PPARγ转录级联调控脂肪祖细胞-微环境相互作用及微环境扩张

A PPARγ transcriptional cascade directs adipose progenitor cell-niche interaction and niche expansion.

作者信息Yuwei Jiang, Daniel C Berry, Ayoung Jo, Wei Tang, Robert W Arpke, Michael Kyba, Jonathan M Graff
PMID28649987
发布时间2017-06-26
DOI10.1038/ncomms15926

实验完整度

高

结合多种基因敲除/过表达小鼠模型、体外细胞实验、组织外植体及药理学干预,进行功能与机制验证

主要模型

AdipoTrak(AT)小鼠脂肪祖细胞谱系追踪模型 SMA-CreERT2成年APC特异性基因敲除/过表达小鼠模型 FACS分选的AT-GFP+脂肪祖细胞 脂肪组织外植体及基质血管颗粒(SVP)

重点核对

PPARγ LOF和GOF小鼠模型中APC的微环境定位及血管密度 PDGFRβ作为PPARγ直接转录靶标的ChIP-qPCR和放线菌酮实验 VEGF作为PPARγ直接转录靶标的ChIP-qPCR和放线菌酮实验 PDGFRβ药理学抑制剂(SU16F、伊马替尼)对APC微环境相互作用的影响 AT-VEGF和SMA-rtTA-VEGF小鼠中VEGF过表达对血管扩张和APC滞留的影响

摘要

脂肪祖细胞(APCs)定位于脂肪组织血管周围的血管微环境中。然而,调控脂肪血管微环境形成及APC与微环境相互作用的信号和机制尚不清楚。在此,我们表明脂肪血管微环境的组装和维持受APCs内PPARγ的控制。PPARγ触发一个分子层级,诱导血管出芽、APC血管微环境亲和力及APC血管占据。机制上,PPARγ转录激活PDGFRβ和VEGF。APC表达和激活PDGFRβ促进APCs向微环境的募集和滞留。药理学上,靶向PDGFRβ破坏APC与微环境的接触,从而阻断脂肪组织扩张。此外,APC增强表达VEGF刺激内皮细胞增殖并扩张脂肪微环境。因此,VEGF促进APC与微环境的通讯和滞留,从而损害脂肪生成。我们的数据表明,APCs通过PPARγ启动的PDGFRβ和VEGF转录轴指导脂肪组织微环境扩张。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
脂肪祖细胞如何获得血管微环境居住权并维持在其中,以及PPARγ在此过程中的作用是什么?
核心机制
PPARγ在APCs中转录激活PDGFRβ和VEGF,PDGFRβ促进APC向微环境的募集和滞留,VEGF刺激内皮细胞增殖并扩张微环境,从而形成PPARγ-PDGFRβ/VEGF转录轴调控微环境扩张。
主要证据
通过PPARγ LOF和GOF小鼠模型、PDGFRβ LOF和CA小鼠模型、VEGF过表达小鼠模型,结合免疫染色、SVP培养、外植体血管出芽实验、ChIP-qPCR和药理学抑制实验,证明PPARγ通过PDGFRβ和VEGF调控APC微环境相互作用和微环境扩张。
研究意义
研究提示APCs通过PPARγ-PDGFRβ/VEGF网络调控自身微环境的扩张和维持,可能影响脂肪含量和全身代谢。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建PPARγ功能缺失和功能获得小鼠模型

探究PPARγ在脂肪祖细胞微环境定位和血管扩张中的作用。

利用Sox2-Cre和AdipoTrak-Cre构建PPARγ LOF小鼠,利用Tre-PPARγ构建GOF小鼠,并通过GFP标记追踪APC。

2

评估APC微环境定位和血管形态

验证PPARγ对APC血管微环境占据和血管密度的影响。

通过免疫染色检测GFP、CD31和SMA,量化APC与血管距离,并利用SVP培养评估APC定位。

3

检测血管出芽和APC占据

验证PPARγ对血管生成和APC微环境占据的影响。

将脂肪组织外植体包埋于Matrigel中,培养5天,量化血管出芽长度、分支点和GFP+ APC占据。

4

鉴定PDGFRβ为PPARγ直接靶基因

探究PPARγ调控PDGFRβ表达的分子机制。

对FACS分选的APC进行微阵列分析、qPCR、放线菌酮处理和ChIP-qPCR。

5

验证PDGFRβ在APC微环境相互作用中的功能

探究PDGFRβ对APC迁移、微环境占据和血管出芽的影响。

使用PDGF-B和SU16F处理APC和外植体,并通过PDGFRβ LOF和CA小鼠模型验证。

6

药理学靶向PDGFRβ在体内的效应

评估PDGFRβ抑制剂伊马替尼对APC微环境定位和脂肪扩张的影响。

给1月龄AT-GFP小鼠腹腔注射伊马替尼或溶剂对照4周,检测脂肪含量、APC定位和血管出芽。

7

鉴定VEGF为PPARγ直接靶基因

探究PPARγ调控VEGF表达的分子机制。

通过qPCR、放线菌酮处理和ChIP-qPCR验证VEGF是PPARγ直接转录靶标。

8

验证VEGF在微环境扩张中的作用

探究APC来源VEGF对血管生成和微环境扩张的影响。

构建AT-VEGF和SMA-rtTA-VEGF小鼠模型,通过BrdU标记、流式细胞术和血管出芽实验检测内皮细胞增殖和血管扩张。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
鸡抗GFP抗体Abcamab13970
大鼠抗CD31抗体BD Biosciences550274
兔抗α-SMA抗体SigmaSAB5500002
兔抗PDGFRβ抗体eBioscience14-1402-82
Alexa488驴抗鸡二抗Jackson ImmunoResearch703-545-155
cy5驴抗兔二抗Jackson ImmunoResearch711-175-152
cy3驴抗大鼠二抗Jackson ImmunoResearch712-175-150
LipidTOX Red脂质染料Life TechnologiesH34476
纤连蛋白SigmaF1141
Superfect转染试剂Qiagen301305
罗格列酮Cayman Chemicals71740
PDGF-BPeproTech315-18
SU16FTocris Bioscience3304
TRIzol试剂Invitrogen15596026
RNA到cDNA高容量试剂盒Invitrogen4387406
Power SYBR Green PCR预混液----
大鼠抗CD31抗体BD Bioscience550274
兔抗α-平滑肌肌动蛋白抗体SigmaSAB5500002
cleaved caspase-3抗体Cell Signaling Technology9661
大鼠抗BrdU抗体Abcamab6326
cy5驴抗大鼠二抗Jackson ImmunoResearch711-605-152
cy3驴抗兔二抗Jackson ImmunoResearch711-605-150
Ibidi腔室培养板Ibidi80206
无生长因子MatrigelBD Bioscience356231
pan-PPARγ抗体Cell Signaling2430
pan-RXR抗体Santa CruzSC-774
蛋白A/G琼脂糖珠Santa CruzSC-2003
他莫昔芬SigmaT5648
向日葵油SigmaS5007
多西环素Cayman Chemicals14422
伊马替尼Cayman Chemicals13139

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
PPARγ功能缺失和获得小鼠模型构建
小鼠基因型、Cre重组酶诱导方式、他莫昔芬剂量(50 mg/kg,连续2天)
阅读提示:Methods: Mice段落和Supplementary Fig. 2b,c
APC微环境定位分析
抗体稀释比例、SVP培养时间(12小时)、图像量化方法
阅读提示:Methods: Histology和SV and SVP fractionation段落;Figure 1图注
脂肪外植体血管出芽实验
Matrigel包埋、培养时间(5天)、血管出芽量化标准
阅读提示:Methods: Adipose explant assay段落;Figure 2图注
PDGFRβ和VEGF直接靶标验证
放线菌酮浓度(10 μg/ml,15分钟)、罗格列酮浓度(1 μM,4小时)、ChIP抗体用量
阅读提示:Methods: Cell culture treatments and qPCR和Chromatin immunoprecipitation assay段落;Figure 3和7图注
伊马替尼体内处理
给药剂量(50 μg/只)、给药途径(腹腔注射)、频率(每周4次)、持续时间(4周)、溶剂(5% DMSO)
阅读提示:Methods: Mice段落;Figure 6图注