细胞进入过程的cryo-ET可视化
在近生理状态下追踪轮状病毒从附着到DLP释放的完整进入路径并划分步骤。
对与RRV孵育的BSC-1细胞采集倾斜系列并重建断层图,结合亚断层平均、局部构象分类和膜分割,将进入过程描述为六步。
Mechanism of membrane perforation in rotavirus cell entry.
结合cryo-ET在细胞中追踪进入、亚断层平均解析膜结合VP5*、脂质体通透性与感染性实验
BSC-1细胞 恒河猴轮状病毒(RRV)TLP/DLP 体外脂质体
BSC-1细胞与RRV TLP孵育,分析838个断层图(7次实验) 脂质体中加入VP7单体(EDTA缓冲液)与VP7三聚体(Ca2+缓冲液)分组比较,30 min后检测CF信号丢失 加入胰蛋白酶抑制剂以避免蛋白水解 单脂质体TIRF成像与cryo-EM/cryo-ET检测孔洞 活细胞荧光成像与GCaMP6s-CAAX检测Ca2+瞬变
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在近生理状态下追踪轮状病毒从附着到DLP释放的完整进入路径并划分步骤。
对与RRV孵育的BSC-1细胞采集倾斜系列并重建断层图,结合亚断层平均、局部构象分类和膜分割,将进入过程描述为六步。
确定反向构象VP5*与膜相互作用的结构基础。
对分类后的膜结合反向VP5*棘突进行亚断层平均,并将反向VP5*模型对接入密度图;由42个病毒颗粒计算旋转密度平均以定位膜。
检验VP7单体是否足以不依赖细胞因子地破坏膜并形成孔洞。
在含CF的脂质体中加入VP7单体(EDTA缓冲液)、VP7三聚体(Ca2+缓冲液)或仅缓冲液,TIRF成像定量CF信号丢失,并用cryo-EM/cryo-ET观察孔洞。
确定VP7 C端两亲性螺旋是否对应穿孔活性,并检验胰蛋白酶切割是否为感染所必需。
比较VP7292–312合成肽与VP7单体的脂质体穿孔形态;在少量胰蛋白酶或胰蛋白酶抑制剂存在下进行感染性实验。
观察进入过程中Ca2+信号与肌动蛋白组织。
用质膜靶向的GCaMP6s-CAAX检测短时孵育轮状病毒颗粒期间的Ca2+瞬变;用latrunculin A处理观察感染效率,并观察进入位点的肌动蛋白网络。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 活细胞钙成像 | GCaMP6s-CAAX质膜靶向钙传感器 | -- | -- |
| 脂质体膜穿孔实验 | 羧基荧光素 | -- | -- |
| 中性亲和素 | -- | -- | |
| 生物素化PEG包被盖玻片 | -- | -- | |
| 蛋白水解抑制 | 胰蛋白酶抑制剂 | -- | -- |
| 感染性实验 | 胰蛋白酶 | -- | -- |
| 肌动蛋白干扰实验 | latrunculin A | -- | -- |
| 脂质体膜穿孔实验 | VP7残基292–312合成肽 | -- | -- |
| VP7单体 | -- | -- | |
| VP7三聚体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞进入cryo-ET | BSC-1细胞状态、RRV TLP用量、838个断层图来自7次实验的数据集划分 阅读提示:Methods及table S1、figs. S2–S10 |
| VP5*亚断层平均 | 3,255个反向棘突、C3对称施加、分类流程、42个病毒颗粒的膜重叠筛选 阅读提示:Supplementary Text、figs. S2与S9、Materials and Methods |
| 脂质体穿孔实验 | 脂质体脂质组成、CF浓度、VP7单体与三聚体浓度、EDTA/Ca2+缓冲液条件、30 min时间点、n = 3 阅读提示:Fig. 4及图注、Methods |
| VP7肽段实验 | VP7292–312肽浓度与缓冲条件:文中未明确说明 阅读提示:Fig. 4D图注及Methods |
| 胰蛋白酶感染性实验 | 胰蛋白酶与胰蛋白酶抑制剂的用量:文中未明确说明 阅读提示:fig. S15及Methods |
| 肌动蛋白与钙成像 | latrunculin A浓度、GCaMP6s-CAAX检测时间窗口:文中未明确说明 阅读提示:figs. S11与S12及Methods |