脑特异性Crmp2敲除小鼠的构建与验证
研究CRMP2在神经发育中的体内功能
通过靶向删除Crmp2外显子3构建条件性敲除小鼠,与Nestin-Cre小鼠杂交获得脑特异性cKO;通过qRT-PCR和Western blot验证Crmp2缺失;检查脑形态和皮层分层。
Brain-specific Crmp2 deletion leads to neuronal development deficits and behavioural impairments in mice.
包含脑特异性敲除小鼠、海马电生理、形态学、行为学及新生神经元敲低等多层级功能验证
Crmp2脑特异性敲除(cKO)小鼠 Crmp2 cKO×Thy1-GFPm双转基因小鼠 成年小鼠齿状回逆转录病毒介导的Crmp2敲低模型
cKO小鼠中Crmp2 mRNA和蛋白水平在海马等多个脑区的缺失确认 cKO小鼠海马CA1区TBS诱导的LTP振幅显著降低 cKO小鼠海马PSD组分中GluN1和GluN2B蛋白水平降低 cKO小鼠CA1锥体神经元树突总长度、分支复杂度和树突棘密度降低 新生颗粒细胞中Crmp2敲低导致2、4、6周后树突和树突棘发育阶段依赖性缺陷
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
研究CRMP2在神经发育中的体内功能
通过靶向删除Crmp2外显子3构建条件性敲除小鼠,与Nestin-Cre小鼠杂交获得脑特异性cKO;通过qRT-PCR和Western blot验证Crmp2缺失;检查脑形态和皮层分层。
确定Crmp2 cKO小鼠是否表现出行为障碍
进行旷场测试、笼内活动、前脉冲抑制、筑巢实验、三室社交互动和社交新颖性测试、Y迷宫、情境恐惧条件化和Morris水迷宫测试。
探究Crmp2缺失对海马Schaffer collateral-CA1突触可塑性的影响
在8周龄小鼠急性海马脑片上记录场电位,使用TBS诱导LTP,分析输入-输出曲线和配对脉冲比。
检测Crmp2缺失对突触后NMDA受体组成的影响
分离海马PSD组分,Western blot检测CRMP2、GluN1、GluN2B、PSD-95和SYP等蛋白水平。
验证Crmp2缺失是否导致树突和突触形态异常
将cKO与Thy1-GFPm小鼠杂交,共聚焦成像分析CA1锥体神经元树突总长度、分支复杂度(Sholl分析)和树突棘密度及类型;电子显微镜分析PSD厚度和突触间隙宽度。
研究CRMP2在成年齿状回新生神经元发育中的作用
将表达GFP和对照shRNA或Crmp2 shRNA的逆转录病毒立体定位注射到成年小鼠齿状回,在注射后2、4、6周分析新生颗粒细胞的树突和树突棘发育。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| Western blot | GluN1抗体(兔) | Epitomics | 2824-1 |
| GluN2A抗体 | Cell Signaling Technology | 4205 | |
| GluN2B抗体 | Cell Signaling Technology | 4212 | |
| GluA1抗体(兔) | Epitomics | 3861-1 | |
| GluA2抗体(兔) | Epitomics | 3520-1 | |
| CRMP2抗体(兔) | Cell Signaling Technology | 9393 | |
| 磷酸化CRMP2抗体(兔) | Epitomics | 5799-1 | |
| SYP抗体(小鼠) | Santa Cruz | Sc-17750 | |
| PSD-95抗体(兔) | Abcam | ab18258 | |
| Actin抗体(小鼠) | Cell Signaling Technology | 3700 | |
| GAPDH抗体(兔) | Cell Signaling Technology | 2118 | |
| Immunostaining | Ctip2抗体(大鼠) | Abcam | ab18465 |
| Satb2抗体(小鼠) | Abcam | a51502 | |
| Tbr1抗体(兔) | Abcam | ab31940 | |
| FoxP1抗体(兔) | Abcam | ab16645 | |
| CRMP2抗体(兔) | Cell Signaling Technology | 9393 | |
| NeuN抗体(小鼠) | Abcam | ab77315 | |
| GFP抗体(山羊) | Rockland & Abcam | ab290 | |
| 电子显微镜 | 醋酸铀 | -- | -- |
| Epon树脂 | -- | -- | |
| Leica超薄切片机 | Leica | -- | |
| 电子显微镜(JEOL;JEM 1400) | JEOL | JEM 1400 | |
| 行为学测试 | Med Associates惊跳反应系统 | Med Associates | -- |
| Panlab电击箱 | Panlab | -- | |
| SMART视频追踪系统 | -- | -- | |
| Avta Maze软件 | Anilab Software & Instruments | -- | |
| 共聚焦成像 | Zeiss LSM 700共聚焦显微镜 | Zeiss | LSM 700 |
| Zeiss LSM 510共聚焦显微镜 | Zeiss | LSM 510 | |
| 图像分析 | Image J | NIH | -- |
| Auto Quant X | Media Cybernetics | -- | |
| Imaris软件 | Bitplane | -- | |
| 逆转录病毒载体 | pSUbGW/pSUbRW载体 | -- | -- |
| pCUXIE载体 | -- | -- | |
| shRNA | 对照shRNA(shRNA-C1) | Qiagen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 行为学测试 | 小鼠年龄(8–10周龄,三室社交测试5–6周龄)、性别(雄性)、测试时间(光照期09:00–17:00)、实验者对基因型盲法 阅读提示:Methods中Behavioural tests小节 |
| 电生理记录 | 小鼠年龄(8周龄)、海马切片厚度(400 μm)、TBS诱导LTP协议、ACSF配方和灌注温度(30°C) 阅读提示:Methods中Field electrophysiological analysis of acute hippocampal slices小节 |
| 海马PSD组分分析 | 小鼠年龄(8周龄)、性别(雄性)、每泳道上样蛋白量(5 μg)、内参(β-actin)、独立实验次数(三次) 阅读提示:Methods中Biochemical analyses小节及Figure 3图注 |
| 形态学分析 | Thy1-GFPm标记、每只小鼠分析神经元数(5个)、共聚焦显微镜型号(Zeiss LSM 700)、物镜(20×和100×1.4 NA)、树突棘分类算法参数 阅读提示:Methods中Dendritic and spine analyses小节 |
| 成年海马神经发生敲低 | 小鼠品系(C57BL/6)、年龄(7–8周龄)、性别(雌性)、注射位点坐标、病毒注射体积和流速、分析时间点(2、4、6周) 阅读提示:Methods中In vivo genetic manipulation of neural progenitors小节 |
| 电子显微镜 | 固定条件(4% PFA后4%戊二醛)、切片厚度(65 nm)、观察电压(80 kV)、PSD厚度和突触间隙测量方法 阅读提示:Methods中Electron microscopy小节 |