结构指导挖掘VIPR系统
鉴定CRISPR-Cas祖先RAMP蛋白及VIPR系统。
基于RRM核心、G-loop和thumb结构特征,对AlphaFold数据库进行结构相似性搜索,鉴定RAMP同源物家族,并分析基因组分布和系统发育。
A noncontiguous code for RNA-guided DNA recognition at the origin of CRISPR-Cas.
结合结构指导的基因组挖掘、sRNA-seq、体外竞争性结合、体内GFP抑制、ChIP-seq及噬菌体防御/诱导功能验证
SUSP1噬菌体感染的大肠杆菌 P. fulva原噬菌体VIPR系统表达的大肠杆菌 λ噬菌体及λ溶原性大肠杆菌
vrRNA的GGY/NN串联重复结构及1 nt skip识别规则 仅1 nt skip靶标在过量竞争DNA下保持结合 仅1 nt skip靶标序列引起GFP抑制,且vipr缺失或GGY/NN突变消除沉默 靶向cro的vrRNA使λ噬菌体成斑效率降低五个数量级 靶向cI的vrRNA触发原噬菌体诱导
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定CRISPR-Cas祖先RAMP蛋白及VIPR系统。
基于RRM核心、G-loop和thumb结构特征,对AlphaFold数据库进行结构相似性搜索,鉴定RAMP同源物家族,并分析基因组分布和系统发育。
验证VIPR系统编码向导RNA并解析其序列和结构特征。
用SUSP1噬菌体感染大肠杆菌,1小时后进行sRNA-seq;异源表达SUSP1和P. fulva VIPR系统并进行Vipr蛋白pull-down;用Evo2分析vrRNA序列保守性和熵;RNA折叠预测二级结构。
确定vrRNA识别DNA的靶标规则。
基于NN二核苷酸与0-3个间隔碱基组合,搜索E. coli泛基因组,比较不同skip规则的匹配频率。
验证1 nt skip规则在体外DNA结合中的有效性。
体外重建SUSP1 VIPR RNP,与设计为0-3 nt skip的FAM标记双链DNA靶标及鲑鱼精竞争DNA孵育,检测结合。
验证1 nt skip规则在体内转录抑制中的功能。
将0-3 nt skip靶标置于GFP报告基因上游,在大肠杆菌中表达VIPR系统,检测GFP抑制;并测试vipr缺失、GGY/NN突变及重编程vrRNA的影响。
确认RNP在预测靶位点的占位。
进行ChIP-seq分析RNP全基因组结合。
验证VIPR系统可防御入侵噬菌体。
用表达VIPR系统及靶向λ噬菌体cro基因的vrRNA的大肠杆菌挑战λ噬菌体,进行成斑实验和液体培养防御实验。
验证VIPR系统可迫使驻留原噬菌体进入裂解。
在E. coli λ溶原菌中表达靶向cI的vrRNA,检测原噬菌体诱导。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| vrRNA鉴定与结构分析 | SUSP1感染时间1小时、sRNA-seq读数归一化为CPM、手工检查137条vrRNA序列 阅读提示:图2A、2B、2C及图注;Supplementary Methods |
| 非连续识别规则推断 | 四种skip规则定义(0-3 nt)、E. coli泛基因组搜索参数、匹配质量评分标准 阅读提示:图3A、3B、3C及图注;data S2 |
| 体外竞争性结合 | RNP重建条件、FAM标记底物设计、竞争DNA与底物重量比0/1/2/10倍 阅读提示:图3D及图注;fig. S11 |
| 体内GFP抑制 | GFP报告基因构建、空载体对照、重编程vrRNA序列、vipr缺失或GGY/NN突变设计 阅读提示:图3E、3F及图注;fig. S12 |
| 噬菌体防御功能验证 | λ噬菌体为专性裂解变体、cro靶向vrRNA序列、MOI、n=3生物学重复、vap1共表达条件 阅读提示:图4B-4E及图注;fig. S17 |
| 原噬菌体诱导验证 | E. coli λ溶原菌背景、cI靶向vrRNA序列、cro靶向和非靶向对照 阅读提示:图4F、4G及图注 |