DYNC2LI1突变破坏纤毛功能并导致短肋多指综合征

Mutations in DYNC2LI1 disrupt cilia function and cause short rib polydactyly syndrome.

作者信息S Paige Taylor, Tiago J Dantas, Ivan Duran, Sulin Wu, Ralph S Lachman, University of Washington Center for Mendelian Genomics Consortium, Stanley F Nelson, Daniel H Cohn, Richard B Vallee, Deborah Krakow
PMID26077881
发布时间2015-06-16
DOI10.1038/ncomms8092

实验完整度

高

含患者成纤维细胞、RNAi敲低、回补实验及人软骨生长板免疫组化等多层验证

主要模型

SRPS患者原代成纤维细胞 hTERT-RPE1-GFP-CSAP细胞 14周人胎儿肱骨软骨生长板组织

重点核对

三个家系患者及其父母的外显子组测序与Sanger验证 患者成纤维细胞中DYNC2LI1及DYNC2H1蛋白水平Western blot检测 血清饥饿48小时诱导纤毛后纤毛长度与纤毛化比例定量 SAG(500 nM,24–48小时)刺激后SMO定位与GLI3加工检测 野生型DYNC2LI1回补对纤毛长度和IFT88积累的 rescue 实验

摘要

短肋多指综合征(SRPS)是一组异质性常染色体隐性、围产期致死性骨骼疾病,主要特征为短而水平的肋骨、短肢和多指。影响纤毛内运输(IFT)的多个基因突变导致SRPS,但并不能解释所有病例。在此,我们鉴定出额外的SRPS基因并进一步阐明IFT的功能基础。我们进行全外显子组测序,鉴定出一个新的致病基因——细胞质动力蛋白-2轻中间链1(DYNC2LI1),其突变在三个家系中与疾病共分离。利用原代成纤维细胞,我们证明DYNC2LI1对动力蛋白-2复合物稳定性至关重要,且DYNC2LI1突变导致纤毛长度可变(包括超长纤毛)、Hedgehog通路受损以及纤毛IFT积累。本研究结果扩展了我们对SRPS位点异质性的理解,并证明DYNC2LI1在动力蛋白-2复合物稳定性、纤毛功能、Hedgehog调控和骨骼形成中的重要性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SRPS的额外致病基因是什么,以及IFT功能缺陷如何导致该病?
核心机制
DYNC2LI1突变降低动力蛋白-2复合物稳定性,导致DYNC2H1近乎完全丢失,进而损害逆行IFT、纤毛长度调控和Hedgehog信号(SMO异常进入纤毛、GLI3加工受损)。
主要证据
三个家系全外显子组测序发现DYNC2LI1复合杂合突变;患者成纤维细胞显示DYNC2LI1和DYNC2H1蛋白减少、纤毛长度变异增大、IFT88在纤毛内积累、SMO在无刺激时进入纤毛、GLI3FL/GLI3R比值升高;野生型DYNC2LI1回补纠正纤毛长度和IFT88积累。
研究意义
扩展了SRPS的位点异质性,证明DYNC2LI1在动力蛋白-2复合物稳定性、纤毛功能、Hedgehog调控和骨骼形成中的重要性。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

全外显子组测序鉴定DYNC2LI1突变

寻找导致SRPS的新致病基因

对三个无关SRPS家系进行全外显子组测序,过滤变异后优先关注复合杂合突变,并用Sanger测序验证。

2

验证突变对剪接和蛋白稳定性的影响

确定DYNC2LI1突变是否影响mRNA剪接和蛋白表达

从患者成纤维细胞提取RNA进行RT-PCR分析外显子12剪接,并用Western blot检测DYNC2LI1蛋白水平。

3

检测动力蛋白-2复合物组分的蛋白稳定性

确定DYNC2LI1减少是否影响DYNC2H1和WDR34蛋白水平及定位

Western blot检测患者成纤维细胞中DYNC2H1、WDR34和DYNC1H1蛋白量,免疫荧光检测WDR34和DYNC2H1在基体的定位。

4

分析DYNC2LI1在胎儿组织及软骨生长板的表达

确定DYNC2LI1在骨骼发育相关组织中的表达模式

对16周胎儿多种组织进行qRT-PCR,并对14周人胎儿肱骨切片进行免疫组化检测DYNC2LI1、DYNC2H1和WDR34。

5

评估DYNC2LI1突变对纤毛发生和纤毛长度的影响

确定DYNC2LI1突变是否影响纤毛形成和长度调控

血清饥饿诱导患者成纤维细胞纤毛发生,免疫荧光染色ARL13B和GluTUB,定量纤毛化比例和纤毛长度;在hTERT-RPE1细胞中进行RNAi敲低DYNC2LI1,并在患者细胞中回补野生型DYNC2LI1。

6

检测逆行IFT功能

确定DYNC2LI1突变是否损害逆行IFT导致IFT组分在纤毛内积累

免疫荧光检测IFT88、TRAF3IP1和KIF3A在患者成纤维细胞纤毛中的定位,定量IFT88在纤毛体与近端比值;RNAi敲低和野生型回补验证。

7

评估Hedgehog信号通路

确定DYNC2LI1突变是否影响Hedgehog信号转导

用SAG刺激患者成纤维细胞,免疫荧光检测SMO和GLI3定位,Western blot检测GLI3FL/GLI3R比值,qRT-PCR检测PTCH1和GLI1转录。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证纤毛形态和IFT
验证组织表达
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
NimbleGen SeqCap EZ外显子文库v2.0NimbleGen--
Illumina GAIIx测序平台Illumina--
TRIZOL试剂Invitrogen15596
SuperScript III一步法试剂盒Invitrogen12574-018
SYBR green PCR预混液Thermo ScientificK0222
Stratagene MX3005P实时PCR检测系统StratageneMX3005P
SAGCalbiochem566660
兔抗WDR34抗体Abcamab81030
兔抗ARL13B抗体Proteintech17711-1-AP
兔抗IFT88抗体Proteintech13967-1-AP
兔抗KIF3A抗体Sigma-AldrichK3513
兔抗TRAF3IP1抗体PiercePA5-30507
小鼠抗乙酰化β-微管蛋白抗体Sigma-AldrichT6793
兔抗乙酰化β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology#5335
小鼠抗多聚谷氨酰化微管蛋白抗体AdipogenGT335
山羊抗GLI3抗体R&D SystemsAF3690
兔抗WDR34抗体SigmaHPA041091
Histostain Plus试剂盒Invitrogen85-9243
兔抗GAPDH抗体Cell Signaling Technology#2118
小鼠抗β-微管蛋白抗体Abcamab11316
小鼠抗β-微管蛋白抗体SigmaT9026
siGENOME人DYNC2LI1 siRNA smartpoolDharmacon51626
Hiperfect转染试剂Qiagen--
Amaxa原代哺乳动物成纤维细胞转染试剂盒Amaxa--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者成纤维细胞培养与纤毛诱导
血清饥饿时间48小时;无血清或0.5% FBS;细胞系来源与代数
阅读提示:Methods的Cell culture小节
SAG刺激与Hedgehog信号检测
SAG浓度500 nM;处理时间24–48小时;检测终点(SMO定位、GLI3加工、PTCH1/GLI1转录)
阅读提示:Methods的Cell culture和Quantitative RT-PCR小节,图7图注
免疫荧光纤毛长度与IFT定量
抗体稀释比例;纤毛长度测量方法;IFT88信号比值算法;样本量n>20或n=150×3次独立实验
阅读提示:Methods的Immunofluorescence小节,图5、图6图注
RNAi敲低与回补实验
siRNA靶序列;转染试剂Hiperfect;敲低后48小时再血清饥饿48小时;回补质粒pCAGIG-IRES-GFP及转染后24小时血清饥饿48小时
阅读提示:Methods的RNAi和Rescue experiments小节
外显子组测序与变异过滤
测序平台Illumina GAIIx;捕获文库NimbleGen SeqCap EZ Exome v2.0;平均覆盖度(103X、61X、56X);过滤数据库列表
阅读提示:Methods的Exome sequencing和Filtering Strategy小节