DNA外切酶Trex1调控放疗诱导的肿瘤免疫原性

DNA exonuclease Trex1 regulates radiotherapy-induced tumour immunogenicity.

作者信息Claire Vanpouille-Box, Amandine Alard, Molykutty J Aryankalayil, Yasmeen Sarfraz, Julie M Diamond, Robert J Schneider, Giorgio Inghirami, C Norman Coleman, Silvia C Formenti, Sandra Demaria
PMID28598415
发布时间2017-06-09
DOI10.1038/ncomms15618

实验完整度

高

包含多种癌细胞系体外实验、双侧肿瘤小鼠模型体内验证,以及基因敲低/敲入机制验证

主要模型

小鼠乳腺癌TSA细胞系 小鼠结直肠癌MCA38细胞系 人乳腺癌MDA-MB-231细胞系 双侧TSA肿瘤BALB/c小鼠模型

重点核对

放疗剂量与分割方案:8Gy×3、8Gy×1、20Gy×1、30Gy×1 免疫检查点抑制剂:抗CTLA4单抗 clone 9H10(10 mg/kg)或抗PD-1单抗 clone RMP1-14(10 mg/kg) 基因敲低/敲入诱导:多西环素 4 μg/ml(体外)或 100 μg/ml(饮水,体内) CD8+ T细胞清除:抗CD8单抗 clone 2.43(5 mg/kg) 肿瘤排斥评估: irradiated和abscopal肿瘤生长及小鼠生存期

摘要

放疗因其增强免疫治疗应答的能力而正在被研究。然而,辐射诱导抗肿瘤T细胞的机制尚不清楚。我们发现,在不同癌细胞中,12–18 Gy以上的辐射剂量可诱导DNA外切酶Trex1,并通过降解辐射后胞质中积累的DNA来减弱其免疫原性。胞质DNA在DNA传感器cGAS及其下游效应分子STING激活后刺激癌细胞分泌干扰素-β。以不诱导Trex1的剂量重复照射可放大干扰素-β的产生,导致Batf3依赖性树突状细胞的招募和激活。在免疫检查点阻断的背景下,这一效应对启动介导系统性肿瘤排斥(远隔效应)的CD8+ T细胞至关重要。因此,Trex1是辐射驱动抗肿瘤免疫的上游调控因子。Trex1的诱导可能指导接受免疫治疗患者的放疗剂量和分割方案的选择。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
放疗诱导抗肿瘤T细胞并增强免疫治疗应答的机制是什么?辐射剂量和分割如何影响其免疫原性?
核心机制
辐射在高剂量(12–18 Gy以上)诱导DNA外切酶Trex1,Trex1降解胞质DNA,阻止cGAS-STING通路激活和IFN-β产生;而低于Trex1诱导阈值的重复照射使胞质DNA积累,激活cGAS-STING,促进IFN-β分泌,招募并激活Batf3依赖性树突状细胞,从而启动CD8+ T细胞介导的远隔效应。
主要证据
多种小鼠和人类癌细胞系体外实验显示Trex1表达呈剂量依赖性诱导并降解胞质dsDNA;双侧TSA和MCA38肿瘤小鼠模型中,Trex1过表达或cGAS/STING敲低废除远隔效应,而Trex1敲低恢复20 Gy联合抗CTLA4的远隔效应;Batf3−/−和IFNAR1−/−小鼠中远隔效应消失。
研究意义
Trex1是辐射驱动抗肿瘤免疫的上游调控因子,其诱导阈值可能指导接受免疫治疗患者的放疗剂量和分割选择;cGAS和STING表达及IFN-I通路功能可能作为预测放疗联合免疫检查点抑制剂反应的生物标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立双侧肿瘤模型并评估不同放疗方案的远隔效应

确定高剂量单次放疗与低剂量分割放疗联合抗CTLA4诱导远隔效应的差异

在BALB/c小鼠双侧接种TSA肿瘤,一侧照射,给予8Gy×1、8Gy×3、30Gy×1联合或不联合抗CTLA4,监测照射侧和远隔侧肿瘤生长;并用抗CD8抗体清除CD8+ T细胞

2

检测放疗后IFN-I通路激活和树突状细胞浸润

验证不同放疗方案对癌细胞固有IFN-I应答和肿瘤内DC招募的影响

对体内照射后的TSA肿瘤进行基因表达芯片分析;体外照射TSA、4T1、MCA38、MDA-MB-231细胞,检测Ifnb1表达和IFNβ分泌;流式细胞术分析肿瘤浸润CD8α+ DC及CD70表达;使用Batf3−/−和IFNAR1−/−小鼠验证DC和IFNβ应答的必要性

3

验证Trex1对胞质DNA和IFN-I应答的调控

确定Trex1是否通过降解胞质DNA抑制放疗诱导的IFN-I通路

检测不同放疗剂量下TSA细胞胞质dsDNA含量和Trex1表达;使用多西环素诱导的Trex1过表达(TSAKI Trex1)和shRNA敲低(TSAshTrex1)细胞,检测胞质dsDNA、Ifnb1、Mx1、Ifnar1表达及IFNβ分泌

4

验证cGAS-STING通路在放疗诱导IFN-I中的作用

确定cGAS和STING是否是放疗诱导癌细胞固有IFNβ产生所必需

在TSA、4T1、MCA38、MDA-MB-231细胞中用多西环素诱导shRNA敲低cGAS或STING,检测病毒或8Gy×3照射后IFNβ释放及Ifnb1、Mx1表达;体内使用TSAshcGAS或TSAshSTING肿瘤,结合8Gy×3+抗CTLA4,检测DC招募、CD8+ T细胞启动和远隔效应

5

验证Trex1对远隔效应的调控及剂量阈值

确定Trex1过表达或敲低是否影响放疗联合ICI的远隔效应,并确定不同癌细胞中Trex1诱导的剂量阈值

使用TSAKI Trex1或TSAshTrex1肿瘤,结合8Gy×3+抗CTLA4或抗PD-1,或20Gy×1/×2+抗CTLA4,评估照射侧和远隔侧肿瘤生长;在TSA、MCA38、4T1、MDA-MB-231、4175TR细胞中检测递增剂量(4-30 Gy)下Trex1表达和胞质dsDNA;在患者来源肺腺癌异种移植瘤(PDTX)中检测8Gy×1、8Gy×3和20Gy对Trex1、Ifnb1、Mx1表达的影响

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Life Technologies--
胎牛血清Life Technologies--
青霉素-链霉素----
L-谷氨酰胺----
LookOut支原体PCR检测试剂盒Sigma-Aldrich--
抗小鼠CTLA4单克隆抗体克隆9H10BioXCellBE0131
叙利亚仓鼠IgG同型对照BioXCellBE0087
抗CD8单克隆抗体克隆2.43BioXCellBE0061
抗PD-1单克隆抗体克隆RMP1-14BioXCellBE0146
多西环素----
嘌呤霉素----
重组人白介素-2Biological Resources Branch, National Cancer Institute--
RNeasy迷你试剂盒Qiagen--
miRNeasy迷你试剂盒QIAGEN217004
RT2预扩增cDNA合成试剂盒--330401
RT2 SYBR Green qPCR预混液----
定制PCR阵列--4391528
SuperScript VILO cDNA合成试剂盒ThermoFisher Scientific--
iTaq Universal SYBR Green预混液BioRad--
PrimePCR SYBR Green检测引物BioRad--
小鼠Procarta试剂盒Affymetrix—eBioscienceEPX01A-26044
人Procarta试剂盒Affymetrix—eBioscienceEPX01A-12088
可固定活力染料eFluor 780Affymetrix—eBioscience--
CD40-FITC抗体Affymetrix—eBioscience--
CD70-APC抗体Affymetrix—eBioscience--
CD8α-PE eFluor 610抗体Affymetrix—eBioscience--
CD45-Alexa Fluor 700抗体Affymetrix—eBioscience--
CD11c-eFluor 450抗体Affymetrix—eBioscience--
AH1A5肽GenScript--
pMCMV肽GenScript--
小鼠IFN-γ Procarta试剂盒Affymetrix—eBioscienceEPX011-20606
RIPA裂解液SigmaR0278-50 ml
蛋白酶抑制剂混合物Sigma11836153001
BCA蛋白定量试剂Thermo Scientific23227
PVDF膜MilliporeIPVH07850
小鼠抗STING抗体SigmaSAB1306152-40TST
人抗STING抗体SigmaSAB1103582-200UL
人/小鼠β-肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology4967
ECL抗兔IgG二抗SigmaGENA934-1 ml
化学发光检测试剂Perkin ElmerNEL103001EA
Precision Plus Protein双色标准品BioRad1610374
Alexa Fluor 488大鼠抗小鼠CD8α抗体ThermoFisher ScientificMCD0820
DAPI封片剂Vector LaboratoriesH-1500
抗dsDNA抗体Abcamab27156
Alexa Fluor 488预吸附山羊抗小鼠IgG H&LAbcamab150117
NE-PER核质分离试剂ThermoFisher Scientific78833
SpectraMax Quant AccuClear Nano dsDNA检测试剂盒Molecular devicesR8357
IVIS Lumina III活体成像系统Perkin Elmer--
小动物放射研究平台Xstrahl--
Applied Biosystems 7500实时PCR仪ThermoFisher--
Agilent小鼠基因表达4×44 v2微阵列Agilent Technologies026655
Agilent Bioanalyzer及RNA6000 Nano LabChipAgilent Technologies--
Agilent G2505B微阵列扫描仪Agilent Technologies--
Azure c600成像仪Azure Biosystems--
EVOS FL显微镜Life Technologies--
FlexStation 3多功能微孔板读板仪Molecular Devices--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型与肿瘤接种
小鼠品系(BALB/c、C57BL/6、Ifnar1−/−、Batf3−/−、NOG、NSG)、细胞接种数量(TSA 1×10^5,MCA38 5×10^5)、接种部位和时机(第0天右侧,第2天对侧)
阅读提示:Methods中Mice和Tumour challenge and treatment小节
放疗方案
放疗剂量和分割(8Gy×1、8Gy×3、20Gy×1、30Gy×1、20Gy×2)、照射时机(肿瘤平均60–80 mm3,第12天开始)、麻醉剂(avertin 240 mg/kg腹腔注射)
阅读提示:Methods中Tumour challenge and treatment小节及Figure legends
免疫检查点抑制剂给药
抗CTLA4(clone 9H10,10 mg/kg,第14、17、20天腹腔注射)或抗PD-1(clone RMP1-14,10 mg/kg,第12、15、19、22、26天腹腔注射),同型对照
阅读提示:Methods中Tumour challenge and treatment小节
基因敲低/敲入诱导
多西环素浓度(体外4 μg/ml,体内饮水100 μg/ml即20 mg/kg/day)、诱导时间(体外处理前4天,体内第8天开始每4天补充至第26天)
阅读提示:Methods中Cells and reagents及Tumour challenge and treatment小节
IFN-β分泌检测
检测时间(照射后24小时收集无细胞上清)、试剂盒(mouse procarta kit EPX01A-26044,human procarta kit EPX01A-12088)、归一化方式(按活细胞数)
阅读提示:Methods中Measurement of IFN-β secretion小节