构建条件敲除小鼠模型
在胚胎期Aqp2+祖细胞中特异性失活Pkd2。
将Aqp2Cre与Pkd2f/f小鼠杂交,获得Pkd2AC小鼠,并通过基因分型确认。
Pkd2 Deficiency in Embryonic Aqp2 + Progenitor Cells Is Sufficient to Cause Severe Polycystic Kidney Disease
包含基因敲除小鼠模型、细胞表型定量分析、多种PKD模型对比及患者样本验证,涵盖胚胎、新生和成年阶段,并涉及功能验证(囊肿形成)和机制探讨。
Aqp2Cre Pkd2f/f (Pkd2AC) 小鼠 Aqp2ECE/+Pkd2f/f (Pkd2ECE) 小鼠 ADPKD患者肾组织
Pkd2AC小鼠在P6开始出现囊肿,P17死亡,需验证囊肿出现时间和致死性。 细胞计数中,α-闰细胞在P12完全消失,需验证AE1染色结果。 Pkd2ECE小鼠经他莫昔芬诱导后,需确认Pkd2敲除效率(约为47%-81%)。 ADPKD患者样本中,仅13/27样本的囊肿内发现AQP2+细胞,需验证细胞计数样本选择。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在胚胎期Aqp2+祖细胞中特异性失活Pkd2。
将Aqp2Cre与Pkd2f/f小鼠杂交,获得Pkd2AC小鼠,并通过基因分型确认。
确定Pkd2在胚胎、新生和成年AP及其衍生物中的表达情况。
通过三重免疫荧光染色(Aqp2/B1B2/Pkd2)在E15.5、P1和P60肾脏中检测Pkd2表达。
观察Pkd2缺失是否导致多囊肾病。
对Pkd2AC小鼠在不同时间点(P1、P6、P12、P17)进行肾脏组织学分析(H&E)和囊肿测量。
确定囊肿中不同细胞类型(主细胞、闰细胞、AP、过渡细胞)的比例变化。
通过免疫荧光染色(Aqp2/B1B2、Aqp2/Pendrin、Aqp2/AE1)对囊肿细胞进行计数和分类。
探究细胞比例变化是否由不同细胞类型的增殖差异引起。
在P6时通过Ki67和PCNA免疫荧光染色标记增殖细胞,并计算各细胞类型中增殖细胞的比例。
确定α-闰细胞完全丢失是否为Pkd2缺失特异性表型。
对cpk、Pkd1RC/RC、Thm1CKO和Six2creFrs2αKO模型进行Aqp2/AE1染色,检测囊肿中α-闰细胞。
确定Pkd2AC小鼠的表型是否反映人类ADPKD。
对27名ADPKD患者和9名正常对照的肾脏切片进行AQP2/B1B2、AQP2/PENDRIN、AQP2/AE1免疫荧光染色,并计数细胞。
确定新生期或成年期Aqp2+细胞中Pkd2缺失是否导致PKD。
通过他莫昔芬诱导Pkd2ECE小鼠(P1或P60),在P300时分析肾脏形态。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫荧光染色 | 抗V-ATPase B1和B2抗体 | Santa Cruz | sc-55544 |
| 抗Aqp2抗体 | Santa Cruz | sc-515770 | |
| 抗Pendrin抗体 | Santa Cruz | sc-518830 | |
| 抗AE1抗体 | Alpha Diagnostic | AE11-A | |
| 抗RFP抗体 | Clontech | 632496 | |
| 抗Aqp2抗体 | Santa Cruz | sc-28629 | |
| 抗Aqp1抗体 | Millipore | AB2219 | |
| 抗NCC抗体 | Millipore | AB3553 | |
| 抗V-ATPase B1和B2抗体 | Santa Cruz | sc-20943 | |
| 抗Pkd2抗体 | Proteintech | 19126-1-AP | |
| 抗Ki67抗体 | Abcam | AB15580 | |
| 抗PCNA抗体 | Abcam | AB29 | |
| 正常兔IgG | Santa Cruz | sc-2027 | |
| 抗Aqp2抗体 | Santa Cruz | sc-9882 | |
| 抗尿调节素抗体 | Santa Cruz | sc-19554 | |
| 抗钙结合蛋白抗体 | Santa Cruz | sc-7691 | |
| 抗巨蛋白抗体 | Santa Cruz | sc-16478 | |
| 抗Pendrin抗体 | Santa Cruz | sc-16894 | |
| Alexa Fluor 568 驴抗兔IgG | Invitrogen | A10042 | |
| Alexa Fluor 647 驴抗山羊IgG | Invitrogen | A21447 | |
| Alexa Fluor 594 驴抗山羊IgG | Jackson Immunoresearch | 705-585-147 | |
| Alexa Fluor 488 驴抗小鼠IgG | Jackson Immunoresearch | 715-545-150 | |
| Alexa Fluor 647 驴抗小鼠IgG | Jackson Immunoresearch | 715-605-151 | |
| 488-Fab片段驴抗兔IgG | Jackson Immunoresearch | 711-547-003 | |
| 小鼠诱导 | 他莫昔芬饮食 | Envigo | TD. 130857 |
| 他莫昔芬 | Sigma | T5648 | |
| 组织处理 | Prolong Gold抗淬灭封片剂 | Invitrogen | -- |
| 图像采集 | 荧光显微镜(Olympus IX71) | Olympus | -- |
| 共聚焦显微镜(Zeiss LSM 880 NLO) | Zeiss | -- | |
| 组织切片扫描 | NanoZoomer 数字切片扫描仪 | Hamamatsu | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型构建 | Cre转基因小鼠品系(Aqp2Cre、Aqp2ECE)、Pkd2floxed等位基因来源、诱导方案(他莫昔芬剂量和给药方式) 阅读提示:Methods: Generation, Genotyping, and Induction of Aqp2Cre Pkd2f/f and Aqp2ECE/+Pkd2f/f Mice |
| 免疫荧光染色 | 一抗浓度(1:100-200),二抗浓度(1:200-1000),抗原修复条件(0.01M柠檬酸钠,pH6.0) 阅读提示:Methods: IF Studies |
| 细胞计数 | 细胞计数标准(连接小管/集合管或囊肿的识别),每个样本计数的细胞数量(>1000),使用的软件(ImageJ) 阅读提示:Methods: IF Studies |
| 组织学分析 | H&E染色步骤,切片厚度(5μm) 阅读提示:Methods: Histologic Analyses |