HIV-1通过拮抗淀粉样前体蛋白介导的先天限制导致神经退行性病变

HIV-1 counteracts an innate restriction by amyloid precursor protein resulting in neurodegeneration.

作者信息Qingqing Chai, Vladimir Jovasevic, Viacheslav Malikov, Yosef Sabo, Scott Morham, Derek Walsh, Mojgan H Naghavi
PMID29142315
发布时间2017-11-15
DOI10.1038/s41467-017-01795-8

实验完整度

高

涵盖293T、CHME3、THP-1、PBMC及原代小鼠皮层神经元,含结合、功能、膜定位和体内相关验证

主要模型

293T细胞系 CHME3小胶质细胞系及CHME3 4×4细胞 分化THP-1巨噬细胞 原代人外周血单核细胞(PBMC) 原代小鼠皮层神经元

重点核对

Gag与APP结合依赖MA结构域aa 72-111,Gag-MA-40/60/80缺失突变体不结合APP APP过表达降低培养上清中p24 CA/p17 MA及感染性病毒粒子,APP敲低则增加 膜漂浮实验中APP使Gag滞留于含flotillin-1、caveolin-1及γ-分泌酶组分的膜结合组分 γ-分泌酶抑制剂L-685,458(1或2.5 μM)阻断Gag诱导的APP切割和Aβ42产生 原代小鼠皮层神经元经Gag表达或HIV-1感染细胞上清处理后活力下降,6E10免疫清除Aβ可恢复

摘要

β-淀粉样蛋白(Aβ)是阿尔茨海默病(AD)和痴呆的经典标志物,长期以来已知其在人类免疫缺陷病毒1型(HIV-1)感染的脑中升高,但Aβ为何以及如何产生、其对HIV相关神经认知障碍(HAND)的贡献仍不明确。本文揭示膜相关淀粉样前体蛋白(APP)在巨噬细胞和小胶质细胞中高表达,并作为抗HIV-1的先天限制因子发挥作用。APP结合HIV-1 Gag多聚蛋白,将其滞留在脂筏中,阻断HIV-1病毒粒子产生和传播。为逃避这一限制,Gag促进分泌酶依赖性的APP切割,导致毒性Aβ亚型的过度产生。Gag介导的Aβ产生导致原代皮层神经元变性增加,并可通过γ-分泌酶抑制剂处理加以阻止。干扰HIV-1对APP介导限制的逃避也可抑制HIV-1传播,为治疗感染和预防HAND提供了潜在策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HIV-1感染为何以及如何导致脑中Aβ产生,Aβ是否直接参与HIV-1诱导的神经元损伤。
核心机制
APP作为先天限制因子结合HIV-1 Gag并将其滞留于脂筏,阻断病毒粒子产生;Gag促进宿主分泌酶依赖性APP切割以逃避限制,同时过度产生毒性Aβ42,导致神经元变性。
主要证据
293T转染体系、CHME3小胶质细胞、分化THP-1及PBMC中的结合、病毒产量和膜漂浮实验,以及原代小鼠皮层神经元神经毒性实验和Aβ免疫清除实验。
研究意义
解释了HIV-1感染导致Aβ升高的原因及其对神经元损伤的贡献,提示分泌酶抑制剂可能同时抑制HIV-1复制并预防HAND。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

APP与HIV-1 Gag相互作用鉴定

确认APP是否与Gag结合并定位其结合区域。

在293T细胞中共转染Flag标签APP770与HA标签Gag、MA或CA,进行抗APP免疫共沉淀和GFP结合蛋白(GBP)结合实验;在CHME3 4×4细胞中感染WT HIV-1后用抗APP免疫共沉淀检测内源性APP与Pr55 Gag结合;用系列MA截短突变体定位结合区域。

2

APP对HIV-1病毒粒子产生和传播的功能验证

验证APP是否抑制HIV-1病毒粒子产生及感染性传播。

293T细胞共转染pNL4-3与递增量的APP-Flag或GAPDH-HA对照,检测上清p24 CA/p17 MA及TZM-bl指示细胞感染性;在CHME3 4×4和分化THP-1中用RNAi敲低APP后感染WT HIV-1,检测上清病毒粒子和感染性。

3

APP对Gag膜定位和脂筏滞留的机制验证

确定APP是否通过改变Gag膜分布发挥限制作用。

在293T细胞中转染APP-Flag或GAPDH-HA与WT Gag-HA或Gag-MA-60-HA,进行膜漂浮实验分离膜结合与游离组分并用WB检测Gag、脂筏标志物flotillin-1、caveolin-1及γ-分泌酶组分Nicastrin、PEN2;同时在CHME3细胞中敲低APP后转染Gag进行膜漂浮实验。

4

Gag促进APP经分泌酶切割产生Aβ的验证

验证Gag是否通过宿主分泌酶促进APP切割并产生Aβ。

293T细胞共转染APP与Gag或GAPDH,检测APP、CTF及上清Aβ40/Aβ42;用γ-分泌酶抑制剂L-685,458或β-分泌酶抑制剂Verubecestat处理;在CHME3 4×4和分化THP-1中感染WT HIV-1或VSV-G假型HIV-1,检测Aβ和p24 CA;用RNAi敲低Nicastrin或APP验证机制。

5

Gag诱导的Aβ导致神经元变性的验证

验证Gag诱导产生的Aβ是否直接导致神经元损伤。

收集转染293T细胞或感染CHME3 4×4细胞的上清,经10 kDa和3 kDa滤器澄清浓缩后加入原代小鼠皮层神经元,检测神经元活力及Aβ42水平;用6E10抗体免疫清除Aβ后再次检测神经元活力;在PBMC中敲低APP后检测病毒产量、Aβ和神经元活力。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Ficoll-Plaque分离液GE--
CD14磁珠Miltenyi Biotec--
原代小鼠皮层神经元GibcoA15586
γ-分泌酶抑制剂L-685,458Tocris2627
β-分泌酶(BACE1)抑制剂Verubecestat(MK-8931)SelleckchemS8173
Turbofect转染试剂Thermo scientific--
oligofectamine RNAiMAX转染试剂Invitrogen--
TZM-bl指示细胞AIDS Reagent Repository8129
GalactoStar试剂Life Tech--
PVDF转印膜(Immobilon)MilliporeIPVH00010
4–12% Bis-tris Nu-PAGE凝胶InvitrogenNP0323BOX
抗Flag抗体SigmaF7425
抗HA抗体SigmaH3663
抗APP抗体6E10Biolegend803001
抗HIV-1 Pr55/p24/p17抗体Abcamab63917
抗HIV-1 p24抗体Abcamab9071
抗APP抗体Y188Abcamab32136
抗eIF4E抗体BD Biosciences610269
抗GAPDH抗体Santa Cruzsc-25778
抗Aβ40抗体Thermo FisherPA3-16760
抗Aβ42抗体Life Technologies700254
抗Caveolin-1抗体Cell Signaling--
抗flotillin-1抗体Cell Signaling--
抗GFP抗体Cell Signaling2555
抗PARP-1抗体Cell Signaling9542
抗Nicastrin抗体Cell Signaling5665
抗PEN2抗体Cell Signaling8598
抗APP抗体LN27Invitrogen130200
Hoechst 33342核染料----
转盘共聚焦显微镜(Leica DMI 6000B)LeicaDMI 6000B
刚果红溶液Sigma--
Neurobasal培养基Gibco21103-049
B27添加剂Gibco17504-044
Glutamax添加剂Gibco35050-061
Aβ42酶联免疫吸附测定试剂盒InvitrogenKHB3441
Vita-Orange细胞活力试剂Biotool.com--
10 kDa离心过滤单元Abcamab93349
超滤浓缩器MilliporeUFC900308
APP特异性siRNA双链AmbionS1500, S1501
非靶向对照siRNAAmbionAM4635

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
APP与Gag结合及MA结构域定位
转染质粒用量(293T 2 μg,TurboFect 15 μl)、CHME3 4×4感染后48 h裂解、Gag-MA系列截短突变体(-20/-40/-60/-80-HA)
阅读提示:Methods中Co-IP and GBP-binding assay小节及Fig. 2图注
病毒粒子产量与感染性检测
293T细胞1×10^6、pNL4-3 0.4 μg、转染后48 h收集上清、TZM-bl 1.5×10^4/孔接种100 μl系列稀释上清、感染后48 h测β-半乳糖苷酶
阅读提示:Methods中Virion yield assays小节及Fig. 3图注
膜漂浮实验
293T细胞1.5×10^6、APP-Flag 3 μg、Gag-HA或Gag-MA-60-HA 1 μg、10%–75%蔗糖梯度、SW41Ti 100,000×g过夜、收集10个组分
阅读提示:Methods中Membrane flotation assay小节及Fig. 4图注
分泌酶抑制剂处理
γ-分泌酶抑制剂L-685,458(Tocris 2627)1 μM或2.5 μM、BACE1抑制剂Verubecestat(Selleckchem S8173)、转染或感染后4或6 h加入并维持全程
阅读提示:Methods中Viruses and drugs小节;注意文末更正说明原给药时间有误
神经毒性实验
原代小鼠皮层神经元0.5×10^5/孔、培养10天后加入200 μl浓缩上清、Vita-Orange于450 nm测活力、Aβ42 ELISA(KHB3441)、6E10免疫清除
阅读提示:Methods中Neurotoxicity assay和Immuno-depletion of Aβ小节及Fig. 6图注