建立同步诱导XCI的细胞体系
获得高度同步的Xist诱导和等位基因特异性分析体系,以减少细胞异质性。
使用TX1072雌性小鼠ESC(Mus musculus castaneus × C57BL/6),其B6等位基因内源Xist受DOX诱导启动子控制;加入DOX同步诱导Xist,并以未诱导细胞为对照。
The Implication of Early Chromatin Changes in X Chromosome Inactivation.
包含等位基因特异性nChIP-seq、TT-seq、RNA-seq、IF/RNA FISH、CRISPR/Cas9敲除与敲入、IP-MS等多种功能与机制验证
TX1072雌性小鼠胚胎干细胞(Mus musculus castaneus × C57BL/6) Hdac3−/−及Hdac3Flag/Flag TX1072衍生细胞系 TXY:XistWT与TXY:XistΔA雄性小鼠胚胎干细胞
DOX诱导Xist表达的时间点(0、4、8、12、24小时),TX1072细胞以1 μg/ml DOX处理 等位基因特异性nChIP-seq中B6和Cast等位基因的SNP分离及d-score计算,仅纳入t=0时d-score在0.3–0.7的双等位峰 HDAC抑制剂预处理浓度与时间:RGFP966 10 μM、BRD6688 10 μM、Tasquinimod 10 μM、Tubastatin A 5 μM、PCI-34051 5 μM、LMK235 30 nM,预处理1小时 Hdac3−/−克隆的CRISPR/Cas9缺失验证及Hdac3Flag/Flag敲入克隆的FLAG标签验证 TT-seq中4sU标记时间(5分钟)及 spike-in 归一化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得高度同步的Xist诱导和等位基因特异性分析体系,以减少细胞异质性。
使用TX1072雌性小鼠ESC(Mus musculus castaneus × C57BL/6),其B6等位基因内源Xist受DOX诱导启动子控制;加入DOX同步诱导Xist,并以未诱导细胞为对照。
确定Xist诱导后各类活性与抑制性组蛋白修饰的时间顺序。
对7种组蛋白修饰(H3K4me3、H3K9ac、H4ac、H3K27ac、H3K4me1、H3K27me3、H2AK119Ub)进行等位基因特异性nChIP-seq,计算d-score并拟合sigmoidal曲线提取IC35、ED50等参数。
将染色质修饰动态与转录沉默直接关联。
进行TT-seq测量新合成RNA,比较基因沉默的IC35与启动子组蛋白修饰的IC35。
确定介导早期组蛋白去乙酰化的HDAC成员及其对基因沉默的必要性。
用选择性HDAC抑制剂处理ESC,通过焦磷酸测序和RNA FISH检测X连锁基因沉默;用CRISPR/Cas9构建Hdac3−/−克隆,进行RNA-seq和焦磷酸测序验证;在EpiLC分化中验证。
区分HDAC3是被Xist新招募还是预先结合,并鉴定其互作蛋白。
构建Hdac3Flag/Flag ESC,进行抗FLAG ChIP-seq和抗FLAG免疫共沉淀-质谱;用IF/RNA FISH检测HDAC3亚核定位。
确定H2AK119Ub和H3K27me3的时序、空间分布及与基因沉默的关系。
对H2AK119Ub和H3K27me3进行等位基因特异性nChIP-seq,分析10-kb窗口和基因体、启动子、增强子、基因间区的积累动态;在XistΔA和Hdac3−/−细胞中检测PcG标记扩散。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| nChIP-seq | 抗H3K27ac抗体 | Active Motif | 39685 |
| 抗H3K27me3抗体 | Cell Signaling | 9733S | |
| 抗H2AK119Ub1抗体 | Cell Signaling | 8240S | |
| 抗H3K4me3抗体 | Merck-Millipore | 05-1339 | |
| 抗H3K4me1抗体 | Cell Signaling | 5326S | |
| 抗H3K9ac抗体 | MBL Lifescience | MABI0305 | |
| 抗泛乙酰化H4抗体 | Merck-Millipore | 06-946 | |
| 免疫印迹 | 抗HDAC3抗体 | Santa Cruz | sc-376957 X |
| 抗LaminB1抗体 | Abcam | ab16048 | |
| 免疫共沉淀 | 抗FLAG抗体 | Sigma-Aldrich | F1804-50UG |
| 抗NCOR1抗体 | Abcam | ab3482 | |
| 抗NCOR2抗体 | Abcam | ab5802 | |
| HDAC抑制剂处理 | RGFP966 | Abcam | ab144819 |
| BRD6688 | Bertin Pharma | 19836.1 mg | |
| Tasquinimod | Bertin Pharma | 17692 | |
| Tubastatin A | Bertin Pharma | 10559 | |
| PCI-34051 | Bertin Pharma | T6325 | |
| LMK235 | Bertin Pharma | 14969 | |
| TT-seq | 4-硫代尿苷 | Carbosynth | NT06186 |
| EZ-Link HPDP-生物素 | ThermoFisher Scientific | 21341 | |
| 质谱 | 胰蛋白酶/LysC混合液(质谱级) | Promega | v5071 |
| 焦磷酸测序 | PyroMark Gold Q24试剂 | QIAGEN | 970802 |
| nChIP-seq文库制备 | Ovation Ultralow System V2 1-16文库制备试剂盒 | Nugen Technologies | 0344-32 |
| RNA-seq文库制备 | Ovation Mouse RNA-Seq System 1-16文库制备试剂盒 | Nugen Technologies | 348 |
| RNA FISH探针标记 | 缺口平移试剂盒 | Roche | 10976776001 |
| TT-seq文库制备 | TruSeq链特异性总RNA文库制备试剂盒(含Ribo-Zero人/小鼠/大鼠) | Illumina | RS-122-2201 |
| TT-seq | µMACS链霉亲和素试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-074-101 |
| RNA纯化 | miRNeasy Micro试剂盒 | QIAGEN | 217084 |
| spike-in合成 | MEGAscript T7转录试剂盒 | ThermoFisher Scientific | AM1333 |
| ChIP-DNA超声 | S220聚焦超声仪 | Covaris | S220 |
| 测序 | HiSeq测序仪 | Illumina | 2500 |
| 质谱 | 质谱仪 | ThermoFisher Scientific | Orbitrap FusionTribrid |
| 液相色谱系统 | ThermoFisher Scientific | UltiMate 3000 RSLCnano |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| DOX诱导Xist表达 | 细胞系(TX1072或TXY)、DOX浓度(TX1072:1 μg/ml;TXY:1.5 μg/ml)、处理时间(TX1072:0–24小时;TXY:48小时) 阅读提示:Methods“Doxycycline and inhibitor treatment”小节及Figure 1A |
| 等位基因特异性nChIP-seq | 细胞数量(每次IP约350万细胞)、MNase消化时间(10分钟)、抗体用量(如H3K27ac 1 μg/IP、H3K27me3 1 μg/IP)、测序深度(≥4000万reads) 阅读提示:Methods“Native ChIP-seq”小节及Key Resources Table |
| HDAC抑制剂处理 | 抑制剂种类及浓度(RGFP966 10 μM等)、预处理时间(1小时)、DOX诱导后检测时间(24小时) 阅读提示:Methods“Doxycycline and inhibitor treatment”及Figure 3A |
| Hdac3敲除与FLAG敲入验证 | CRISPR/Cas9 gRNA设计、克隆筛选与测序验证、Hdac3−/−克隆的等位基因缺失细节 阅读提示:Methods“CRISPR/Cas9 knockout of Hdac3”和“CRISPR/Cas9 FLAG tagging of Hdac3”小节 |
| TT-seq | 4sU浓度(0.5 mM)、标记时间(5分钟)、spike-in用量(每1000万细胞24 ng)、生物素化反应条件 阅读提示:Methods“TT-seq”小节 |