构建PPARγ功能缺失和功能获得小鼠模型
探究PPARγ在脂肪祖细胞微环境定位和血管扩张中的作用。
利用Sox2-Cre和AdipoTrak-Cre构建PPARγ LOF小鼠,利用Tre-PPARγ构建GOF小鼠,并通过GFP标记追踪APC。
A PPARγ transcriptional cascade directs adipose progenitor cell-niche interaction and niche expansion.
结合多种基因敲除/过表达小鼠模型、体外细胞实验、组织外植体及药理学干预,进行功能与机制验证
AdipoTrak(AT)小鼠脂肪祖细胞谱系追踪模型 SMA-CreERT2成年APC特异性基因敲除/过表达小鼠模型 FACS分选的AT-GFP+脂肪祖细胞 脂肪组织外植体及基质血管颗粒(SVP)
PPARγ LOF和GOF小鼠模型中APC的微环境定位及血管密度 PDGFRβ作为PPARγ直接转录靶标的ChIP-qPCR和放线菌酮实验 VEGF作为PPARγ直接转录靶标的ChIP-qPCR和放线菌酮实验 PDGFRβ药理学抑制剂(SU16F、伊马替尼)对APC微环境相互作用的影响 AT-VEGF和SMA-rtTA-VEGF小鼠中VEGF过表达对血管扩张和APC滞留的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究PPARγ在脂肪祖细胞微环境定位和血管扩张中的作用。
利用Sox2-Cre和AdipoTrak-Cre构建PPARγ LOF小鼠,利用Tre-PPARγ构建GOF小鼠,并通过GFP标记追踪APC。
验证PPARγ对APC血管微环境占据和血管密度的影响。
通过免疫染色检测GFP、CD31和SMA,量化APC与血管距离,并利用SVP培养评估APC定位。
验证PPARγ对血管生成和APC微环境占据的影响。
将脂肪组织外植体包埋于Matrigel中,培养5天,量化血管出芽长度、分支点和GFP+ APC占据。
探究PPARγ调控PDGFRβ表达的分子机制。
对FACS分选的APC进行微阵列分析、qPCR、放线菌酮处理和ChIP-qPCR。
探究PDGFRβ对APC迁移、微环境占据和血管出芽的影响。
使用PDGF-B和SU16F处理APC和外植体,并通过PDGFRβ LOF和CA小鼠模型验证。
评估PDGFRβ抑制剂伊马替尼对APC微环境定位和脂肪扩张的影响。
给1月龄AT-GFP小鼠腹腔注射伊马替尼或溶剂对照4周,检测脂肪含量、APC定位和血管出芽。
探究PPARγ调控VEGF表达的分子机制。
通过qPCR、放线菌酮处理和ChIP-qPCR验证VEGF是PPARγ直接转录靶标。
探究APC来源VEGF对血管生成和微环境扩张的影响。
构建AT-VEGF和SMA-rtTA-VEGF小鼠模型,通过BrdU标记、流式细胞术和血管出芽实验检测内皮细胞增殖和血管扩张。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫染色 | 鸡抗GFP抗体 | Abcam | ab13970 |
| 大鼠抗CD31抗体 | BD Biosciences | 550274 | |
| 兔抗α-SMA抗体 | Sigma | SAB5500002 | |
| 兔抗PDGFRβ抗体 | eBioscience | 14-1402-82 | |
| Alexa488驴抗鸡二抗 | Jackson ImmunoResearch | 703-545-155 | |
| cy5驴抗兔二抗 | Jackson ImmunoResearch | 711-175-152 | |
| cy3驴抗大鼠二抗 | Jackson ImmunoResearch | 712-175-150 | |
| 脂质染色 | LipidTOX Red脂质染料 | Life Technologies | H34476 |
| SVP培养 | 纤连蛋白 | Sigma | F1141 |
| 转染 | Superfect转染试剂 | Qiagen | 301305 |
| 细胞处理 | 罗格列酮 | Cayman Chemicals | 71740 |
| PDGF-B | PeproTech | 315-18 | |
| SU16F | Tocris Bioscience | 3304 | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026 |
| cDNA合成 | RNA到cDNA高容量试剂盒 | Invitrogen | 4387406 |
| qPCR | Power SYBR Green PCR预混液 | -- | -- |
| 流式细胞术 | 大鼠抗CD31抗体 | BD Bioscience | 550274 |
| 兔抗α-平滑肌肌动蛋白抗体 | Sigma | SAB5500002 | |
| cleaved caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| 大鼠抗BrdU抗体 | Abcam | ab6326 | |
| cy5驴抗大鼠二抗 | Jackson ImmunoResearch | 711-605-152 | |
| cy3驴抗兔二抗 | Jackson ImmunoResearch | 711-605-150 | |
| 迁移实验 | Ibidi腔室培养板 | Ibidi | 80206 |
| 外植体实验 | 无生长因子Matrigel | BD Bioscience | 356231 |
| ChIP | pan-PPARγ抗体 | Cell Signaling | 2430 |
| pan-RXR抗体 | Santa Cruz | SC-774 | |
| 蛋白A/G琼脂糖珠 | Santa Cruz | SC-2003 | |
| 动物处理 | 他莫昔芬 | Sigma | T5648 |
| 向日葵油 | Sigma | S5007 | |
| 多西环素 | Cayman Chemicals | 14422 | |
| 伊马替尼 | Cayman Chemicals | 13139 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| PPARγ功能缺失和获得小鼠模型构建 | 小鼠基因型、Cre重组酶诱导方式、他莫昔芬剂量(50 mg/kg,连续2天) 阅读提示:Methods: Mice段落和Supplementary Fig. 2b,c |
| APC微环境定位分析 | 抗体稀释比例、SVP培养时间(12小时)、图像量化方法 阅读提示:Methods: Histology和SV and SVP fractionation段落;Figure 1图注 |
| 脂肪外植体血管出芽实验 | Matrigel包埋、培养时间(5天)、血管出芽量化标准 阅读提示:Methods: Adipose explant assay段落;Figure 2图注 |
| PDGFRβ和VEGF直接靶标验证 | 放线菌酮浓度(10 μg/ml,15分钟)、罗格列酮浓度(1 μM,4小时)、ChIP抗体用量 阅读提示:Methods: Cell culture treatments and qPCR和Chromatin immunoprecipitation assay段落;Figure 3和7图注 |
| 伊马替尼体内处理 | 给药剂量(50 μg/只)、给药途径(腹腔注射)、频率(每周4次)、持续时间(4周)、溶剂(5% DMSO) 阅读提示:Methods: Mice段落;Figure 6图注 |