大鼠食管脱细胞支架制备与表征
制备保留天然结构和生物活性的脱细胞食管支架
采用 submerged luminal perfusion system,以脱氧胆酸钠、去离子水和DNase-I处理大鼠食管,并进行组织学、免疫组化、SEM、CT和生物力学评价
Experimental orthotopic transplantation of a tissue-engineered oesophagus in rats.
包含体外支架表征、CAM血管生成、皮下移植免疫原性、原位移植及多种功能与机制验证
大鼠脱细胞食管支架 大鼠骨髓间充质基质细胞(BM-MSCs) 免疫健全Sprague-Dawley大鼠原位移植模型
脱细胞后无完整细胞核且MHC I/II阳性细胞完全消失 支架保留胶原I/IV、弹性蛋白、纤连蛋白和层粘连蛋白 接种细胞在支架上自发表达上皮和肌肉标志物 原位移植14天后所有动物存活且移植物通畅 取出移植物显示上皮、肌肉、神经和血管再生
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备保留天然结构和生物活性的脱细胞食管支架
采用 submerged luminal perfusion system,以脱氧胆酸钠、去离子水和DNase-I处理大鼠食管,并进行组织学、免疫组化、SEM、CT和生物力学评价
验证支架的机械性能和促血管生成能力
进行burst pressure、应力测试、纵向拉伸和distensibility测试,并用CAM assay评价血管生成
评估脱细胞支架是否引起不良免疫反应
将脱细胞支架、天然食管和假手术组皮下移植到同种异体大鼠,5天后组织学和巨噬细胞CD68染色
验证支架细胞相容性和接种细胞的分化能力
分离大鼠BM-MSCs,GFP标记后接种于支架,培养3周,进行形态学、增殖、基因表达、钙流和电阻检测
验证组织工程食管原位替换后的通畅性和组织再生
将接种BM-MSCs的脱细胞支架移植到免疫健全大鼠颈部食管,14天后进行组织学、免疫组化、CT、SEM、TEM和biotin assay评价
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 脱细胞 | 脱氧胆酸钠 | Sigma-Aldrich | -- |
| DNase-I | Sigma-Aldrich | -- | |
| 杜氏磷酸盐缓冲液 | Gibco, Life Technologies | -- | |
| 抗生素-抗真菌剂 | Gibco, Life Technologies | -- | |
| 灌注系统 | 20G静脉导管 | Terumo | -- |
| 6-0 Prolene缝线 | Ethicon | -- | |
| 蠕动泵 | Ecoline, Ismatec | -- | |
| 组织学 | Masson三色染色 | Sigma-Aldrich | -- |
| DAPI | Sigma-Aldrich | -- | |
| 免疫组化 | 层粘连蛋白抗体 | Abcam | Ab11575 |
| 弹性蛋白抗体 | Abcam | Ab21610 | |
| 纤连蛋白抗体 | Abcam | Ab6328 | |
| I型胶原抗体 | Abcam | Ab34710 | |
| IV型胶原抗体 | Abcam | Ab6586 | |
| MHC I抗体 | Abcam | Ab22367 | |
| MHCII抗体 | Abcam | Ab23990 | |
| MyoD1抗体 | Abcam | ab16148 | |
| 泛角蛋白(C11)抗体 | Cell Signaling Technology | 4545 | |
| Gap43抗体 | Cell Signaling Technology | 8945 | |
| Desmin抗体 | Cell Signaling Technology | 5332 | |
| 血管性血友病因子抗体 | Abcam | Ab6994 | |
| β-III-微管蛋白抗体 | Covance | MMS-435P | |
| VEGF抗体 | Abcam | Ab1316 | |
| Ki-67抗体 | Fisher Scientific | SP6 | |
| ZO-2抗体 | Cell Signaling Technology | 2847-S | |
| 山羊抗兔二抗 | Life Technologies | a11037 | |
| 山羊抗鼠二抗 | Life Technologies | a11032 | |
| 含DAPI的Fluoroshield封片剂 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Micro-CT | Quantum FXmCT微型CT | Caliper, Perkin Elmer Inc. | -- |
| SEM | JSM6490扫描电子显微镜 | JEOL | -- |
| MRI | 9.4 T磁共振扫描仪 | Varian inc, Yarnton | -- |
| CAM assay | 明胶海绵 | Upjohn | -- |
| 重组VEGF | R&D Systems | -- | |
| 生物力学 | 注射泵 | Harvard Apparatus | PHD2000 |
| 压力传感器 | Hugo Sachs Elektronik | P1500 | |
| 细胞培养 | 低糖DMEM | Invitrogen, Life Technologies | -- |
| 胎牛血清 | Invitrogen, Life Technologies | -- | |
| 抗生素-抗真菌剂 | Invitrogen, Life Technologies | -- | |
| GFP电转 | Neon电转系统 | Invitrogen, Life Technologies | -- |
| DNA定量 | DNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| Nanodrop分光光度计 | Saveen Werner | -- | |
| 巨噬细胞染色 | CD68抗体 | Abcam | 31630 |
| Alexa Fluor 594二抗 | Life Technologies | A-11005 | |
| Hoechst核染料 | -- | -- | |
| qPCR | RNeasy迷你试剂盒 | Qiagen | -- |
| 高容量cDNA逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | -- | |
| 7500 Fast实时PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 钙成像 | Fluo-3/AM钙指示剂 | Invitrogen | -- |
| 电阻测量 | EVOM2电阻测量仪 | World Precision Instruments | -- |
| 原位移植 | 7-0聚丙烯缝线 | Ethicon | -- |
| 6-0聚丙烯缝线 | Ethicon | -- | |
| Ethilon 4-0缝线 | Ethicon | -- | |
| TEM | Leica EM UC 6超薄切片机 | Leica | -- |
| Tecnai 12 Spirit Bio TWIN透射电子显微镜 | FEI company | -- | |
| Biotin assay | 生物素(长臂)NHS | BioNordika | -- |
| DyLight 594链霉亲和素 | Bionordika | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 脱细胞 | 脱氧胆酸钠浓度4% w/w、DNase-I 2,000 kunitz units、灌注流速9 ml/min、两轮30分钟循环 阅读提示:Methods: Decellularization of oesophagus |
| 原位移植 | 移植段长度15 mm、缝合方式7-0单丝间断缝合、术后饮食方案、观察终点14天、n=10 阅读提示:Methods: Orthotopic transplantation;Figure 7 legend |
| BM-MSC接种 | 细胞代次第4代、接种密度80,000 cells/cm²、接种后静态50分钟、培养3周 阅读提示:Methods: BM-MSC isolation and seeding to scaffold;Tubular cell seeding |
| 皮下移植免疫原性 | 每组n=3、移植后5天取材、CD68抗体1:800 阅读提示:Methods: Subcutaneous transplantation;Macrophage staining and visualization;Figure 5 legend |
| CAM assay | 支架1 mm³、阳性对照200 ng重组VEGF、孵化12天、血管计数 阅读提示:Methods: CAM assay;Figure 4n–r legend |
| 生物力学测试 | 应力测试10,000次循环/72小时、burst pressure注入速率8 ml/min、n=5 阅读提示:Methods: Burst pressure and stress test;Figure 4s–w legend |