WIPI3和WIPI4 β-螺旋桨是自噬控制中LKB1-AMPK-TSC信号环路的支架

WIPI3 and WIPI4 β-propellers are scaffolds for LKB1-AMPK-TSC signalling circuits in the control of autophagy.

作者信息Daniela Bakula, Amelie J Müller, Theresia Zuleger, Zsuzsanna Takacs, Mirita Franz-Wachtel, Ann-Katrin Thost, Daniel Brigger, Mario P Tschan, Tancred Frickey, Horst Robenek, Boris Macek, Tassula Proikas-Cezanne
PMID28561066
发布时间2017-05-31
DOI10.1038/ncomms15637

实验完整度

高

包含细胞系、小鼠胚胎成纤维细胞、蛋白互作组、激酶筛选、分子机制验证和功能验证等多层级证据

主要模型

U2OS骨肉瘤细胞系 G361黑色素瘤细胞系 ATG5野生型/敲除小鼠胚胎成纤维细胞

重点核对

WIPI1-4稳定敲低或敲除对自噬体形成的影响(电子显微镜及GFP-LC3斑点计数) WIPI4-ATG2A与AMPK-ULK1的相互作用在饥饿或AICAR处理下的变化 WIPI3与TSC复合物及FIP200的相互作用及溶酶体定位 LKB1/AMPK/NUAK2/BRSK2敲低对GFP-WIPI4斑点形成的影响 WIPI4 D113A突变体对葡萄糖饥饿和AMPK敲低的响应

摘要

自噬受AMPK和mTOR调控,二者均与ULK1结合并控制磷脂酰肌醇3-磷酸(PtdIns3P)的产生,这是自噬体形成的先决条件。本文报道WIPI3和WIPI4在PtdIns3P产生上游支架自噬信号控制,并在新生自噬体上参与WIPI1-WIPI2的PtdIns3P效应功能。响应LKB1介导的AMPK刺激,WIPI4-ATG2从WIPI4-ATG2/AMPK-ULK1复合物释放并转位至新生自噬体,控制其大小,WIPI3与FIP200复合物也对此有贡献。上游,WIPI3在溶酶体与AMPK激活的TSC复合物结合,调节mTOR。我们的WIPI相互作用组分析揭示了WIPI蛋白将自噬信号控制与自噬体形成相互连接的支架功能。我们的功能性激酶筛选发现了LKB1介导的AMPK刺激通过WIPI4产生直接信号的新型调控联系,并表明AMPK相关激酶NUAK2和BRSK2通过WIPI4调控自噬。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
WIPI3和WIPI4在自噬信号控制和自噬体形成中的功能及其与LKB1-AMPK-TSC信号网络的关系。
核心机制
LKB1-AMPK信号激活后,WIPI4-ATG2从AMPK-ULK1复合物释放并转位至新生自噬体控制其大小;WIPI3与AMPK激活的TSC复合物在溶酶体结合调节mTOR,并与FIP200协同作用。
主要证据
通过蛋白质相互作用组分析、激酶筛选、共免疫沉淀、荧光显微镜和电子显微镜等手段,在U2OS、G361细胞及MEFs中验证了WIPI3/WIPI4的支架功能及信号通路。
研究意义
揭示了WIPI蛋白作为支架环路将自噬信号控制与自噬体形成相互连接,为理解自噬调控提供了新框架。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

WIPI3/WIPI4的PtdIns3P结合及亚细胞定位

验证WIPI3和WIPI4是否结合PtdIns3P并定位于新生自噬体。

利用结构同源建模、磷脂-蛋白覆盖实验和共聚焦显微镜观察GFP-WIPI3/4在饥饿条件下的斑点形成及与自噬体标志物的共定位。

2

WIPI3和WIPI4敲低对自噬体形成的影响

确定WIPI3和WIPI4在自噬体形成中的功能。

在G361细胞中稳定敲低WIPI1-4,通过电子显微镜和GFP-LC3斑点分析评估自噬体结构。

3

WIPI蛋白相互作用组分析

鉴定WIPI3和WIPI4的相互作用蛋白,揭示其支架功能。

对稳定表达GFP-WIPI1-4的U2OS细胞进行抗GFP免疫沉淀,结合nano LC-MS/MS鉴定相互作用蛋白。

4

WIPI4-ATG2与AMPK-ULK1复合物的动态调控

验证WIPI4-ATG2与AMPK-ULK1的相互作用及AMPK激活后的解离。

共免疫沉淀检测GFP-WIPI4与myc-ATG2A、AMPK、ULK1的相互作用,并测试饥饿、AICAR处理或葡萄糖剥夺的影响。

5

LKB1-AMPK-NUAK2-BRSK2对WIPI4的调控

探究LKB1-AMPK及相关激酶对WIPI4斑点形成的影响。

通过siRNA敲低AMPKα、AMPKγ1、LKB1、NUAK2、BRSK2或CaMKKα,检测GFP-WIPI4斑点形成;并利用WIPI4 D113A突变体验证AMPK结合的重要性。

6

WIPI3与TSC复合物及FIP200的相互作用

验证WIPI3与TSC复合物和FIP200的相互作用及其在溶酶体的定位。

共免疫沉淀、溶酶体分离和共聚焦显微镜观察WIPI3与TSC1/2、FIP200、LAMP2的共定位。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM GlutaMAX培养基Life Technologies31966
胎牛血清PAAA15-043
青霉素/链霉素Life Technologies15140-122
G418硫酸盐Life Technologies11811-098
巴弗洛霉素A1AppliChemA7823
渥曼青霉素Sigma-AldrichW1628
雷帕霉素Sigma-AldrichR0395
LY294002Sigma-AldrichL9908
AICARSelleckchemS1802
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Invitrogen13778-075
Promofectine转染试剂PromokinePK-CT-2000-100
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668-019
DEAE-葡聚糖Sigma-AldrichD9885
聚偏二氟乙烯膜MilliporeIPVH00010
增强化学发光底物MilliporeWBKLS0500
SuperSignal West Femto最高灵敏度底物Thermo Scientific34095
蛋白A/G PLUS-琼脂糖珠Santa Cruzsc-2003
Image-iT FX信号增强剂Life TechnologiesI36933
ProLong Gold抗淬灭封片剂Life TechnologiesP36930
DAPI染料AppliChem28718-90-3
MISSION LentiExpress人类激酶文库Sigma-AldrichSHX001
14C-缬氨酸Hartmann AnalyticMC277
L-缬氨酸Sigma-Aldrich94619
磷脂膜EchelonP-6001
NUPAGE Novex Bis-Tris凝胶Invitrogen--
溶酶体分离试剂盒Sigma-AldrichLYSISO1
Quick change II定点突变试剂盒Stratagene--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与处理
细胞系来源(U2OS、G361、MEFs)、培养基(DMEM GlutaMAX+10%FCS)、饥饿处理时间(3小时)、药物浓度(bafilomycin A1 200 nM,LY294002 100 μM,AICAR 1 mM)
阅读提示:Methods: Cell culture, Autophagy assay
RNA干扰
siRNA浓度(25 nM或50 nM)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX)、敲低效率验证方法(免疫印迹和定量PCR)
阅读提示:Methods: RNA interference
免疫沉淀与质谱
裂解缓冲液成分(ACA buffer)、抗体用量、孵育时间、质谱数据过滤标准(肽段计数>2、至少两次实验等)
阅读提示:Methods: Immunopurifications, MS and analysis
荧光显微镜成像与分析
成像设备(共聚焦LSM、IN Cell Analyzer 1000)、图像分析软件(Volocity、ImageJ、IN Cell Analyzer Workstation)、斑点计数标准(至少300细胞/条件,三独立实验)
阅读提示:Methods: Low through-put fluorescence microscopy, Automated high through-put fluorescence microscopy
激酶筛选
慢病毒文库(MISSION LentiExpress Human Kinases)、感染时间(96小时)、筛选标准(减少<20%或增加>45%且至少两个shRNA)
阅读提示:Methods: Lentiviral-based shRNA screening