心肌细胞中ATP5F1A的过表达促进心脏逆向重塑

Overexpression of ATP5F1A in Cardiomyocytes Promotes Cardiac Reverse Remodeling

作者信息Mengda Xu, Hang Zhang, Yuan Chang, Xiumeng Hua, Xiao Chen, Yixuan Sheng, Dan Shan, Mengni Bao, Shengshou Hu, Jiangping Song
PMID38910562
发布时间2024-07
DOI10.1161/CIRCHEARTFAILURE.123.011504

实验完整度

结合单核RNA测序、患者样本、TAC和DCM小鼠模型,并进行功能验证(超声、病理、代谢检测)。

主要模型

C57BL/6J小鼠TAC手术模型 DCM转基因小鼠模型(cTnTR141W) LVAD支持患者左心室组织样本

重点核对

AAV9-cTNT-ATP5F1A的注射剂量为1×10^12病毒基因组/小鼠,经尾静脉注射 TAC小鼠在术前2周接受AAV9注射,并在注射后42天和56天进行超声心动图检测 DCM小鼠在注射前和注射后56天进行超声心动图检测 通过超声心动图检测LVEF和LVEDV评估心脏功能

摘要

背景:左心室辅助装置介导的心脏逆向重塑(CRR)的机制尚不清楚。本研究旨在确定负责CRR的特定细胞类型,并开发促进CRR的治疗靶点。方法:从4名正常对照、4名CRR患者和4名无心脏逆向重塑患者的左心室组织中提取细胞核,然后进行单核RNA测序,以识别负责CRR的关键细胞类型。在横向主动脉缩窄和扩张型心肌病心力衰竭小鼠模型(C57BL/6J背景)中进行基因过表达和病理染色,以验证单核RNA测序的结果。结果:在126156个细胞核中鉴定出10种细胞类型。CRR患者的心肌细胞中ATP5F1A的表达水平高于其他两组。CRR患者的巨噬细胞表达更多的抗炎基因,并在血管生成中发挥作用。无心脏逆向重塑患者中升高的内皮细胞参与炎症反应。超声心动图显示,通过心肌细胞特异性腺相关病毒9过表达ATP5F1A能够改善心脏功能和形态。病理染色显示,过表达ATP5F1A可减少心力衰竭小鼠模型中的纤维化和心肌细胞大小。结论:本研究单核RNA测序和心力衰竭小鼠模型的结果表明,ATP5F1A可介导CRR,并支持开发通过过表达ATP5F1A促进CRR的治疗方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
哪些细胞类型和分子机制介导LVAD支持后的心脏逆向重塑(CRR)?
核心机制
心肌细胞中ATP5F1A介导的ATP合成增加,增强心肌收缩,促进心脏逆向重塑;免疫细胞(巨噬细胞、淋巴细胞)通过促进血管生成与内皮细胞相互作用,也参与CRR。
主要证据
单核RNA测序显示CRR患者心肌细胞ATP5F1A高表达;在TAC和DCM小鼠模型中,心肌细胞特异性过表达ATP5F1A改善了心脏功能、形态,并降低了纤维化和心肌细胞大小;OMIHC染色证实巨噬细胞亚群表达抗炎和血管生成相关基因。
研究意义
研究结果为筛选LVAD支持后CRR患者提供了证据,并为验证CRR机制提供了方向,支持开发通过过表达ATP5F1A促进CRR的治疗方法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者样本收集与分组

获取LVAD支持后有或无CRR的患者以及正常对照的左心室组织样本,为后续单核RNA测序提供材料。

收集4名正常对照、4名CRR患者和4名NCRR患者的左心室组织样本,并依据超声心动图参数定义CRR。

2

单核RNA测序分析

识别与CRR相关的关键细胞类型和分子特征。

从组织样本中提取细胞核进行snRNA-seq,鉴定细胞类型,比较各组差异表达基因和细胞比例,并进行轨迹分析。

3

心肌细胞过表达ATP5F1A的构建与验证

验证心肌细胞中ATP5F1A过表达是否能促进CRR。

构建AAV9-cTNT-ATP5F1A载体,通过尾静脉注射到TAC和DCM小鼠中,利用超声心动图和病理染色评估效果。

4

体内功能与形态评估

评估ATP5F1A过表达对心脏功能、形态和代谢的影响。

通过超声心动图检测LVEF和LVEDV,Masson染色评估纤维化,WGA染色评估心肌细胞大小,Seahorse测量耗氧率(OCR)和细胞外酸化率(ECAR)。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Masson三色染色试剂盒SolarbioG1340
ATP5F1A抗体Abcamab176569
TTN抗体Abcamab307446
CD68抗体Abcamab955
SPARC抗体Abcamab203284
HSPG2抗体Abcamab2501
CD31抗体Abcamab182981
LDB2抗体Proteintech11873-1-AP
TXNIP抗体Abcamab188865
ACTC1抗体Abcamab46805
MYH6抗体Proteintech22281-1-AP
CD3抗体Abcamab16669
CD2抗体Abcamab314761
PTK2抗体Abcamab40794
GNLY抗体Abcamab241333
IL7R抗体Abcamab259806
vWF抗体Abcamab6994
FLRT2抗体GeneTexGTX123309
PCSK5抗体Proteintech16470-1-AP
PDE3A抗体Abcamab244337
Vectra定量病理成像系统PerkinElmer--
Image J软件--version
Vevo 3100成像系统FUJIFILM--
Seahorse XF细胞线粒体压力测试试剂盒Agilent103015-100
胰岛捕获微孔板Agilent103518-100
Seahorse XFe24分析仪Agilent--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者样本
CRR定义标准(LVEF≥40%,左心室舒张末期内径<6cm,LVEF增加≥5%);样本量4例每组
阅读提示:Methods部分Sample Collection
TAC小鼠模型
C57BL/6J小鼠年龄(3周龄用于AAV注射),TAC手术方法,AAV9注射剂量和途径(1×10^12病毒基因组/小鼠尾静脉注射),超声心动图时间点(注射后42天和56天)
阅读提示:Methods部分Transverse Aortic Constriction和Adeno-Associated Virus 9 Vector Construction and Injection,Results部分Overexpression of ATP5F1A in Cardiomyocytes Could Promote CRR
DCM小鼠模型
cTnTR141W转基因小鼠,AAV9注射剂量和途径(1×10^12病毒基因组/小鼠尾静脉注射),超声心动图时间点(注射前和注射后56天)
阅读提示:Methods部分Dilated Cardiomyopathy Mouse Model和Adeno-Associated Virus 9 Vector Construction and Injection
代谢测量
使用Seahorse XFe24分析仪,试剂盒(103015-100),微孔板(103518-100),组织厚度100μm
阅读提示:Methods部分Oxygen Consumption Rate and Extracellular Acidification Rate Calculation