RNA-LPA的制备与表征
构建多层RNA脂质颗粒聚集体并验证其粒径、电荷、包装效率和稳定性。
使用阳离子脂质体DOTAP与mRNA通过静电作用自组装形成多层层状聚集体,通过冷冻电镜、Nanosight、Zetasizer和凝胶电泳表征粒径、zeta电位和包封效率。
RNA aggregates harness the danger response for potent cancer immunotherapy.
包含小鼠肿瘤模型、犬自发胶质瘤和人胶质母细胞瘤患者样本三个独立证据层级,并进行RIG-I/IFNAR1机制验证和功能验证。
小鼠肿瘤模型(B16F0、K7M2、KR158b、K2等) 客户所有的犬自发胶质瘤 人胶质母细胞瘤患者 人成纤维细胞网状细胞(FRC)系
RNA-LPA的RNA:LP质量比(如1:15)和粒径(200–500 nm) 小鼠静脉注射剂量25 μg/dose(mRNA部分) 犬RNA-LPA剂量0.05 mg/kg/dose,每周一次共3次 人临床试验剂量范围0.625–1.5 μg/kg,每两周一次最多3次后每月加强 RIG-I和IFNAR1敲除小鼠中抗肿瘤活性及细胞因子反应衰减
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建多层RNA脂质颗粒聚集体并验证其粒径、电荷、包装效率和稳定性。
使用阳离子脂质体DOTAP与mRNA通过静电作用自组装形成多层层状聚集体,通过冷冻电镜、Nanosight、Zetasizer和凝胶电泳表征粒径、zeta电位和包封效率。
验证RNA-LPA能否诱导系统性免疫反应并抑制肿瘤生长、延长生存。
在多种小鼠肿瘤模型中静脉注射RNA-LPA,检测血清细胞因子/趋化因子、DC活化、抗原特异性T细胞反应和生存曲线。
确定RNA-LPA在体内的主要靶细胞类型和器官分布。
使用Cre-lox tdTomato报告小鼠和荧光标记的RNA-LPA,通过共聚焦显微镜和共定位分析观察脾、淋巴结等淋巴网状器官中的细胞定位。
明确RNA-LPA诱导的免疫反应是否依赖于RIG-I和IFNAR1等通路。
在RIG-I、IFNAR1、TLR7、MYD88等基因敲除小鼠中评估RNA-LPA诱导的细胞因子反应和抗肿瘤活性,并通过RNA测序分析FRC中的基因表达变化。
在自然发生的犬胶质瘤模型中验证RNA-LPA的免疫调节作用和生存获益。
对客户所有的犬胶质瘤患者进行RNA-LPA治疗,监测细胞因子、PBMC动员、TME基因表达和生存期。
评估RNA-LPA在胶质母细胞瘤患者中的安全性、免疫激活和初步疗效。
在MGMT未甲基化胶质母细胞瘤患者中进行加速滴定设计试验,监测细胞因子/趋化因子、免疫细胞亚群、TCR repertoire和肿瘤组织变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| RNA-LPA制备 | DOTAP(1,2-二油酰-3-三甲基铵丙烷,氯化物盐) | Avanti Polar Lipids | 890890P |
| mRNA体外转录 | mMESSAGE mMACHINE T7转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | AM1344 |
| INCOGNITO T7 ARCA 5mC- & Ψ-RNA转录试剂盒 | CellScript | C-ICTAMY110510 | |
| RNA纯化 | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | 74104 |
| 无RNase DNase套装 | Qiagen | 79254 | |
| 流式细胞分析 | FACSymphony A3细胞分析仪 | BD Biosciences | -- |
| FACSCanto II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 共聚焦成像 | Leica Stellaris 5共聚焦显微镜 | Leica | -- |
| Nikon A1RMP共聚焦显微镜 | Nikon | -- | |
| 细胞培养 | 成纤维细胞培养基 | ScienCell | 2301 |
| DMEM F12/Glutamax培养基 | Gibco | 10565018 | |
| McCoy's 5a改良培养基 | ATCC | 30-2007 | |
| 抗体 | 抗小鼠IFNAR-1单克隆抗体 | Bio X Cell | BE0241 |
| 抗小鼠PD-L1单克隆抗体 | Bio X Cell | BE0101 | |
| 抗小鼠PD-1单克隆抗体 | Bio X Cell | BE0146 | |
| 多重细胞因子分析 | 小鼠细胞因子/趋化因子32重发现检测阵列 | Eve Technologies | MD32 |
| 小鼠细胞因子/趋化因子44重发现检测阵列 | Eve Technologies | MD44 | |
| 人细胞因子/趋化因子96重发现检测阵列 | Eve Technologies | HD96 | |
| 基因表达分析 | nCounter犬免疫肿瘤学面板 | Nanostring | 115000465 |
| nCounter人泛癌免疫分析面板 | Nanostring | 115000132 | |
| ELISpot | 人IFN-γ/颗粒酶B双色ELISpot试验 | Cellular Technology Limited (CTL) | -- |
| TCR测序 | ImmunoSEQ人TCRB测序试验 | Adaptive Biotechnologies | -- |
| 细胞系 | K7M2细胞 | ATCC | CRL-2836 |
| B16F0细胞 | ATCC | CRL-6322 | |
| U-2 OS细胞 | ATCC | HTB-96 | |
| 人成纤维细胞网状细胞系(FRC) | CancerTools.org | 156505 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| RNA-LPA制备与表征 | RNA:LP质量比(1:15)、mRNA剂量、粒径(200–500 nm)和zeta电位(约50 mV) 阅读提示:Methods 'RNA-LPA generation'小节及Figure 1A–D图注 |
| 小鼠肿瘤模型治疗 | 小鼠品系、肿瘤细胞接种数量和途径、RNA-LPA剂量(25 μg/dose)、给药频率(每周一次共三次) 阅读提示:Methods 'Mice'和'Cell lines and implantations'小节及Figure 1图注 |
| 基因敲除小鼠机制验证 | RIG-I、IFNAR1、TLR7、MYD88等敲除小鼠背景、RNA-LPA剂量和检测时间点 阅读提示:Methods 'Mice'小节及Figure 4K–P图注 |
| 犬胶质瘤临床试验 | 犬RNA-LPA剂量(0.05 mg/kg/dose)、给药方案(每周一次共三次)、Group A/B分组和监测时间点 阅读提示:Methods 'Canine trial'小节及Figure 5A图注 |
| 人胶质母细胞瘤首次人体试验 | 患者入组标准(MGMT未甲基化)、RNA-LPA剂量范围(0.625–1.5 μg/kg)、给药方案和监测时间点 阅读提示:Methods 'Human trial'小节及Supplementary Table 1 |