多重IP-MS筛选平台建立与验证
验证多重E3连接酶与化合物池联用可无偏检测化合物诱导的新底物
将CRBN和DCAF15固定于珠上,与细胞裂解液及已知药物混合物(CC885、indisulam、dBET6)孵育,LC-MS鉴定富集蛋白;逐步增加化合物数量评估干扰。
DCAF11-dependent molecular glue degrader activated by glutathionylation.
包含体外重组蛋白、细胞系、CRISPR筛选、cryo-EM结构及PROTAC验证等多层级证据,并有功能与机制验证。
Jurkat细胞 K562-Cas9 DDX18稳定性报告细胞 HEK293T细胞 重组DDX18-DCAF11-DDB1-DDA1复合物
M12浓度梯度(1-20 μM)与处理时间(6-18 h) DCAF11敲除或突变对M12诱导DDX18降解的影响 谷胱甘肽化修饰依赖GST和GSH CRL4DCAF11复合物组分在CRISPR筛选中的富集 cryo-EM结构分辨率2.3 Å及关键结合位点突变验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证多重E3连接酶与化合物池联用可无偏检测化合物诱导的新底物
将CRBN和DCAF15固定于珠上,与细胞裂解液及已知药物混合物(CC885、indisulam、dBET6)孵育,LC-MS鉴定富集蛋白;逐步增加化合物数量评估干扰。
从5,000种化合物中识别诱导DDX18与DCAF11邻近的分子胶
7种E3连接酶(CRBN、DCAF1、DCAF5、DCAF11、KEAP1、VHL、SPOP)与5,000化合物(320/池)孵育,IP-MS检测富集蛋白;逐步缩小池并免疫印迹验证,鉴定M12。
确认M12通过DCAF11介导DDX18的泛素-蛋白酶体降解
Jurkat、Molt4、K562-Cas9报告细胞系经M12处理,检测DDX18蛋白和mRNA水平;使用蛋白酶体抑制剂、UBA1抑制剂、NAE1-UBA3抑制剂及溶酶体抑制剂;CRISPR敲除DCAF11。
无偏鉴定M12诱导DDX18降解所需的关键基因
在K562-Cas9 DDX18稳定性报告细胞中进行全基因组和UPS聚焦CRISPR-Cas9敲除筛选,分选eGFP/mCherry比例最高和最低的5%细胞,测序分析sgRNA富集。
揭示M12、DCAF11和DDX18三元复合物的分子细节及GSH-M12的结合模式
在M12存在下纯化DDX18-DCAF11-DDB1ΔB-DDA1复合物,制备冷冻电镜样品,收集数据,解析结构至2.3 Å,建模并鉴定GSH-M12密度。
证明M12经GST介导谷胱甘肽化成为活性分子胶
体外将M12与GST、GSH孵育,LC-MS/MS检测GSH-M12生成;TR-FRET检测DCAF11-DDX18邻近;化学合成GSH-M12 (HY-05)并验证其活性;体外泛素化实验。
验证GSH直接结合DCAF11及关键残基对M12活性的重要性
TR-FRET使用BODIPY-GSH (HY-11)检测直接结合;竞争实验;DCAF11突变体(D309A/N311A/D328A等)免疫共沉淀;分析保守性。
验证M12作为DCAF11招募弹头可模块化降解多样靶蛋白
将M12与JQ1、SMARCA2配体、BRD9抑制剂、多激酶抑制剂连接生成HY-07、HY-08、HY-09、HY-10;在野生型和DCAF11-KO细胞中检测靶蛋白降解。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞处理 | dBET6 | MedChemExpress | HY-112588 |
| dBRD9 | MedChemExpress | HY-117690 | |
| MLN7243 | MedChemExpress | HY-100487 | |
| MLN4924 | MedChemExpress | HY-70062 | |
| MG132 | MedChemExpress | HY-13259 | |
| 巴弗洛霉素A1 | MedChemExpress | HY-100558 | |
| 化合物筛选 | 5K骨架化合物库 | MedChemExpress | HY-L902 |
| 蛋白纯化 | Strep-Tactin XT Superflow树脂 | IBA | 2-4010-025 |
| Anti-DYKDDDDK G1亲和树脂 | Genscript | L00432 | |
| POROS 50HQ离子交换柱 | Thermo Scientific | 1255911 | |
| Superdex 200 Increase 10/300凝胶过滤柱 | Cytiva | 28990944 | |
| 质谱样品制备 | MagStrep Strep-Tactin XT磁珠 | IBA | 2-5090-010 |
| 胰蛋白酶/赖氨酸-C混合液,质谱级 | Promega | V5072 | |
| C18固相萃取板 | Thermo Scientific | 60307 | |
| qPCR | RNeasy Plus试剂盒 | QIAGEN | 74134 |
| iScript cDNA合成试剂盒 | Bio-Rad | 1708891 | |
| TaqMan基因表达预混液 | Applied Biosystems | 4369016 | |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | Thermo Scientific | 89901 |
| cOmplete蛋白酶抑制剂混合物 | Sigma | 11836170001 | |
| BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo Scientific | 23227 | |
| Intercept (PBS)封闭缓冲液 | LI-COR Biosciences | 927-70001 | |
| 免疫共沉淀 | TransIT-LT1转染试剂 | Mirus | MIR 2304 |
| Pierce IP裂解缓冲液 | Thermo Scientific | 87787 | |
| Anti-DYKDDDDK磁珠琼脂糖 | Thermo Scientific | A36797 | |
| NuPage LDS上样缓冲液 | Invitrogen | NP0007 | |
| 报告细胞系构建 | MiniPrep试剂盒 | Invitrogen | K210011 |
| OptiMEM培养基 | Gibco | 31985070 | |
| 体外谷胱甘肽化 | 还原型谷胱甘肽 | Sigma | G4251 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 多重IP-MS筛选 | E3连接酶种类及浓度、化合物池浓度、细胞裂解液来源及用量、孵育时间与温度、洗涤条件 阅读提示:Methods 'Multiplexed immunoprecipitation and sample preparation for mass spectrometry analysis'及Fig. 1图注 |
| M12诱导DDX18降解的细胞实验 | 细胞系(Jurkat、Molt4、K562-Cas9)、M12浓度范围(1-20 μM)、处理时间(6-18 h)、抑制剂预处理浓度及时间 阅读提示:Fig. 2图注及Extended Data Fig. 2图注、Methods相关章节 |
| CRISPR筛选 | sgRNA文库、细胞系、M12浓度(10 μM)、处理时间(18 h)、分选门控策略、重复数 阅读提示:Methods 'Genome-scale or UPS-targeted DDX18 reporter CRISPR screen'及Extended Data Fig. 2f-i |
| cryo-EM样品制备与数据收集 | 蛋白复合物组成及浓度、M12浓度(10 μM)、去垢剂、冷冻条件、电镜参数、数据收集与处理流程 阅读提示:Methods 'Cryo-EM sample preparation and data processing'及Extended Data Table 1 |
| TR-FRET结合实验 | 蛋白浓度(DCAF11 50-200 nM,DDX18 200-300 nM)、缓冲液组成、GSH/GST浓度、孵育时间、检测参数 阅读提示:Methods 'TR-FRET'及对应图注 |