AMPK激活促进脂滴在去酪氨酸化微管上分散以增加线粒体脂肪酸氧化

AMPK activation promotes lipid droplet dispersion on detyrosinated microtubules to increase mitochondrial fatty acid oxidation.

作者信息Albert Herms, Marta Bosch, Babu J N Reddy, Nicole L Schieber, Alba Fajardo, Celia Rupérez, Andrea Fernández-Vidal, Charles Ferguson, Carles Rentero, Francesc Tebar, Carlos Enrich, Robert G Parton, Steven P Gross, Albert Pol
PMID26013497
发布时间2015-05-27
DOI10.1038/ncomms8176

实验完整度

高

多细胞模型体外实验,结合活细胞成像、电镜、流式、生化及siRNA/基因敲除功能验证

主要模型

Vero细胞(非洲绿猴肾成纤维细胞) 小鼠胚胎成纤维细胞(MEF,野生型及AMPKα敲除) COS-1细胞 C2C12成肌细胞

重点核对

Vero细胞以175 µg/ml油酸负载24小时形成脂滴,之后在含/不含葡萄糖培养基中卸载16小时 AMPKα敲除MEF与野生型MEF分别以200和400 µg/ml油酸负载以匹配脂滴水平,再无糖卸载16小时 使用15 µM Nocodazole解聚微管,或15 µM Parthenolide抑制去酪氨酸化,处理16小时或短时4小时 使用100 µM Etomoxir抑制脂肪酸氧化,500 µM DEUP抑制脂解,检测β-氧化和脂滴消耗

摘要

脂滴(LDs)是细胞内细胞器,为包括膜合成和代谢能量产生在内的细胞过程提供脂肪酸(FAs)。虽然已知LDs沿微管(MTs)双向移动,但LD运动的作用以及它是否促进与其他细胞器的相互作用尚不清楚。在此,我们表明在营养饥饿期间,LDs和线粒体在去酪氨酸化-MT上从细胞中心重新定位,以呈现分散分布。在细胞外周,LD-线粒体相互作用增加,LDs有效地为线粒体β-氧化提供FAs。这种细胞适应需要能量传感器AMPK的激活,AMPK响应饥饿同时增加LD运动、重组去酪氨酸化-MTs网络并激活线粒体。总之,我们描述了一个专门的细胞网络的存在,该网络连接细胞能量状态和MT动力学,以在营养缺乏期间协调LDs和线粒体的功能。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
细胞能量状态如何控制脂滴中脂肪酸的不同代谢去向,以及脂滴位置如何贡献于这些功能。
核心机制
饥饿激活AMPK,AMPK促进去酪氨酸化微管网络重组,增加脂滴运动性和分散,使脂滴与线粒体接触增加,从而提高脂肪酸β-氧化;同时AMPK抑制ACC促进脂肪酸进入线粒体。
主要证据
在Vero、MEF、COS-1和C2C12细胞中,通过活细胞成像、电子显微镜、流式细胞术、薄层色谱和放射性β-氧化测定,发现饥饿诱导脂滴分散和脂滴-线粒体接触增加,且该过程依赖微管和去酪氨酸化,并被AMPK激活剂增强、被AMPK抑制剂或敲除抑制。
研究意义
揭示了AMPK通过重组微管细胞骨架促进脂滴与线粒体动态串扰的互补机制,为理解细胞能量代谢适应及相关疾病中脂滴积累异常提供了新视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立脂滴负载与卸载模型

在 glycolytic 和 oxidative 条件下追踪脂滴中脂肪酸的代谢去向。

Vero细胞以油酸负载24小时形成脂滴,随后在含或不含葡萄糖的培养基中卸载16小时,检测乳酸产生、氧消耗、线粒体膜电位、脂滴含量及放射性脂肪酸去向。

2

检测脂滴分散与运动

分析营养剥夺对脂滴细胞内分布和运动性的影响。

活细胞共聚焦显微镜观察脂滴分布,视频显微镜记录1分钟内脂滴运动,使用Nocodazole处理检验微管依赖性。

3

评估脂滴-线粒体接触及功能

验证脂滴分散是否增加与线粒体的接触并促进脂肪酸氧化。

共聚焦显微镜和电子显微镜观察脂滴-线粒体接触,流式细胞术检测脂滴含量,放射性CO2产生测定β-氧化。

4

验证去酪氨酸化微管的作用

检验去酪氨酸化微管在脂滴分散和β-氧化中的必要性。

免疫荧光和Western blot检测去酪氨酸化微管水平,使用Parthenolide抑制TCP,转染GFP-TTL降低去酪氨酸化,分析脂滴分散和β-氧化。

5

验证AMPK的调控作用

确定AMPK激活对脂滴分散、运动性和消耗的影响。

使用AMPK激活剂AICAR和Metformin处理负载细胞,使用抑制剂Compound C处理卸载细胞,比较野生型与AMPKα敲除MEF的脂滴分散和消耗。

6

分析AMPK与微管去酪氨酸化的连接

检验AMPK是否通过去酪氨酸化微管促进脂滴分散。

AICAR或Metformin处理负载细胞,检测去酪氨酸化微管水平和分布;Parthenolide与AICAR共处理,分析脂滴分散。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
二乙基伞形酮磷酸酯Sigma-Aldrich--
乙莫克舍Sigma-Aldrich--
2-脱氧葡萄糖Sigma-Aldrich--
化合物CSigma-Aldrich--
氨基咪唑-4-甲酰胺核糖核苷酸Sigma-Aldrich--
小白菊内酯Sigma-Aldrich--
巴弗洛霉素A1Sigma-Aldrich--
5-(十四烷氧基)-2-呋喃甲酸Santa Cruz Biotechnology--
诺考达唑Calbiochem--
尼罗红Molecular Probes--
Hoechst-33258Molecular Probes--
深红线粒体追踪剂Molecular Probes--
胰蛋白酶/EDTALife Technologies--
杜尔贝科改良 Eagle 培养基Biological Industries--
胎牛血清Biological Industries--
L-谷氨酰胺Sigma-Aldrich--
青霉素Biological Industries--
链霉素Biological Industries--
非必需氨基酸Biological Industries--
油酸Sigma-Aldrich--
无脂肪酸牛血清白蛋白Sigma--
14C-油酸PerkinElmerNEC-317
Lipofectamine RNAiMAX试剂Invitrogen--
Lipofectamine LTXLife Technologies--
寡霉素Sigma--
FCCPSigma--
四甲基罗丹明Molecular Probes--
膜联蛋白V-APCBD Pharmigen550474
碘化丙啶Sigma-Aldrich--
抗α-微管蛋白抗体SigmaT9026
抗去酪氨酸化微管蛋白抗体MilliporeAb3201
抗ACSL3抗体AbnovaB01P
抗ATP合酶抗体BD Transduction Laboratories611450
抗LC3B抗体Cell Signaling2775
抗磷酸化ACC抗体Cell Signaling3661
抗AMPKα亚基抗体Cell Signaling23A3
抗磷酸化AMPK抗体Cell Signaling40H9
抗TTL抗体Protein Tech14067-1-AP
抗TCP抗体Protein Tech13778-075
抗肌动蛋白抗体Abcamab40864
抗乙酰化α-微管蛋白抗体Abcamab24610

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
脂滴负载与卸载
油酸浓度175 µg/ml,负载24小时;卸载时间16小时,培养基含或不含葡萄糖
阅读提示:Methods: Reagents, Cell culture and treatments
AMPK敲除MEF脂滴负载匹配
野生型MEF负载400 µg/ml油酸,AMPKα敲除MEF负载200 µg/ml油酸,24小时
阅读提示:Results: AMPK activation promotes LD dispersion and consumption; Figure 5h,i
微管解聚与去酪氨酸化抑制
Nocodazole 15 µM处理16小时或4小时;Parthenolide 15 µM或25 µM处理16小时或8小时
阅读提示:Results: Nutrient deprivation promotes LD dispersion; A subset of MTs contributes to LD dispersion; Figure 2g,h; Figure 3
脂肪酸氧化与脂解抑制
Etomoxir 100 µM,DEUP 500 µM,处理16小时
阅读提示:Results: LDs channel FAs to different metabolic fates; Figure 1g,h
β-氧化测定
14C-油酸标记12小时(70.62 µg/ml),再175 µg/ml油酸12小时;卸载16小时,捕获14C-CO2
阅读提示:Methods: FA beta-oxidation assay