弱的神经元糖酵解维持认知和机体适应度

Weak neuronal glycolysis sustains cognition and organismal fitness

作者信息Daniel Jimenez-Blasco, Jesús Agulla, Rebeca Lapresa, Marina Garcia-Macia, Veronica Bobo-Jimenez, Dario Garcia-Rodriguez, Israel Manjarres-Raza, Emilio Fernandez, Yannick Jeanson, Spiro Khoury, Jean-Charles Portais, Daniel Padro, Pedro Ramos-Cabrer, Peter Carmeliet, Angeles Almeida, Juan P Bolaños
PMID38789798
期刊Nat Metab
发布时间2024-07
DOI10.1038/s42255-024-01049-0

实验完整度

包含体内转基因小鼠模型、原代神经元培养、代谢通量分析、线粒体功能检测、行为学实验、体内NAD+恢复等多层次验证,并进行了机制干预(mCat、NMN)。

主要模型

CamkIIα-Pfkfb3小鼠(神经元特异性Pfkfb3表达) 原代皮层神经元(Pfkfb3lox/+小鼠胚胎) MBH-nPfkfb3小鼠(下丘脑弓状核神经元Pfkfb3表达) mCat转基因小鼠(线粒体过氧化氢酶过表达)

重点核对

Pfkfb3lox/+小鼠与CamkIIα-cre交配产生CamkIIα-Pfkfb3小鼠 原代神经元用AAV-CMV-Cre-GFP转导表达Pfkfb3 用NMN(100 mg/kg体重)腹腔注射1个月恢复NAD+ mCat过表达消除线粒体ROS 高脂饮食(D12451)诱导代谢表型

摘要

神经元活动的能量消耗主要由葡萄糖维持。然而,一个明显的悖论是,神经元通过糖酵解代谢葡萄糖的程度适中,这种情况可以通过6-磷酸果糖-2-激酶/果糖-2,6-二磷酸酶-3(PFKFB3)的持续降解来解释,PFKFB3是一种关键的促糖酵解酶。为了评估这种低糖酵解代谢在体内的生理重要性,我们通过基因工程改造了小鼠,使其神经元通过Pfkfb3表达转变为活跃的糖酵解细胞。对这些神经元的体内分子、生化和代谢通量分析显示,异常线粒体积累、复合物I解体、生物能量缺乏和线粒体氧化还原应激。值得注意的是,糖酵解介导的烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)还原损害了sirtuin依赖性自噬。此外,这些小鼠表现出认知能力下降和代谢综合征,这种综合征通过将Pfkfb3表达限制在下丘脑神经元中得以模拟。神经元特异性遗传消除线粒体氧化还原应激或恢复大脑NAD+纠正了这些行为改变。因此,神经元的弱糖酵解特性是维持高级有机体功能所必需的。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
神经元弱糖酵解代谢在体内的生理重要性是什么?
核心机制
神经元糖酵解增强通过增加线粒体ROS导致复合物I失活和生物能量障碍,降低NAD+/NADH比值,损害sirtuin依赖性自噬,从而影响认知和下丘脑代谢调控。
主要证据
CamkIIα-Pfkfb3小鼠和原代神经元显示线粒体ROS增加、复合物I活性降低、NAD+减少、自噬通量下降;mCat过表达或NMN处理可逆转这些改变和行为缺陷;MBH局限表达Pfkfb3模拟代谢综合征。
研究意义
该研究揭示了神经元弱糖酵解是维持认知和机体代谢适应性的基础,为神经退行性疾病(如阿尔茨海默病)中PFKFB3稳定化或过度糖酵解的病理后果提供解释,并提示神经元特异性抑制PFKFB3可能作为治疗机会。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建神经元特异性Pfkfb3表达小鼠模型

在成年神经元中特异性增强糖酵解,以研究其对生理功能的影响。

通过同源重组在Rosa26位点插入Pfkfb3 cDNA,与CamkIIα-cre小鼠交配获得CamkIIα-Pfkfb3小鼠;验证PFKFB3蛋白表达和神经元特异性。

2

验证神经元糖酵解通量激活

确认Pfkfb3表达导致神经元糖酵解增强。

通过1H-MRS检测乳酸水平,13C-葡萄糖示踪检测糖酵解中间体,原代神经元检测F26BP、3H2O产生和PPP通量。

3

线粒体功能障碍和氧化应激分析

评估增强的糖酵解对线粒体生物能量学和ROS的影响。

使用MitoSOX和Amplex Red检测ROS,BNGE和活性测定评估复合物I,OCR测量线粒体呼吸,TMRM检测膜电位,代谢组学分析。

4

NAD+和自噬检测

探究糖酵解增强导致的NAD+减少及其对自噬的影响。

测定NAD+水平(NAD/NADH-Glo),sirtuin活性,LC3和p62等自噬标志物,并验证NMN恢复NAD+后自噬的改善。

5

行为学和代谢表型分析

评估神经元糖酵解增强对认知行为和整体代谢的影响。

进行旷场、转棒、跑步机、新物体识别测试;高脂饮食诱导,监测体重、食物摄入、脂肪组织重量、血脂和激素水平、糖耐量;下丘脑MBH自噬通量分析。

6

机制验证和干预

验证线粒体ROS和NAD+在表型中的因果作用。

通过mCat过表达消除线粒体ROS,NMN补充恢复NAD+,观察自噬和行为表型是否恢复。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Neurobasal-A培养基Thermo Fisher Scientific--
B27添加剂Thermo Fisher Scientific--
MitoSOX红线粒体超氧化物指示剂Life Technologies--
Amplex Red试剂Life Technologies--
寡霉素Sigma-Aldrich--
鱼藤酮Sigma-Aldrich--
NAD/NADH-Glo检测试剂盒Promega--
亮抑酶肽Sigma-Aldrich--
氯化铵Sigma-Aldrich--
抗LC3B抗体Cell Signaling Technology2775
抗p62抗体Sigma-AldrichP0067
抗ATG7抗体Cell Signaling Technology2631
抗乙酰化赖氨酸抗体Cell Signaling Technology9441
抗PLIN2抗体Abcamab52356
抗TOMM20抗体Abcamab56783
抗PFKFB3抗体Novus BiologicalsH00005209-M08
抗VDAC抗体CalbiochemPC548
抗NDUFS1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-50132
抗NDUFA9抗体Abcamab14713
抗UQCRC2抗体Abcamab14745
抗SDHA抗体Abcamab14715
抗ATPβ抗体MitoSciencesMS503
抗β-肌动蛋白抗体Sigma-AldrichA5441
AAV-PHP.eB-hSyn-GFP文中未明确说明--
AZ67Tocris--
游离脂肪酸检测试剂盒Wako Pure Chemical--
甘油三酯检测试剂盒Sigma-AldrichT2449
胰岛素ELISA试剂盒SPI BioA05105
瘦素ELISA试剂盒SPI BioA05176
Bruker BioSpec 117/16 USR核磁共振系统Bruker BioSpin--
Vanquish Flex超高效液相色谱Thermo Fisher Scientific--
Orbitrap Q Exactive+质谱仪Thermo Fisher Scientific--
多聚-D-赖氨酸Sigma-Aldrich--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠模型
Pfkfb3lox/+小鼠制备:Rosa26位点同源重组;CamkIIα-cre交配获得神经元特异性表达;基因型验证(PCR产物82bp和217bp)。
阅读提示:Methods: In vivo generation of neuron-specific Pfkfb3-expressing mice
原代神经元培养
E14.5胚胎皮层;接种密度2.0×10^5 cells/cm2;培养基Neurobasal-A+2mM谷氨酰胺+5.5mM葡萄糖+0.22mM丙酮酸+2%B27(含抗氧化剂);72小时后换为无抗氧化剂B27;用AAV-CMV-Cre-GFP或AAV-CMV-GFP转导。
阅读提示:Methods: Neurons in primary culture
线粒体ROS检测
MitoSOX浓度2μM,孵育30分钟;Amplex Red 9.45μM;H2O2测定斜率。
阅读提示:Methods: Mitochondrial reactive oxygen species
NMN处理
NMN剂量100 mg/kg体重,腹腔注射,每周三次,共1个月,对照为PBS。
阅读提示:Methods: Treatment of mice with nicotinamide mononucleotide
高脂饮食
HFD配方D12451(Research Diets);从断奶开始喂养21周。
阅读提示:Methods: 小鼠饲养部分