人端粒酶二聚体的冷冻电镜结构揭示H/ACA RNP介导的二聚化

Cryo-EM structure of human telomerase dimer reveals H/ACA RNP-mediated dimerization.

作者信息Sebastian Balch, Zala Sekne, Elsa Franco-Echevarría, Patryk Ludzia, Rachael C Kretsch, Wenqing Sun, Haopeng Yu, George E Ghanim, Sigurdur Thorkelsson, Yiliang Ding, Rhiju Das, Thi Hoang Duong Nguyen
PMID40638752
期刊Science
发布时间2025-07-10
DOI10.1126/science.adr5817

实验完整度

高

冷冻电镜结构解析、体外生化验证、细胞实验及突变功能验证多层级证据

主要模型

Expi293F细胞中重组表达的人端粒酶 HEK293T细胞 split nano-luciferase 实验 HCT116 hTR敲除细胞端粒长度救援实验

重点核对

双标签TERT共纯化检测二聚体形成 P4.2 switch和P4.2 comp. hTR突变体对二聚体形成的影响 P4.2 switch突变体在HCT116 hTR KO细胞中的端粒长度救援 dyskerin和NHP2二聚化界面突变体与内源蛋白竞争组装 催化失活TERT突变体D712A/D868A/D869A用于检测催化核心协同性

摘要

端粒酶核糖核蛋白(RNP)利用端粒酶逆转录酶(TERT)和端粒酶RNA(人类为hTR)在染色体末端合成端粒重复序列。先前结构工作显示人端粒酶通常为单体,含单拷贝TERT和hTR。虽有二聚体复合物的证据,但其组成、高分辨率结构和功能仍不清楚。在此,我们报道了结合端粒DNA的人端粒酶二聚体的冷冻电镜结构。该结构揭示了一个26亚基组装体和二聚化界面,早衰疾病突变定位于此。破坏二聚体形成会影响RNP组装、总体端粒酶活性和细胞中的端粒维持。我们的发现解决了围绕端粒酶二聚体的长期谜团,并提示二聚体在端粒酶组装中的作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
人端粒酶二聚体的组成、高分辨率结构、二聚化界面及其功能是什么?
核心机制
二聚化主要由两个H/ACA RNP之间的蛋白-RNA和蛋白-蛋白相互作用介导,hTR的P4.2茎是关键决定因素;二聚化可能通过稳定5’ H/ACA异源四聚体与hTR 5’发夹的次优结合来促进端粒酶组装。
主要证据
冷冻电镜结构解析了26亚基二聚体组装和H/ACA RNP介导的二聚化界面;双标签共纯化和P4.2突变验证二聚化;HCT116 hTR KO细胞端粒长度救援和H/ACA蛋白突变体组装实验支持二聚化在端粒维持和组装中的作用。
研究意义
解决了关于人端粒酶TERT/hTR化学计量比的长期争论,揭示了二聚体在端粒酶组装中的潜在作用,并为端粒相关疾病和治疗策略研究提供了结构平台。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

冷冻电镜数据采集与二聚体颗粒富集

从人端粒酶样品中鉴定并富集二聚体颗粒以解析其结构。

在含TPT和端粒DNA的人端粒酶样品中收集冷冻电镜数据,通过二维分类发现少量二聚体颗粒,整合四套独立数据集富集二聚体颗粒,获得6.2 Å共识图。

2

双标签共纯化验证二聚体存在

生化验证含两个TERT拷贝的端粒酶RNP的存在。

用ZZ-F-TERT和ZZ-SS-TERT共转染Expi293F细胞,经寡核苷酸亲和纯化和Strep-Tactin pulldown,免疫印迹检测Flag标签TERT共纯化。

3

split nano-luciferase检测细胞内二聚体形成

检测细胞内两个TERT分子是否近距离形成复合物。

HEK293T细胞共转染hTR和携带LgBiT或SmBiT的TERT构建体,检测生物发光。

4

冷冻电镜结构解析二聚体组成和二聚化界面

解析二聚体整体架构、亚基组成及H/ACA RNP介导的二聚化界面。

对二聚体颗粒进行信号减除和聚焦分类,获得单个H/ACA RNP protomer 3.0 Å图和H/ACA RNP二聚体3.9 Å图,并结合已发表模型和DRRAFTER建模构建完整原子模型。

5

体外端粒酶活性检测二聚体催化活性

验证纯化的双标签二聚体是否具有延伸端粒DNA的活性。

对纯化的双标签二聚体进行端粒酶引物延伸活性 assay。

6

P4.2茎突变破坏二聚化并影响端粒维持

验证hTR P4.2茎对二聚体形成的重要性及其对细胞端粒维持的影响。

构建P4.2 switch、P4.2 comp.等hTR突变体,用双标签共纯化检测二聚体形成;在HCT116 hTR KO细胞中表达WT或突变hTR,进行TRF assay检测端粒长度。

7

H/ACA蛋白二聚化界面突变影响端粒酶组装

验证二聚化界面上的H/ACA蛋白残基对端粒酶组装的功能重要性。

将WT或突变3xFlag-dyskerin或3xFlag-NHP2与ZZ-SS-TERT和hTR共转染,经寡核苷酸纯化后免疫印迹比较过表达蛋白与内源蛋白的组装竞争效率。

8

检测两个催化核心的独立性与DNA结合

确定二聚体中两个催化核心是否同时结合DNA以及是否存在协同性。

对两个催化核心分别进行信号减除和聚焦分类,解析各自DNA结合状态;纯化含一个WT TERT和一个催化失活TERT的杂合二聚体,比较活性;甘油梯度离心分离单体和二聚体,比较活性与持续合成能力。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Expi293F细胞ThermoFisherA14527
HEK293T细胞ATCCCRL-3216
NEB Q5定点突变试剂盒NEBE0554
PureLink HiPure质粒中提试剂盒InvitrogenK210005
链霉亲和素琼脂糖树脂Thermo Scientific20361
MagStrepXT树脂IBA LifeSciences2-4090-002
DYKDDDK Fab-Trap琼脂糖树脂Chromotekffa
SUMOstar蛋白酶LifeSensorsSP4110
α-32P-dGTPHartmann Analytic GmbhFP204
dGpCppJena BioscienceNU-431S
Lipofectamine 3000ThermoFisherL3000001
Nano-Glo活细胞试剂PromegaN2011
Glomax Discover酶标仪PromegaGM3000
抗Flag抗体Proteintech66008-4-Ig
抗TERT抗体Abcam32020
兔抗dyskerin抗体Santa Cruz Biotechnologysc-48794
兔抗NHP2抗体Proteintech15128-1-AP
BS3交联剂ThermoFisherA39266
C-flat-T-50 4/2载网ProtochipsCF-4/2-4Cu-T-50
RNA清洁浓缩试剂盒Zymo ResearchR1016
SuperScript II逆转录酶ThermoFisher18064014

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
双标签端粒酶纯化
输入裂解液体积与细胞悬浮液体积比例:WT二聚体为168 mL/1 L;ΔPAL二聚体为168 mL/1.2 L;杂合二聚体为196 mL/1.5 L
阅读提示:Materials and methods中Expression and purification of the dual-tagged telomerase小节及fig. S5A、S10E、S11A
冷冻电镜数据采集
总电子剂量约48 e-/Ų、曝光时间2.5秒、像素尺寸1.059 Å、defocus范围-0.8至2.4 μm、四套数据集共66,992个movie
阅读提示:Materials and methods中Cryo-EM sample preparation and data collection小节
端粒酶活性实验
反应温度30 °C、时间45分钟、α-32P-dGTP浓度0.1 μM、引物(TTAGGG)5浓度500 nM
阅读提示:Materials and methods中Telomerase activity assays小节
HCT116 hTR KO细胞端粒长度救援
慢病毒转导后hygromycin B筛选浓度300 μg/mL筛选7天;TRF assay使用3-10 μg基因组DNA
阅读提示:Materials and methods中Lentivirus transduction of HCT116 hTR knockout (KO) cells和Telomere restriction fragment assay小节;Fig. 4C
DMS化学探测
DMS终浓度1%、37 °C反应5分钟、DTT终浓度0.5 M淬灭;两个独立生物学重复
阅读提示:Materials and methods中DMS chemical probing and data analysis小节;fig. S15E