四种TF组合诱导MEFs重编程
建立不同细胞命运的重编程体系并比较TF基因组占据。
在MEFs中过表达OSKM、GETM、GETMR和BS9G4M,分别在48 h和重编程完成后进行ChIP-seq、RNA-seq和免疫染色。
Nucleosome fibre topology guides transcription factor binding to enhancers.
包含体外细胞重编程、多组学(ChIP-seq、ATAC-seq、MNase-seq、Micro-C、RNA-seq)、EMSA、Co-IP、Western blot、流式及嵌合体报告基因功能验证等多层级证据。
小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)重编程为iPS细胞 MEFs重编程为iTS细胞 嵌合体胚胎来源的MEFs(Nanog双报告系统) HEK293T细胞(病毒包装)
TF诱导后48 h早期重编程细胞的ChIP-seq和MNase-seq;诱导后72 h的ATAC-seq;重编程完成后的iPS/iTS细胞 OSKM、GETM、GETMR、BS9G4M四种TF组合的感染比例及多西环素(2 μg/ml)诱导时间 MNase滴定梯度(1、4、16、64 U/ml)保留脆弱核小体 Micro-C使用15 U和20 U MNase消化及双交联 Nanog signpost双荧光报告系统的方向性翻转及嵌合体E13.5分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立不同细胞命运的重编程体系并比较TF基因组占据。
在MEFs中过表达OSKM、GETM、GETMR和BS9G4M,分别在48 h和重编程完成后进行ChIP-seq、RNA-seq和免疫染色。
确定单核小体上的基序排列能否解释TF单独或组合结合。
MNase-seq定位核小体,结合ChIP-seq定义solo-nucs和combo-nucs,扫描OCT4、SOX2、KLF4、GATA3、EOMES、TFAP2C等基序在核小体双链上的分布。
检验TF组合是否识别核小体阵列水平的多基序模式。
定义TF共结合的broad domains(核小体阵列),分析OSK和GET基序在阵列内外的方向性分布,并按SOX2基序方向性对阵列分组。
验证基序方向性在重编程中对增强子激活的功能影响。
构建piggyBac双荧光报告(eGFP由完整Nanog promoter–signpost–enhancer驱动,tdTomato由翻转signpost驱动),整合到ES细胞,制备嵌合体E13.5 MEFs,用OSKM重编程并流式检测。
解析signpost元件的染色质环结构和H1对TF结合的贡献。
Micro-C在核小体分辨率检测OSK/GET阵列的环结构和核小体接触;通过H1.4敲低和过表达改变染色质纤维构象,检测对OSK/GET结合及重编程效率的影响。
解析MYC与GET/OSK组合结合的机制及ESRRB对GETM结合的竞争影响。
分析MYC基序(E-box)在OSK/GET阵列的分布,EMSA和Co-IP验证MYC–TFAP2C互作;比较GETM和GETMR中TFAP2C占据,Co-IP验证ESRRB与EOMES竞争结合TFAP2C。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | GMEM培养基 | Sigma-Aldrich | G5154 |
| 非必需氨基酸 | Thermo Fisher Scientific | 11140035 | |
| RPMI-1640培养基 | Thermo Fisher Scientific | 21875034 | |
| 人成纤维细胞生长因子4 | R&D | 235-F4-025 | |
| 肝素 | Sigma-Aldrich | H3149 | |
| 病毒感染 | Fugene 6转染试剂 | Promega | E2692 |
| Lenti-X浓缩试剂 | Clontech | 631232 | |
| ChIP-seq | 蛋白G磁珠 | Thermo Fisher Scientific | 10004D |
| cOmplete超强蛋白酶抑制剂 | Roche | 5892970001 | |
| NEBNext Ultra II文库构建试剂盒 | NEB | E7645S | |
| ATAC-seq | Nextera Tn5转座酶 | Illumina | Fc-121-1030 |
| MNase-seq | 微球菌核酸酶 | Worthington Biochemicals | LS004797 |
| Micro-C | MyOne Streptavidin C1磁珠 | Invitrogen | 65001 |
| Co-IP | Dynabeads蛋白A和G混合磁珠 | Invitrogen | 10004D/10002D |
| Western blot | Pierce BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| SuperSignal West Pico化学发光底物 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| HPLC | Waters 2695系统 | Waters | -- |
| LC-MS | TripleTOF 5600+质谱仪 | AB SCIEX | -- |
| 流式分析 | Beckman Coulter Gallios流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| TF组合重编程 | 四种TF组合的感染比例(GETM 3:3:3:1;GETMR 2:2.5:2:1:2.5;OSKM 3:3:3:1;BS9G4M 3:3:3:1)及多西环素诱导时间线 阅读提示:Methods 'Reprogramming to iPS cells and iTS cells' |
| 早期重编程ChIP-seq | MOI 5(每个TF)+ MOI 5 rtTA2M2;多西环素2 μg/ml诱导48 h;每TF约1.5×10^7细胞用于染色质制备 阅读提示:Methods 'Early reprogramming'和'ChIP-seq' |
| MNase-seq核小体定位 | MNase梯度1、4、16、64 U/ml;消化2 min;片段90–210 bp切胶回收 阅读提示:Methods 'MNase–seq' |
| Micro-C | 双交联(甲醛+DSG 3 mM);MNase 15 U或20 U;消化10 min(H1-OE MEF为20 min);每细胞类型约10亿read pairs 阅读提示:Methods 'Micro-C' |
| Nanog signpost双报告功能验证 | piggyBac整合到ES细胞;嵌合体E13.5来源MEFs;OSKM重编程;流式检测eGFP/tdTomato;生物学重复n=3 阅读提示:Methods 'Integration of mES cells with piggyBac transposon vectors'和'DNA constructs';Fig. 3 |
| H1.4敲低和过表达 | H1.4 KD四个shRNA序列及两次感染时间(0 h和72 h);H1.4 OE MOI 2、多西环素2 μg/ml诱导72 h;puromycin 1 μg/ml筛选 阅读提示:Methods 'H1 knockdown (KD)'和'H1 overexpression (OE)' |