构建SC特异性Lkb1敲除小鼠并验证
验证Lkb1在施万细胞中的特异性缺失及其对小鼠外周神经功能的影响。
将Lkb1lox/lox或lox/−小鼠与Cnp-Cre敲入小鼠交配,产生髓鞘形成胶质细胞特异性Lkb1敲除小鼠;通过GFP报告基因、Western blot和免疫荧光验证Cre表达及Lkb1缺失;观察小鼠生长、行为、神经传导和肌肉形态。
The tumour suppressor LKB1 regulates myelination through mitochondrial metabolism.
包含条件敲除小鼠模型、体外SC分化与髓鞘共培养、线粒体功能与脂质组学等多层级证据及功能挽救验证。
髓鞘形成胶质细胞特异性Lkb1敲除小鼠 小鼠坐骨神经组织 原代施万细胞与DRG神经元共培养
Lkb1条件敲除小鼠基因型:Lkb1lox/lox;Cnp-Cre+或Lkb1lox/−;Cnp-Cre+ 坐骨神经电镜G-ratio分析:每组至少3-4只动物,每阶段分析超过100根轴突 Seahorse XF分析仪测定P6坐骨神经氧消耗率:每组2-4只动物 体外SC分化:1 mM二丁酰cAMP处理3-5天 SC-DRG共培养髓鞘化:50 μg/ml抗坏血酸诱导2周
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证Lkb1在施万细胞中的特异性缺失及其对小鼠外周神经功能的影响。
将Lkb1lox/lox或lox/−小鼠与Cnp-Cre敲入小鼠交配,产生髓鞘形成胶质细胞特异性Lkb1敲除小鼠;通过GFP报告基因、Western blot和免疫荧光验证Cre表达及Lkb1缺失;观察小鼠生长、行为、神经传导和肌肉形态。
确定Lkb1缺失是否导致外周神经系统髓鞘形成不足。
对P30、P90、P150小鼠坐骨神经进行甲苯胺蓝染色和电镜分析,计算G-ratio,观察Remak束结构;通过SCIP免疫组化和Ki67染色评估SC数量和增殖;cleaved caspase-3染色评估凋亡。
验证Lkb1缺失是否损害外周神经的线粒体氧化代谢。
qRT-PCR检测线粒体转录因子、OXPHOS转录本;Western blot检测OXPHOS蛋白;电镜观察线粒体数量;Seahorse XF分析仪测定P6坐骨神经氧消耗率。
明确Lkb1缺失是否细胞自主性影响SC分化过程中的代谢转变。
原代SC培养,通过撤血清和添加1 mM二丁酰cAMP诱导分化3-5天;检测形态、分化标志物、OXPHOS蛋白、线粒体膜电位(TMRM)和氧消耗率(Seahorse XF)。
验证Lkb1突变SC在体外是否能否髓鞘化DRG轴突。
E13.5 DRG来源的SC-DRG共培养,加入抗坏血酸诱导髓鞘化2周,MBP免疫荧光检测髓鞘形成。
检测Lkb1突变坐骨神经髓鞘脂质变化,并验证恢复CS活性或柠檬酸能否挽救SC缺陷。
对P10坐骨神经进行靶向质谱脂质组学分析;在Lkb1突变SC中过表达CS或添加甲基柠檬酸,检测GalC/O4表达和髓鞘化;测定CS活性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| qRT-PCR | Qiagen RNeasy迷你试剂盒 | Qiagen | -- |
| ABI高容量cDNA试剂盒 | ABI, Life Technologies | -- | |
| ABI SYBR green PCR预混液 | ABI, Life Technologies | -- | |
| Western blot | BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo Science | PI23235 |
| 辣根过氧化物酶化学发光试剂 | Millipore | WBKLS0100 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | #4790 | |
| LKB1抗体 | Cell Signaling Technology | #3047 | |
| α-微管蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | #3873 | |
| MBP抗体 | Covance | SMI99 | |
| P0抗体 | -- | PZO0308 | |
| PLP抗体 | Aves Labs | PLP | |
| OXPHOS抗体混合物 | Life Technologies | 458099 | |
| PGC1α抗体 | Abcam | #AB54481 | |
| SOX10抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-17342 | |
| PMP22抗体 | Sigma | P0081 | |
| 免疫荧光 | LKB1克隆5c10抗体 | Upstate Biotechnology, now EMD Millipore | 05-832 |
| 活化caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| Cre抗体 | Novagen, now EMD Millipore | 69050 | |
| SCIP抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-11661 | |
| Ki67抗体 | Vector Laboratories | VP-K452 | |
| 神经丝抗体 | Sigma | 2837 | |
| NeuN抗体 | Chemicon, now Millipore | MAB377 | |
| S100β抗体 | Dako | ZO311 | |
| O4克隆81抗体 | EMD Millipore | MAB345 | |
| Gal-C抗体 | EMD Millipore | MAB342 | |
| 细胞培养 | 多聚-L-赖氨酸 | R&D | -- |
| 层粘连蛋白 | Life Technologies | -- | |
| 神经基础培养基 | Life Technologies | -- | |
| B27添加剂 | Life Technologies | 50X | |
| 神经生长因子 | Harlan | -- | |
| 马血清 | Life Technologies | -- | |
| 谷氨酰胺 | Life Technologies | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Thermo Scientific | -- | |
| 胶原酶 | -- | -- | |
| 胰蛋白酶 | -- | -- | |
| DMEM培养基 | Thermo Scientific | -- | |
| 原代血清 | Gemcell US origin fetal bovine serum, Gemini | -- | |
| 阿糖胞苷 | Sigma | -- | |
| Thy1.2抗体 | Becton Dickenson | -- | |
| HRG1-β1 EGF结构域 | R&D | -- | |
| 佛司可林 | Sigma | -- | |
| 牛垂体提取物 | Life Technologies | -- | |
| SC分化 | 二丁酰腺苷3′:5′环磷酸 | Sigma | -- |
| 挽救实验 | 三钠(2RS,3RS)-2-甲基柠檬酸 | Sigma | -- |
| 质粒构建 | pBABE-puro空载体 | Addgene | -- |
| GC10感受态细胞 | Sigma | -- | |
| QIAGEN Hi Speed质粒中量制备试剂盒 | Qiagen | -- | |
| 转染 | Polyplus jetPRIME转染试剂 | Polyplus Transfection | -- |
| shRNA敲低 | Sigma GenElute HP质粒中量制备试剂盒 | Sigma | -- |
| 细胞增殖检测 | CellTiter-Fluor检测试剂盒 | Promega | -- |
| 氧消耗测定 | 鸡血浆 | Cocalico Biologicals | -- |
| 牛血浆凝血酶 | Sigma | -- | |
| XF24胰岛捕获板 | Seahorse Biosciences | -- | |
| 寡霉素 | -- | -- | |
| FCCP | -- | -- | |
| 抗霉素 | -- | -- | |
| 代谢物测定 | 乳酸测定试剂盒 | Biovision | -- |
| 柠檬酸测定试剂盒 | Biovision | -- | |
| CS活性测定试剂盒 | Biovision | -- | |
| 葡萄糖测定 | Accu-Chek Aviva血糖仪 | Roche Diagnostics | -- |
| 线粒体膜电位检测 | 三甲基罗丹明甲酯 | -- | -- |
| 脂质组学 | [2H7]胆固醇 | -- | -- |
| C12-葡萄糖神经酰胺 | -- | -- | |
| C12-半乳糖神经酰胺 | -- | -- | |
| D31-磷脂酰胆碱 | -- | -- | |
| C12-硫苷脂 | -- | -- | |
| C17-神经酰胺 | -- | -- | |
| 电镜 | LX-112包埋剂 | Ladd Research Industries | -- |
| 醋酸铀 | EMS | -- | |
| 柠檬酸铅 | -- | -- | |
| 超薄切片机 | Leica | EM UC7 | |
| 透射电子显微镜 | Hitachi | H-7650 | |
| 电生理 | S88X刺激器 | Grass technologies | SIU-C |
| 前置放大器 | Astro-Med | P55 | |
| 数字化仪 | Molecular Devices | Digidata 1440A | |
| CMAP记录 | 聚酯涂层钢丝记录电极 | California Fine Wire | -- |
| Micro 1401数据采集单元 | Cambridge Electronic Design | -- | |
| 氧消耗测定 | XF24分析仪 | Seahorse Bioscience | -- |
| 脂质组学 | Waters Quattro Micro API三重四极杆质谱仪 | Waters | -- |
| Acquity超高效液相色谱系统 | Waters | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Lkb1条件敲除小鼠构建 | 小鼠品系背景:混合C57BL/6和FVB背景;基因型:实验组Lkb1lox/lox;Cnp-Cre+或Lkb1lox/−;Cnp-Cre+,对照组Lkb1lox/+;Cnp-Cre+、Lkb1lox/lox;Cnp-Cre−或Lkb1lox/−;Cnp-Cre− 阅读提示:Methods 'Generation of Lkb1-conditional knockout mice'小节 |
| 坐骨神经电镜与G-ratio分析 | 动物年龄:P30、P90、P150;每组动物数:3-4只;每阶段分析轴突数:超过100根;G-ratio计算方式 阅读提示:Methods 'Electron microscopy'小节及Figure 2图注 |
| Seahorse XF测定坐骨神经氧消耗 | 小鼠年龄:P6;坐骨神经长度:约3 mm;药物浓度:oligomycin 12.6 μM、FCCP 20 μM、antimycin 20 μM;每组动物数:2-4只 阅读提示:Methods 'Oxygen consumption rate of sciatic nerves'小节 |
| 体外SC分化 | 分化诱导:无血清DMEM 12 h后加1 mM二丁酰cAMP处理3-5天;分化标志物检测时间点 阅读提示:Methods 'Cell culture'小节 |
| SC-DRG共培养髓鞘化 | DRG来源:E13.5胚胎;髓鞘化诱导:共培养2周后加5%马血清、50 μg/ml抗坏血酸、0.5 μM forskolin,持续2周;换液频率:每3天半量换液 阅读提示:Methods 'In vitro myelination'小节 |
| 脂质组学分析 | 小鼠年龄:P10;样本量:6对对照和3对突变坐骨神经(合并);内标种类及浓度;LC-MS/MS参数 阅读提示:Methods 'Mass spectrometry-based lipidomics'小节及Figure 5图注 |
| CS活性挽救实验 | CS过表达方式:pBABE-puro-CS逆转录病毒感染;甲基柠檬酸处理浓度及时间:文中未明确说明;CS活性测定方法:Biovision试剂盒 阅读提示:Methods 'CS cloning'、'Lentivirus infection of SCs'及'CS activity assay'小节 |