鉴定ERα的RNA结合活性
验证ERα是否直接结合RNA并确定其结合特征。
通过Oligo(dT) pull-down、UV交联免疫沉淀(CLIP)、HITS-CLIP测序和热位移实验,检测ERα与RNA的结合。
ERα is an RNA-binding protein sustaining tumor cell survival and drug resistance.
体外细胞模型、异种移植小鼠模型、患者样本及组学数据,包含RNA结合功能验证和机制验证。
MCF7乳腺癌细胞系 T47D乳腺癌细胞系 TamR-1他莫昔芬耐药细胞系 NSG小鼠异种移植模型
ERα RBD突变体(259RRGG>259AAAA)在MCF7和T47D细胞中稳定表达并验证RNA结合丧失 CRISPRi筛选使用dCas9诱导型MCF7细胞,靶向ERα结合的mRNA,以Day0和Day14比较 异种移植模型中MCF7和T47D细胞接种数量分别为4×10^6和8×10^6,每组5只小鼠 TamR-1异种移植模型中使用4-OHT 20mg/kg腹腔注射,每2天一次,持续21天 XBP1剪接检测使用衣霉素处理4小时,RT-PCR分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证ERα是否直接结合RNA并确定其结合特征。
通过Oligo(dT) pull-down、UV交联免疫沉淀(CLIP)、HITS-CLIP测序和热位移实验,检测ERα与RNA的结合。
定位ERα中负责RNA结合的氨基酸区域。
使用RNABindRPlus预测RBD,构建GST-ERα截短体及RBD突变体(259RRGG>AAAA),进行RNA pull-down和western blot。
检测RBD突变是否影响ERα的DNA结合和转录调控功能。
通过ChIP-seq和ChIP-qPCR比较WT和RBDmut ERα的染色质结合,使用FLAG抗体。
验证RNA结合活性在乳腺癌细胞增殖和体内肿瘤生长中的作用。
使用SRB assay检测细胞生长,异种移植小鼠模型测量肿瘤体积。
筛选对乳腺癌细胞适应性重要的ERα结合转录本。
使用定制CRISPRi文库靶向ERα结合的mRNA,在dCas9诱导型MCF7细胞中进行筛选,测序sgRNA频率。
探究ERα是否通过RtcB调控XBP1 mRNA剪接。
使用EMSA、RT-PCR检测XBP1剪接,免疫共沉淀检测ERα-RtcB相互作用,以及RtcB敲低实验。
探究ERα是否影响eIF4G2和MCL1的翻译效率。
使用多聚核糖体图谱分析、双荧光素酶报告基因实验、western blot和eIF4A抑制剂处理。
检测eIF4G2、MCL1和XBP1s在ERα+乳腺癌中的蛋白表达。
对14对肿瘤和癌旁组织进行western blot,对组织芯片(65例ERα+浸润性乳腺癌和8例正常组织)进行IHC染色。
验证抑制ERα介导的应激适应通路是否逆转他莫昔芬耐药。
在TamR-1细胞中使用IRE1抑制剂、eIF4G2 siRNA或MCL1抑制剂,在应激条件下检测凋亡,并在异种移植模型中测试4-OHT效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| RNA pull-down | Oligo(dT)纤维素珠 | Sigma | O3131 |
| Western blot | 抗ERα兔抗体 | Santa Cruz | sc-542 |
| 抗ERα兔抗体 | Cell Signaling Technology | 8644S | |
| 抗FLAG(M2)鼠抗体 | Sigma | F1804 | |
| 抗IgG兔抗体 | Cell Signaling Technology | 2729S | |
| 抗Lamin A/C鼠抗体 | Santa Cruz | sc-7292 | |
| 抗α-微管蛋白鼠抗体 | Abcam | ab18251 | |
| 抗SMC2兔抗体 | Cell Signaling Technology | 5329S | |
| 抗PABP1兔抗体 | Cell Signaling Technology | 4992S | |
| 抗eIF4A1鼠抗体 | MyBioSource | MBS8504039 | |
| 抗eIF4G2鼠抗体 | Proteintech | 67428-1-Ig | |
| 抗RtcB兔抗体 | Proteintech | 19809-1-AP | |
| 抗MCL1兔抗体 | Santa Cruz | sc-819 | |
| 抗β-肌动蛋白鼠抗体 | Sigma | A5316 | |
| 抗组蛋白H3抗体 | Cell Signaling Technology | 14269S | |
| 抗XBP1s兔抗体 | Cell Signaling Technology | 12782S | |
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | -- |
| DMEM培养基 | Gibco | -- | |
| GlutaMAX(1x) | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素(100 U/mL) | Gibco | -- | |
| 4-羟基他莫昔芬 | Sigma | -- | |
| 慢病毒包装 | PolyFect | Qiagen | -- |
| Opti-MEM | Invitrogen | -- | |
| pWPXLd质粒 | Addgene | 12258 | |
| 细胞转染 | Amaxa细胞系Nucleofector试剂盒V | Lonza | -- |
| Hiperfect | Qiagen | -- | |
| RNA提取 | TRIzol | Life Technologies | 15596026 |
| RNeasy迷你试剂盒 | Qiagen | 74106 | |
| 逆转录 | High-Capacity cDNA逆转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| qPCR | PowerUP SYBR Green预混液 | Thermo Fisher | -- |
| Applied Biosystems QuantStudio 6 Flex实时PCR系统 | Thermo Fisher | -- | |
| Western blot | NuPAGE 4-12% Bis-Tris凝胶 | Invitrogen | -- |
| 硝酸纤维素膜(0.2 μm) | Thermo Scientific | -- | |
| ECL蛋白质印迹底物 | Thermo Scientific | -- | |
| HITS-CLIP | Protein A Dynabeads | Invitrogen | 10008D |
| RNase A | Affymetrix | 70194Z | |
| T4 RNA连接酶 | Thermo Fisher Scientific | EL0021 | |
| Superscript III逆转录酶 | Thermo Fisher Scientific | 18080093 | |
| Accuprime pfx预混液 | Thermo Fisher Scientific | 12344-040 | |
| CRISPRi筛选 | pLG1文库载体 | Gilbert Lab | -- |
| NucleoSpin Blood XL试剂盒 | Macherey-Nagel | -- | |
| ChIP | Protein A Dynabeads | Invitrogen | 10008D |
| 抗FLAG M2抗体 | Sigma | F1804 | |
| NEBNext Ultra II DNA文库制备试剂盒 | NEB | E7103S | |
| 免疫组化 | Vectastain Elite ABC试剂 | Vector Labs | PK-6100 |
| DAB过氧化物酶底物试剂盒 | Vector Labs | SK-4100 | |
| 动物实验 | 17β-雌二醇 pellets(0.72mg,60天缓释) | Innovative Research of America | -- |
| Matrigel基质胶 | Corning | -- | |
| STF-083010 | -- | -- | |
| Zotatifin | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | CellTiter-Glo发光细胞活力实验 | Promega | -- |
| Glomax 96孔板发光仪 | Promega | -- | |
| 热位移实验 | SYPRO Orange荧光染料(50X) | Thermo Fisher | -- |
| CFX RT-PCR检测系统 | Bio-Rad | -- | |
| 多聚核糖体图谱分析 | Gradient Master | BIOCOMP | -- |
| 活塞梯度分液器 | BIOCOMP | -- | |
| 荧光素酶报告基因实验 | 双荧光素酶试剂盒 | Promega | -- |
| pGL3启动子载体 | Promega | -- | |
| pRL海肾荧光素酶质粒 | Promega | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ERα RBD突变体构建与验证 | 突变位点(259RRGG>259AAAA)、稳定细胞系筛选方法(慢病毒转导、嘌呤霉素2 μg/mL筛选2-3天、Cas9 RNP敲除内源ERα)、单克隆挑选 阅读提示:STAR Methods中“Generating ERα RBDmut stable cell lines”小节 |
| CRISPRi筛选 | MCF7-dCas9细胞、sgRNA文库(靶向1090个mRNA,每个5个sgRNA)、多西环素诱导时间(4天)、Day0和Day14时间点、测序深度 阅读提示:STAR Methods中“CRISPRi screen”小节及Figure 3A |
| 异种移植肿瘤模型 | 小鼠品系(NSG,雌性,8周龄)、细胞接种数量(MCF7 4×10^6,T47D 8×10^6,TamR-1 8×10^6)、基质胶比例、雌激素 pellet(0.72mg,60天缓释)植入时间、肿瘤体积测量频率 阅读提示:STAR Methods中“Xenograft and orthotopic mouse models”小节及Figure 2H、6F |
| XBP1剪接检测 | 衣霉素处理浓度和时间(4小时)、RT-PCR引物序列、PCR循环数、凝胶浓度(2% TAE) 阅读提示:STAR Methods中“RNA Isolation and quantitative RT-PCR”小节及Figure 4B |
| 多聚核糖体图谱分析 | 蔗糖梯度浓度(10-50%)、离心条件(SW41Ti转子,38,000 rpm,2.5小时,4°C)、细胞裂解缓冲液成分、环己酰亚胺处理浓度(0.1 mg/ml,5分钟) 阅读提示:STAR Methods中“Sucrose gradient fractionation”小节及Figure 5D-E |
| IRE1抑制剂体内实验 | 给药剂量(30 mg/kg)、给药频率(每周一次)、给药途径(未明确说明)、肿瘤接种细胞数(5×10^6 MCF7)、分组随机化方法 阅读提示:STAR Methods中“Xenograft and orthotopic mouse models”小节及Figure 4J |
| 他莫昔芬耐药细胞异种移植实验 | 4-OHT剂量(20mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、给药频率(每2天一次)、持续时间(21天)、每组小鼠数量(5只) 阅读提示:STAR Methods中“Xenograft and orthotopic mouse models”小节及Figure 6F |
| 免疫组化 | 组织芯片来源(US Biomax BC081116d)、抗原修复方法(柠檬酸缓冲液煮沸20分钟)、一抗浓度和孵育条件(4°C过夜)、显色系统(DAB) 阅读提示:STAR Methods中“Immunohistochemistry (IHC) staining of breast cancer tissue microarray (TMA)”小节及Figure 6B |