建立3xTg-iAPcIEC转基因小鼠模型
开发一种能够在隐窝IEC中特异性诱导凋亡的小鼠模型,以研究散在隐窝IEC凋亡在NEC发病中的作用。
通过将(tetOp)7-Fasl、ROSA26-rtTA和Villin-cre转基因小鼠杂交,获得携带三种转基因的3xTg-iAPcIEC小鼠。通过基因分型确认基因型,并通过RT-qPCR和免疫印迹验证Dox诱导的Fasl表达。
Scattered Crypt Intestinal Epithelial Cell Apoptosis Induces Necrotizing Enterocolitis Via Intricate Mechanisms
研究包含转基因小鼠模型建立与表征、细胞凋亡与坏死性凋亡机制验证(基因敲除)、免疫细胞耗竭、抗生素处理及16S rRNA测序等多层级实验,并进行功能验证。
3xTg-iAPcIEC新生小鼠模型(scattered crypt IEC apoptosis模型) 3xTg-iAPcIECRip3-/-小鼠 3xTg-iAPcIECIfng-/-小鼠
Dox给药剂量(20或300 mg/kg,皮下注射)及时间点 散在隐窝IEC凋亡的诱导与确认(Fasl转基因表达) RIP3和IFN-γ基因敲除对NEC发展的影响 CD8+ T细胞耗竭(抗CD8单抗,100 μg/只) 万古霉素处理(50 μg/只,灌胃)对革兰氏阳性菌的耗竭
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
开发一种能够在隐窝IEC中特异性诱导凋亡的小鼠模型,以研究散在隐窝IEC凋亡在NEC发病中的作用。
通过将(tetOp)7-Fasl、ROSA26-rtTA和Villin-cre转基因小鼠杂交,获得携带三种转基因的3xTg-iAPcIEC小鼠。通过基因分型确认基因型,并通过RT-qPCR和免疫印迹验证Dox诱导的Fasl表达。
验证Dox诱导的隐窝IEC凋亡是否导致隐窝炎症和绒毛坏死,从而模拟NEC。
对3xTg-iAPcIEC小鼠幼崽皮下注射Dox,在不同时间点(8、24、48、72小时)通过H&E染色观察肠道组织学变化,评估体重增长、肠道通透性和生存率。
确定RIP3是否介导隐窝IEC凋亡诱导的隐窝炎症和绒毛坏死。
通过将3xTg-iAPcIEC小鼠与Rip3-/-小鼠杂交产生3xTg-iAPcIECRip3-/-小鼠,用Dox处理后进行组织学检查和NEC评分,与3xTg-iAPcIEC小鼠比较。
确定IFN-γ是否介导隐窝IEC凋亡诱导的隐窝炎症和绒毛坏死。
通过将3xTg-iAPcIEC小鼠与Ifng-/-小鼠杂交产生3xTg-iAPcIECIfng-/-小鼠,用Dox处理后进行组织学检查和NEC评分,与3xTg-iAPcIEC小鼠比较。
确定CD8+ T细胞是否介导隐窝IEC凋亡诱导的绒毛坏死而非隐窝炎症。
用抗CD8单抗或同型对照处理3xTg-iAPcIEC小鼠幼崽(P2-P5),然后在P3给予Dox,72小时后收集肠道组织进行组织学检查和免疫细胞分析。
确定革兰氏阳性菌失调是否介导隐窝IEC凋亡诱导的绒毛坏死而非隐窝炎症。
用万古霉素或载体处理3xTg-iAPcIEC小鼠幼崽(P0-P6),在P3给予Dox,72小时后收集肠道组织进行组织学检查和微生物组分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 诱导细胞凋亡 | 多西环素 | Sigma | -- |
| 细胞增殖标记 | EdU | Invitrogen | -- |
| 免疫细胞耗竭 | 抗CD8单克隆抗体 | Bio X cell | 2.43 |
| 革兰氏阳性菌耗竭 | 万古霉素 | Sigma Chemical | -- |
| 肠道通透性测定 | FITC-葡聚糖 | Sigma | FD-10S |
| Western blotting | CASP3抗体 | Cell Signaling Technology | 9662 |
| Cleaved CASP3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| CASP8抗体 | Cell Signaling Technology | 4927 | |
| RIP1抗体 | Cell Signaling Technology | 3493 | |
| pRIP1抗体 | Cell Signaling Technology | 31122 | |
| RIP3抗体 | Cell Signaling Technology | 95702 | |
| pRIP3抗体 | Cell Signaling Technology | 57220 | |
| MLKL抗体 | Cell Signaling Technology | 37705 | |
| pMLKL抗体 | Cell Signaling Technology | 37333 | |
| FasL抗体 | Invitrogen | PA5-87385 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Sigma | A3854 | |
| RNAscope原位杂交 | RNAscope探针(Lgr5) | Advanced Cell Diagnostics | 312171 |
| RNAscope探针(Fasl) | Advanced Cell Diagnostics | 439481-C2 | |
| EdU标记 | Click-iT Plus EdU细胞增殖试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | C10638 |
| 流式细胞术 | CD8抗体 | BD | 566409 |
| CD3抗体 | BD | 557596 | |
| CD4抗体 | BD | 557956 | |
| CD64抗体 | BD | 558539 | |
| MHC-II抗体 | BioLegend | 107630 | |
| SigF抗体 | BD | 562757 | |
| Ly6G抗体 | BD | 563979 | |
| CD45抗体 | BioLegend | 103136 | |
| 可固定活力染料 | eBioscience | 65086614 | |
| Fc受体阻断剂 | BD | 553142 | |
| Ly6C抗体 | BioLegend | 128032 | |
| CD11b抗体 | BD | 612800 | |
| CD19抗体 | BD | 749028 | |
| CD11c抗体 | BD | 564080 | |
| NK1.1抗体 | eBioscience | 417594182 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 转基因小鼠模型 | 3xTg-iAPcIEC小鼠的基因型、Dox诱导的Fasl表达 阅读提示:Figure 1, 2; Methods: Establishment of 3xTg-iAPcIEC Mouse Model |
| Dox处理 | Dox剂量(20或300 mg/kg)、给药途径(皮下)、时间点(P3) 阅读提示:Methods: Establishment of 3xTg-iAPcIEC Mouse Model; Figure 2, 3 |
| 组织学评估 | 组织学评分标准(NEC分级≥3)、观察时间点 阅读提示:Methods: Histological Examination; Figure 3 |
| 基因敲除验证 | Rip3和Ifng基因敲除小鼠的构建及表型 阅读提示:Methods: Establishment of 3xTg-iAPcIECRip3-/- and 3xTg-iAPcIECIfng-/- Mouse Model; Figure 6, 9 |
| 免疫细胞耗竭 | 抗CD8单抗的剂量(100 μg/只)、给药方案(皮下,每日两次,P2-P5) 阅读提示:Methods: Depletion of CD8+ T cells in Mouse Pups; Figure 10 |
| 抗生素处理 | 万古霉素的剂量(50 μg/只)、给药途径(灌胃,每日三次,P0-P6) 阅读提示:Methods: Depletion of Gram-positive Bacteria; Figure 12 |