装甲型TGFβRIIDN ROR1-CAR T细胞排斥实体瘤并抵抗组成性和治疗诱导的TGFβ1的抑制

Armored TGFβRIIDN ROR1-CAR T cells reject solid tumors and resist suppression by constitutively-expressed and treatment-induced TGFβ1

作者信息Tri Minh Tran, Bal Krishna Chand Thakuri, Saule Nurmukhambetova, Jia-Jye Lee, Peirong Hu, Ngoc Q Tran, Brittany Steimle, Pradyot Dash, Dina Schneider
PMID38609317
发布时间2024-04-12
DOI10.1136/jitc-2023-008261

实验完整度

包含体外细胞杀伤和细胞因子检测、体内血液肿瘤和实体瘤异种移植模型、TGFβ信号通路磷酸化检测及装甲型CAR的体内外功能验证等至少两个独立证据层级。

主要模型

Jeko-1淋巴瘤异种移植模型 OVCAR-3卵巢癌异种移植模型 AsPC-1胰腺癌异种移植模型 AsPC-1/TGFβ1过表达模型

重点核对

CAR-1与CAR-2的CAR表面密度(MFI)差异 TGFβ1处理浓度(10 ng/mL)及处理时间(5、15、30分钟)对pSmad2/3的影响 AsPC-1/TGFβ1细胞过表达TGFβ1的产量(约16000 pg/mL活性形式) E:T比例(2:1)及共培养时间(3天)在阻抗杀伤实验中的设定 体内实验中CAR T细胞输注剂量(5e6 CAR+T细胞/小鼠)和肿瘤细胞接种量(1e6或10e6细胞/小鼠)

摘要

背景:嵌合抗原受体(CAR)T细胞疗法靶向受体酪氨酸激酶样孤儿受体1(ROR1),ROR1在血液肿瘤和实体瘤中广泛表达,然而临床上已表征的具有单链可变片段(scFv)-R12靶向结构域的ROR1-CAR T细胞未能诱导持久的缓解,部分原因是免疫抑制性肿瘤微环境(TME)。在此,我们描述了一种改进的ROR1-CAR的开发,该CAR具有新型的全人源scFv9靶向结构域,并增强了TGFβRIIDN装甲,以对抗主要的TME因子转化生长因子β(TGFβ)。方法:通过慢病毒转导富集的CD4+和CD8+ T细胞产生CAR T细胞,并在体外和体内将新型基于scFv9的ROR1-CAR-1与临床表征的基于ROR1-R12-scFv的CAR-2进行比较。结果:当对%CAR+进行标准化时,CAR-1 T细胞表现出比CAR-2更高的CAR表面密度,并在体外对血液肿瘤(Jeko-1、RPMI-8226)和实体瘤(OVCAR-3、Capan-2、NCI-H226)细胞系产生更多的干扰素(IFN)-γ、肿瘤坏死因子(TNF)-α和白细胞介素(IL)-2。在体内,CAR-1和CAR-2均清除了血液Jeko-1淋巴瘤异种移植物,但只有CAR-1完全排斥卵巢实体OVCAR-3肿瘤,与CD8+和CD4+CAR T细胞的更大扩增以及中央记忆和效应记忆表型的富集一致。当配备TGFβ保护性装甲TGFβRIIDN时,与单独的CAR-1相比,CAR-1 T细胞抵抗TGFβ介导的pSmad2/3磷酸化。当在TGFβ1存在下与ROR1+ AsPC-1胰腺癌细胞系共培养时,装甲型CAR-1表现出改善的杀伤功能、IFN-γ、TNF-α和IL-2分泌的恢复。在过表达TGFβ1的小鼠AsPC-1胰腺肿瘤异种移植物中,装甲型CAR-1,与单独的CAR-1相比,实现了完全的肿瘤消退,并产生了CAR+T细胞的加速扩增、循环活性TGFβ1的减少,且没有明显的毒性或体重减轻。出乎意料的是,在没有TGFβ过表达的AsPC-1异种移植物中,TGFβ1的产生是由ROR1-CAR T细胞与ROR1阳性肿瘤细胞相互作用特异性诱导的,而TGFβRIIDN装甲赋予了加速的肿瘤清除。结论:新型全人源TGFβRIIDN装甲的ROR1-CAR-1 T细胞对ROR1阳性肿瘤具有高效力,并能抵抗实体TME中TGFβ的抑制效应。此外,TGFβ1的诱导代表了实体TME中一种新的、CAR诱导的检查点,可以通过在T细胞上共表达TGFβRIIDN装甲来规避。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何开发一种改进的ROR1-CAR T细胞产品,既能在体外和体内对实体瘤具有更强效力,又能抵抗肿瘤微环境中TGFβ介导的免疫抑制?
核心机制
新型全人源scFv9靶向结构域的CAR-1比临床表征的R12-scFv CAR-2具有更高的CAR表面密度,从而增强细胞因子产生和体内扩增;TGFβRIIDN装甲通过显性负性作用阻断TGFβ1信号传导,减少pSmad2/3磷酸化,从而恢复CAR T细胞的效应功能。此外,CAR-T与ROR1阳性肿瘤细胞相互作用可诱导TGFβ1产生,构成新的微环境检查点,而TGFβRIIDN装甲可克服该检查点。
主要证据
体外实验显示CAR-1比CAR-2产生更多IFN-γ、TNF-α和IL-2;体内卵巢癌OVCAR-3模型仅CAR-1介导肿瘤消退;在AsPC-1/TGFβ1模型中,装甲型CAR-1实现完全消退且循环TGFβ1水平显著降低;在亲本AsPC-1模型中,装甲型CAR-1加速肿瘤清除,且TGFβ1仅在CAR-T浸润区域由T细胞和肿瘤细胞产生。
研究意义
该研究开发的新型装甲型ROR1-CAR T细胞可能改善ROR1阳性实体瘤患者的临床结局,并可能扩展到其他实体肿瘤抗原和癌症类型。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

CAR构建与慢病毒转导

生成表达新型scFv9靶向结构域的CAR-1和对照CAR-2,以及共表达TGFβRIIDN装甲的CAR-1慢病毒载体。

将scFv9或scFv R12序列与人IgG4铰链、CD8跨膜结构域、4-1BB共刺激结构域和CD3ζ信号结构域融合,克隆至慢病毒载体,并通过HEK 293T细胞瞬时转染产生慢病毒颗粒,转导原代人T细胞。

2

体外功能评估

比较CAR-1与CAR-2在细胞毒性、细胞因子产生以及对TGFβ抑制的抵抗能力。

通过共培养实验评估CAR T细胞对多种血液肿瘤和实体瘤细胞系的杀伤活性和细胞因子分泌;通过添加外源TGFβ1或使用TGFβ1过表达肿瘤细胞系评估装甲型CAR的恢复功能;通过流动细胞术检测pSmad2/3磷酸化。

3

体内血液肿瘤模型评估

比较CAR-1与CAR-2在血液肿瘤异种移植模型中的抗肿瘤效果和T细胞扩增情况。

在NSG小鼠中植入Jeko-1细胞,然后输注CAR T细胞,通过生物发光成像监测肿瘤进展,通过流式细胞术分析外周血中的CAR-T细胞和肿瘤细胞。

4

体内实体瘤模型评估

比较CAR-1与CAR-2在实体瘤卵巢癌模型中的抗肿瘤效果,并评估装甲型CAR-1在胰腺癌模型中的效果。

在NSG小鼠中腹腔或皮下植入OVCAR-3或AsPC-1细胞,输注CAR T细胞,监测肿瘤生长、体重、外周血CAR-T细胞扩增和记忆表型,并通过免疫组化或MICS分析肿瘤组织。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
CD4磁珠Miltenyi Biotec--
CD8磁珠Miltenyi Biotec--
转化生长因子β1----
抗α平滑肌肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology34105S
抗TGFβ1抗体AbcamEPR21143

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
CAR T细胞产生
慢病毒转导的感染复数(MOI)为40,病毒拷贝数<5拷贝/细胞,T细胞来自健康供体。
阅读提示:Methods: Generation of CAR constructs and Primary human T cells
体外细胞因子和杀伤实验
效应细胞与靶细胞共培养18小时,E:T比例(对CAR+T细胞归一化),ELISA定量细胞因子。
阅读提示:Methods: Cytotoxicity assay 和 Results 第一部分
TGFβ信号抑制实验
IL-2饥饿22小时,TGFβ1浓度10 ng/mL,处理时间5、15、30分钟,检测pSmad2/3。
阅读提示:Results 第三部分和图3D
体内血液肿瘤模型
Jeko-1细胞接种量0.5e6静脉注射,CAR T细胞3e6静脉注射,每组6只NSG小鼠。
阅读提示:Results 第二部分和图1G
体内实体瘤模型
OVCAR-3接种量10e6腹腔注射,AsPC-1或AsPC-1/TGFβ1接种量1e6皮下注射,CAR T细胞5e6静脉注射,每组5只小鼠。
阅读提示:Methods: In vivo studies 和 Results 第四、五部分