、RT-qPCR、ELISA、siRNA敲低、EPO中和抗体实验,显示低温上调EPO和HIF表达,EPO中和抗体消除抗凋亡作用。
研究意义
研究低温条件下星形胶质细胞EPO的神经保护作用,可能有助于开发针对HIE的新型神经保护疗法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

星形胶质细胞OGD模型建立和EPO表达检测

确定OGD是否像单纯缺氧一样诱导星形胶质细胞中EPO的表达。

原代大鼠皮层星形胶质细胞分别进行单纯缺氧(1% O2)或OGD(无糖培养基+1% O2)处理,在不同时间点检测EPO mRNA表达,24小时后测量培养基中EPO蛋白浓度。

2

检测HIF-1α和HIF-2α表达

评估OGD和单纯缺氧对HIF-1α和HIF-2α表达的影响。

在相同处理条件下,通过RT-qPCR和Western blot检测HIF-1α和HIF-2α的mRNA和蛋白水平。

3

siRNA敲低验证HIF亚型对EPO和神经保护的作用

确定HIF-1α和HIF-2α在EPO表达和神经元保护中的相对贡献。

用HIF-1α和/或HIF-2α siRNA转染星形胶质细胞,在缺氧条件下检测EPO表达,并收集条件培养基处理OGD损伤的神经元,评估神经元凋亡。

4

评估低温对OGD后EPO表达的影响

检测低温是否增强OGD后星形胶质细胞中EPO的表达。

星形胶质细胞OGD后,在37°C或33.5°C下培养,检测EPO mRNA和蛋白表达的时间过程。

5

检测低温对OGD后HIF表达的影响

检测低温是否影响OGD后星形胶质细胞中HIF-1α和HIF-2α的蛋白表达。

OGD后,星形胶质细胞在低温下培养,通过Western blot检测HIF-1α和HIF-2α蛋白水平。

6

验证低温星形胶质细胞来源EPO的神经保护作用

确定低温星形胶质细胞分泌的EPO是否能抑制神经元凋亡。

神经元OGD后,使用来自低温或常温星形胶质细胞(OGD后)的ACM培养,并使用抗EPO中和抗体阻断EPO信号,评估凋亡神经元数量。

7

外源EPO对照实验

排除外源EPO浓度不足或非条件培养基的影响。

在非条件培养基中添加与低温ACM相同浓度(18 pg/mL)的外源EPO,处理OGD后的神经元,评估凋亡水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜氏改良Eagle培养基Wako--
胎牛血清Bio sera--
青霉素----
链霉素----
胰蛋白酶----
BD基质胶基底膜基质,生长因子减少型BD Bioscience--
Neurobasal-A培养基Invitrogen--
B27添加剂Invitrogen--
L-谷氨酰胺----
Amicon Ultra-2离心过滤装置Millipore--
重组EPOR&D Systems--
EPO中和抗体R&D SystemsAF959
对照山羊IgGWAKO--
RNA提取试剂Takara Bio Inc.--
PrimeScript RT预混液Takara Bio Inc.--
Go Taq聚合酶Promega Corp.--
蛋白酶抑制剂混合物Sigma--
NP-40去垢剂----
十二烷基硫酸钠----
Immobilon-P聚偏二氟乙烯膜Millipore--
HIF-1α一抗R&D SystemsMAB1536
HIF-2α一抗R&D SystemsAF2997
辣根过氧化物酶标记的二抗Cell Signaling Technology, R&D Systems7074,
lamin B1多克隆抗体Cell Signaling Technology12586
增强化学发光法Amersham Biosciences--
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Invitrogen--
HIF-1α siRNASigma--
HIF-2α siRNASigma--
阴性对照siRNASigma--
MAP2抗体MilliporeMAB3418
cleaved caspase-3抗体Cell Signaling Technology9664
Alexa Fluor 488标记二抗InvitrogenA11070
Alexa Fluor 594标记二抗InvitrogenA11020
ProLong Diamond抗淬灭剂含DAPIInvitrogen--
LSM800共聚焦显微镜Carl Zeiss--
Takara原位凋亡检测试剂盒Takara Biomedicals--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
原代星形胶质细胞培养
大鼠品系(Wistar)、年龄(生后1天)、培养基(低糖DMEM+10%FBS)、细胞纯度(>95% GFAP阳性)
阅读提示:Methods: Culture of primary astrocytes and neurons
OGD处理
OGD持续时间(24小时)、缺氧浓度(1% O2)、无糖DMEM
阅读提示:Methods: Hypoxia, glucose-deprivation, and hypothermia treatment of cultured cells
低温处理
低温温度(33.5°C)、持续时间(24小时)
阅读提示:Methods: Hypoxia, glucose-deprivation, and hypothermia treatment of cultured cells
siRNA敲低
siRNA浓度(10 nM)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX)、转染后处理时间(24-48小时)
阅读提示:Methods: Small interfering RNA (siRNA)
神经元凋亡检测
神经元OGD时间(2小时)、复灌时间(24小时)、ACM来源、EPO中和抗体浓度(1 μg/mL)
阅读提示:Methods: Blockade of EPO signaling, Results: Neuroprotective effect of EPO secreted by astrocytes cultured under hypothermia