队列建立与分组
建立年龄和性别匹配的四个比较组,以评估疫苗和感染状态对免疫指标的影响。
从2018年SHIVERS-II队列中选取206名成人,分为未接种未感染、未接种感染、接种未感染、接种感染四组。
Baseline innate and T cell populations are correlates of protection against symptomatic influenza virus infection independent of serology
包含多层级证据:人群队列(206例)、高维流式细胞术、血清学检测、单变量和多变量回归建模、随机森林预测模型。
SHIVERS-II人类队列(2018年,n=206) 外周血单个核细胞(PBMC)体外刺激模型
样本量:206名成人,分为接种/未接种及感染/未感染四组 基线样本采集:未接种者于季前(3-5月),接种者于接种后14天 流式细胞术:使用Cytek Aurora光谱流式细胞仪和FlowJo分析 血清学检测:HAI、NAI-ELLA、ELISA 统计模型:GLM、随机森林、ROC分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立年龄和性别匹配的四个比较组,以评估疫苗和感染状态对免疫指标的影响。
从2018年SHIVERS-II队列中选取206名成人,分为未接种未感染、未接种感染、接种未感染、接种感染四组。
量化基线抗体滴度和细胞亚群频率,以评估其与有症状流感的相关性。
通过HAI、NAI-ELLA和ELISA检测血清抗体;通过高维流式细胞术检测PBMC的免疫细胞亚群。
独立评估每个细胞亚群和血清学指标与有症状流感风险的关系。
使用单变量GLM和Wilcoxon检验比较感染组和未感染组的指标水平。
为每个免疫指标确定保护或易感的临界值。
通过ROC曲线分析确定达到50%灵敏度的阈值,并计算AUC。
识别协同变化的免疫细胞群体。
基于Pearson相关将细胞亚群聚类为共调控模块,并比较不同感染状态下的模块频率。
比较包含不同变量组合的模型在预测有症状流感中的准确性。
构建四种随机森林模型,使用80:20训练测试分割,并进行交叉验证。
确定独立预测有症状流感风险的变量,并评估协同效应。
使用GLM结合方差膨胀因子和stepwise选择变量,构建最终多变量模型。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 血清学检测 | EIA/RIA 96孔板 | Corning | 3590 |
| ELISA | 重组流感病毒HA蛋白 | Sino Biological | 40567-V08H1 |
| 重组流感病毒HA蛋白 | Sino Biological | 40580-V08H | |
| 重组流感病毒HA蛋白 | Sino Biological | 40498-V08B | |
| 重组流感病毒HA蛋白 | Sino Biological | 40016-V08H | |
| 重组流感病毒NA蛋白 | Sino Biological | 40568-V07H | |
| 重组流感病毒NA蛋白 | Sino Biological | 40802-V08B | |
| 重组流感病毒NA蛋白 | Sino Biological | 40502-V07B | |
| 重组流感病毒NA蛋白 | Sino Biological | 40790-V08B | |
| 受体破坏酶 | Accurate Chemical | YCC340122 | |
| 牛血清白蛋白 | Gibco | 15260037 | |
| 吐温-20 | ThermoFisher | 85113 | |
| 抗人IgG(Fab特异性)-HRP二抗 | Sigma | A0293 | |
| BioTek Synergy H1酶标仪 | BioTek | -- | |
| 细胞培养与刺激 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | 16140071 | |
| 非必需氨基酸 | Gibco | 11140-050 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| 混合肽(M、NP、PB1) | BEI Resources | NR-2667 | |
| 细胞刺激混合物 | BioLegend | 423302 | |
| 细胞刺激混合物 | eBioscience | 00-4970-93 | |
| 布雷非德菌素A | BioLegend | 420601 | |
| 布雷非德菌素A | BD | 555029 | |
| 莫能菌素 | BD | 554715 | |
| 抗CD107a荧光偶联抗体 | BioLegend | -- | |
| 流式染色 | 人Fc阻断剂 | BioLegend | 422302 |
| CCR3 AF647 | BioLegend | 310710 | |
| CCR5 PerCP/eFluor710 | ThermoFisher | 46-1951-82 | |
| CCR7 PE/Cy7 | BioLegend | 353226 | |
| CD1c PE/Cy7 | BioLegend | 331516 | |
| CD3 BV750 | BioLegend | 344846 | |
| CD3 BV510 | BioLegend | 300448 | |
| CD4 BB515 | BD | 565996 | |
| CD8 BV570 | BioLegend | 301038 | |
| CD11b CD785 | BioLegend | 301346 | |
| CD11c BV650 | BioLegend | 337238 | |
| CD14 APC/Fire750 | BioLegend | 367120 | |
| CD16 FITC | BioLegend | 360716 | |
| CD19 BV510 | BioLegend | 302242 | |
| CD33 PE | BioLegend | 303404 | |
| CD40 AF700 | BioLegend | 334328 | |
| CD45RA V450 | ThermoFisher | 48-0458-42 | |
| CD45RA BV570 | BioLegend | 304132 | |
| CD45RO APC/Fire 750 | BioLegend | 304250 | |
| CD56 PE-Cy5 | BioLegend | 362516 | |
| CD64 BV711 | BD | 740782 | |
| CD80 SuperBright 436 | ThermoFisher | 62-0809-42 | |
| CD103 BV605 | BioLegend | 350217 | |
| CD107a BV711 | BioLegend | 328640 | |
| CD107a PE/Dazzle 594 | BioLegend | 328646 | |
| CD123 PE | BioLegend | 306006 | |
| CD123 PerCP/Cy5.5 | BioLegend | 306016 | |
| CD141 BV421 | BioLegend | 344144 | |
| CD177 APC | BioLegend | 315808 | |
| CXCR3 PE/Dazzle594 | BioLegend | 353736 | |
| CXCR3 BV711 | BioLegend | 353732 | |
| CXCR5 SuperBright436 | ThermoFisher | 62-9185-42 | |
| HLA-A2 BV650 | BioLegend | 343324 | |
| HLA-DR AF700 | BioLegend | 307626 | |
| HLA-DR PE/Dazzle 594 | BioLegend | 307654 | |
| ICOS PerCP/Cy5.5 | BioLegend | 313518 | |
| GhostDye Violet 510活力染料 | Tonbo | 13-0870-T500 | |
| PD1 FITC | BioLegend | 329904 | |
| Siglec-8 BV480 | BD | 747874 | |
| TCRγδ AF647 | BioLegend | 331214 | |
| Cytofix/CytoPerm固定和透化试剂盒 | BD | 554714 | |
| CD68 PerCP/Cy5.5 | BioLegend | 333814 | |
| 颗粒酶B AF700 | BioLegend | 372222 | |
| IL2 APC | ThermoFisher | 17-7029-82 | |
| IL13 BV421 | BioLegend | 501916 | |
| IL17 BV785 | BioLegend | 512338 | |
| IL21 PE | BioLegend | 513004 | |
| IFNγ BV480 | BD | 566100 | |
| TNFα BV605 | BioLegend | 502936 | |
| 流式细胞术 | Cytek 3激光Aurora光谱流式细胞仪 | Cytek | -- |
| 病毒分离 | MDCK-SIAT细胞 | -- | -- |
| HAI实验 | 火鸡红细胞 | -- | -- |
| 受体破坏酶 | Denka Seiken | -- | |
| PEI细胞刺激 | 混合肽 | BEI Resources | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 队列选择 | 年龄和性别匹配的四个比较组,样本量每组具体数量 阅读提示:Methods: Participant categorization and selection; Table 1 |
| 基线样本采集 | 未接种者季前(March-May)采集,接种者接种后14天采集 阅读提示:Methods: SHIVERS-II study design and participant definitions |
| 细胞刺激 | 肽刺激浓度5 μg/mL;病毒MOI=4;刺激时间2小时(肽)或12小时(病毒);布雷菲德菌素A和莫能菌素处理 阅读提示:Methods: Flow cytometry: surface and intracellular staining |
| 流式细胞术染色 | 抗体克隆、荧光染料、稀释度、染色时间 阅读提示:Methods: Flow cytometry: surface and intracellular staining; Extended Data Fig. 3-4 |
| 统计建模 | 80:20训练测试分割;随机森林模型变量组成;GLM变量选择和VIF阈值 阅读提示:Methods: Statistical modeling; Predictive modeling |