脑特异性Crmp2缺失导致小鼠神经元发育缺陷和行为障碍

Brain-specific Crmp2 deletion leads to neuronal development deficits and behavioural impairments in mice.

作者信息Hongsheng Zhang, Eunchai Kang, Yaqing Wang, Chaojuan Yang, Hui Yu, Qin Wang, Zheyu Chen, Chen Zhang, Kimberly M Christian, Hongjun Song, Guo-Li Ming, Zhiheng Xu
PMID27249678
发布时间2016-06-07
DOI10.1038/ncomms11773

实验完整度

高

包含脑特异性敲除小鼠、海马电生理、形态学、行为学及新生神经元敲低等多层级功能验证

主要模型

Crmp2脑特异性敲除(cKO)小鼠 Crmp2 cKO×Thy1-GFPm双转基因小鼠 成年小鼠齿状回逆转录病毒介导的Crmp2敲低模型

重点核对

cKO小鼠中Crmp2 mRNA和蛋白水平在海马等多个脑区的缺失确认 cKO小鼠海马CA1区TBS诱导的LTP振幅显著降低 cKO小鼠海马PSD组分中GluN1和GluN2B蛋白水平降低 cKO小鼠CA1锥体神经元树突总长度、分支复杂度和树突棘密度降低 新生颗粒细胞中Crmp2敲低导致2、4、6周后树突和树突棘发育阶段依赖性缺陷

摘要

多项基因组和蛋白质组范围的研究已将CRMP2(塌陷反应介导蛋白2)的转录和翻译变化与精神疾病相关联,然而对其在发育中或成年哺乳动物大脑中的体内功能仍知之甚少。在此,我们显示脑特异性Crmp2敲除(cKO)小鼠表现出分子、细胞、结构和行为缺陷,其中许多与精神分裂症相关的神经特征和症状相似。cKO小鼠表现出脑室扩大以及社交行为、运动活动和学习记忆受损。海马中Crmp2的缺失导致长时程增强减弱、NMDA受体组成异常、树突发育异常以及CA1神经元突触形成缺陷。此外,仅在新生神经元中敲低crmp2会导致成年海马神经发生过程中其发育的阶段依赖性缺陷。我们的发现揭示了CRMP2在小鼠神经元可塑性、神经功能和行为调节中的关键作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CRMP2在发育中和成年哺乳动物大脑中的体内功能是什么?其缺失是否导致神经元发育缺陷和行为障碍?
核心机制
CRMP2通过维持海马PSD中NMDA受体亚基(GluN1和GluN2B)的正常组成,调控突触可塑性和神经元发育;其缺失导致LTP减弱及树突/树突棘发育异常。
主要证据
脑特异性Crmp2 cKO小鼠表现出脑室扩大、行为缺陷(社交、运动、学习记忆)、海马LTP减弱、PSD中NMDA受体亚基减少、CA1神经元树突和树突棘形态异常;新生神经元中Crmp2敲低导致阶段依赖性发育缺陷。
研究意义
揭示了CRMP2在神经元可塑性、神经功能和行为调节中的关键作用,为理解CRMP2基因变异如何贡献于精神分裂症的发育和行为表型提供了机制见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

脑特异性Crmp2敲除小鼠的构建与验证

研究CRMP2在神经发育中的体内功能

通过靶向删除Crmp2外显子3构建条件性敲除小鼠,与Nestin-Cre小鼠杂交获得脑特异性cKO;通过qRT-PCR和Western blot验证Crmp2缺失;检查脑形态和皮层分层。

2

行为学表型分析

确定Crmp2 cKO小鼠是否表现出行为障碍

进行旷场测试、笼内活动、前脉冲抑制、筑巢实验、三室社交互动和社交新颖性测试、Y迷宫、情境恐惧条件化和Morris水迷宫测试。

3

海马突触功能电生理分析

探究Crmp2缺失对海马Schaffer collateral-CA1突触可塑性的影响

在8周龄小鼠急性海马脑片上记录场电位,使用TBS诱导LTP,分析输入-输出曲线和配对脉冲比。

4

海马PSD组分和NMDA受体亚基分析

检测Crmp2缺失对突触后NMDA受体组成的影响

分离海马PSD组分,Western blot检测CRMP2、GluN1、GluN2B、PSD-95和SYP等蛋白水平。

5

海马CA1锥体神经元形态学分析

验证Crmp2缺失是否导致树突和突触形态异常

将cKO与Thy1-GFPm小鼠杂交,共聚焦成像分析CA1锥体神经元树突总长度、分支复杂度(Sholl分析)和树突棘密度及类型;电子显微镜分析PSD厚度和突触间隙宽度。

6

成年海马神经发生中Crmp2敲低

研究CRMP2在成年齿状回新生神经元发育中的作用

将表达GFP和对照shRNA或Crmp2 shRNA的逆转录病毒立体定位注射到成年小鼠齿状回,在注射后2、4、6周分析新生颗粒细胞的树突和树突棘发育。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
GluN1抗体(兔)Epitomics2824-1
GluN2A抗体Cell Signaling Technology4205
GluN2B抗体Cell Signaling Technology4212
GluA1抗体(兔)Epitomics3861-1
GluA2抗体(兔)Epitomics3520-1
CRMP2抗体(兔)Cell Signaling Technology9393
磷酸化CRMP2抗体(兔)Epitomics5799-1
SYP抗体(小鼠)Santa CruzSc-17750
PSD-95抗体(兔)Abcamab18258
Actin抗体(小鼠)Cell Signaling Technology3700
GAPDH抗体(兔)Cell Signaling Technology2118
Ctip2抗体(大鼠)Abcamab18465
Satb2抗体(小鼠)Abcama51502
Tbr1抗体(兔)Abcamab31940
FoxP1抗体(兔)Abcamab16645
CRMP2抗体(兔)Cell Signaling Technology9393
NeuN抗体(小鼠)Abcamab77315
GFP抗体(山羊)Rockland & Abcamab290
醋酸铀----
Epon树脂----
Leica超薄切片机Leica--
电子显微镜(JEOL;JEM 1400)JEOLJEM 1400
Med Associates惊跳反应系统Med Associates--
Panlab电击箱Panlab--
SMART视频追踪系统----
Avta Maze软件Anilab Software & Instruments--
Zeiss LSM 700共聚焦显微镜ZeissLSM 700
Zeiss LSM 510共聚焦显微镜ZeissLSM 510
Image JNIH--
Auto Quant XMedia Cybernetics--
Imaris软件Bitplane--
pSUbGW/pSUbRW载体----
pCUXIE载体----
对照shRNA(shRNA-C1)Qiagen--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
行为学测试
小鼠年龄(8–10周龄,三室社交测试5–6周龄)、性别(雄性)、测试时间(光照期09:00–17:00)、实验者对基因型盲法
阅读提示:Methods中Behavioural tests小节
电生理记录
小鼠年龄(8周龄)、海马切片厚度(400 μm)、TBS诱导LTP协议、ACSF配方和灌注温度(30°C)
阅读提示:Methods中Field electrophysiological analysis of acute hippocampal slices小节
海马PSD组分分析
小鼠年龄(8周龄)、性别(雄性)、每泳道上样蛋白量(5 μg)、内参(β-actin)、独立实验次数(三次)
阅读提示:Methods中Biochemical analyses小节及Figure 3图注
形态学分析
Thy1-GFPm标记、每只小鼠分析神经元数(5个)、共聚焦显微镜型号(Zeiss LSM 700)、物镜(20×和100×1.4 NA)、树突棘分类算法参数
阅读提示:Methods中Dendritic and spine analyses小节
成年海马神经发生敲低
小鼠品系(C57BL/6)、年龄(7–8周龄)、性别(雌性)、注射位点坐标、病毒注射体积和流速、分析时间点(2、4、6周)
阅读提示:Methods中In vivo genetic manipulation of neural progenitors小节
电子显微镜
固定条件(4% PFA后4%戊二醛)、切片厚度(65 nm)、观察电压(80 kV)、PSD厚度和突触间隙测量方法
阅读提示:Methods中Electron microscopy小节